Manual de Manejo de la Posta de Sementales

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Manual de Manejo de la Posta
de Sementales
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Manual PIC de Manejo de la Posta de Sementales
Nunca Paramos de Mejorar
Tabla de Contenido
Tabla de Contenido
Lista de Figuras, Fotos, y Cuadros......................................................................................................2
Introducción…………………………………………………………………………....................................3
Parte 1. Anatomía y Fisiología General………………………………………….....................................5
Parte 2. Cuarentena y Aclimatación…………………………………………………................................8
Parte 3. Manejo General de los Sementales…………………………………......................................11
Parte 4. Manejo del Área de Sementales.………………………………………...................................12
Parte 5. Ventilación y Flujo de Aire……………………………………………………............................14
Parte 6. Condición Corporal……………………………………………………………...........................18
Parte 7. Alimentación y Nutrición…………………………………………………..................................19
Parte 8. Entrenamiento………………………………………………………………………....................21
Entrenamiento para Colección Manual............................................................……………..21
Entrenamiento usando un Sistema de Colección Automatizado..........................................22
Parte 9. Colección del Semental………………………………………………………............................23
Parte 10. Bienestar Animal y Salud…………………………………………………...............................25
Temperatura Corporal y Apetito…………............................................................................25
Pruebas de Diagnóstico.....................................................................................................25
Criterio para el cierre de la Posta……................................................................................26
Manejo y Eutanasia............................................................................................................26
Transporte de Sementales.................................................................................................27
Parte 11. Gestión del Laboratorio…………………………………………………..................................28
Calidad del Agua..................................................................................................................29
Llegada del Semen...............................................................................................................30
Evaluación de Semen...........................................................................................................30
Determinación de la Concentración.....................................................................................31
Dilución del Semen...............................................................................................................32
Envasado de las Dosis de Semen……………………...........................................................32
Enfriamiento del Semen y Empaque de Dosis Enfriadas.....................................................33
Envío y Transporte del Semen.............................................................................................33
Parte 12. Control de Calidad……………………………………………………………..........................34
Parte 13. Manejo y Entrenamiento del Personal...............................................................................39
Parte 14. Indicadores Clave de Desempeño………………………………………………....................40
Parte 15. Benchmarking de Producción ………………………………………....................................41
Parte 16. Vida Útil del Semental y Tasa de Reemplazo………………………………….....................44
Referencias……………………………………………………………….................................................45
Colaboradores…………………………………………………………………………..............................46
Apéndice A. Requerimientos de Nutrientes para Cerdos …...………………………………………….47
Apéndice B. Especificaciones Mínimas en la Dieta PIC y Ejemplo de Dieta para Sementales….....48
Apéndice C. Sistemas automatizados de colección, Instrucciones paso a paso para su uso..........49
Apéndice D. Empaque de Dosis de Semen para Envío Usando Doble Hielera…............................52
Apéndice E. Guía de Preparación del Diluyente ………………………………………........................55
Apéndice F. Preparación de la Muestra de Agua para Análisis por Terceras Partes…………...........56
1
Lista de Figuras, Fotos y Cuadros
Lista de Figuras, Fotos y Cuadros
Figura 1. Esquema de la Producción de Hormonas y Regulación de la Producción de Semen............................5
Cuadro 1. Proceso de Maduración del Semental………………………..…….................……………………............6
Foto 1. Flujo de Producción Espermática……….……………….........................................................………..........6
Foto 2. Órganos Reproductivos del Verraco….……………………………………....................……………….......…7
Cuadro 2. Factores de Manejo que Impactan la Calidad del Semen……………………………….......................13
Cuadro 3. Variables Ambientales del Edificio y Recomendaciones de Condiciones Optimas…………..............14
Figura 2. Velocidad Variable del Ventilador y su Relación con CFM………..…………………….....………...........16
Cuadro 4. Estimación de CFM Dependiendo del Tamaño del Ventilador……………………................................16
Foto 3. Condición Corporal Delgada.....................................................................................................................18
Foto 4. Condición Corporal Normal...........................................................................................…..........…….......18
Foto 5. Condición Corporal Obesa.......................................................................................................................18
Cuadro 5. Impacto de Micotoxinas en Alimento sobre el Desempeño del Semental…...................………..........20
Cuadro 6. Intervalo de Colección por Edad del Semental en Líneas Genéticas Terminales……………..............24
Cuadro 7. Recomendaciones de Densidades Basadas en Peso, Temperatura y Distancia a Viajar…................27
Figura 3. Flujo del Laboratorio…………………………………………………...................……………………..........28
Cuadro 8. Parámetros para Calidad del Agua y sus Especificaciones…..………………............…………...........29
Cuadro 9. Tipos de Contaminación Microbiológica………………………………..................…………………........29
Cuadro 10. Especificaciones de la Calidad del Agua para Laboratorio………………………...........………..........30
Cuadro 11. Criterio de Aceptación de la Calidad del Semen………………………....................……………..........31
Cuadro 12. Directrices del Fabricante para la Preparación de Muestras para Revisiones de la Motilidad..........34
Cuadro 13. Ejemplo de Sistema de Registro del Diluyente ………………………….....................………….........34
Foto 6. Ejemplo de Suavizador de Agua…...........................................................................................................36
Foto 7. Medidor de Agua de Osmosis Inversa......................................................................................................36
Foto 8. Tanques de Desionizacion para Sistemas de Agua..................................................................................37
Foto 9. Sistema Micron...................................................................................................................…...................37
Foto 10. Ejemplo de Lámpara UV.........................................................................................................................37
Cuadro 14. Medida de Control de Calidad y Frecuencia de Medición……………….......………………….......….38
Cuadro 15. Indicadores Clave de Desempeño para Centros de Sementales………………………………...........40
Figura 4. Células Viables por Eyaculado por Línea Genética por Semana de Producción..................................41
Cuadro 16. Células Viables por Eyaculado por Línea Genética Promediado por 5 Semanas de Producción…..42
Figura 5. Promedio de dosis por Colección, por Edad y Línea Genética, asumiendo Dosis de 2500 millones
de Células Espermáticas Viables y un Promedio de 1.2 Colecciones por Semana por la Vida del
Útil del Semental....................................................................................................................................42
Cuadro 17. Resumen del Promedio de Dosis por Colección, por Edad y Línea Genética.................……….......43
Figura 6. Realización del Semental Terminal.......................................................................................................43
2
Introducción
Introducción
Bienvenido a la última versión del Manual de Manejo de
Centro de Sementales. Esperamos que lo encuentre útil para
su operación. Ahora más que antes, los studs de sementales
deben estar a la vanguardia en la incorporación de nuevas
tecnologías que ayuden a producir dosis de semen de la más
alta calidad, mediante evaluaciones consistentes y precisas,
mientras aseguramos la salud y bienestar de los sementales. Lo
que hacemos en la posta de sementales es vital para alcanzar
las metas de producción y mantener nuestra ventaja competitiva
global en el futuro.
Creemos que la información incluida en el manual será muy
útil para enseñar a los nuevos empleados, así como desafiante
para el personal experimentado, reevaluando el área de
sementales y los procesos del laboratorio. La producción de
semen es revisada así como los manejos área de machos y
el laboratorio, en el orden de mejorar la calidad del semen y
producción del centro.
PIC se compromete a hacer mejoramientos en los procesos
de los centros de sementales ya funcionando. Además, somos
impacientes en la búsqueda de nuevos conocimientos que
garanticen que los productores sigan siendo competitivos a
nivel mundial.
3
4
Parte 1: Anatomía y Fisiología General
El cerebro produce las hormonas GnRH (hormona liberadora
de gonadotropina), LH (hormona luteinizante) y FSH (hormona
folículo estimulante), las cuales trabajan en conjunto para
promover y regular la producción de testosterona (T) y, por
último, el desarrollo de las células espermáticas y la conducta del
macho (Figura 1). Estos procesos tienen que ocurrir para que la
reproducción sea posible.
Figura 1
Esquema de la Producción de Hormonas y
Regulación de la Producción de Semen
El proceso de desarrollo testicular y el desarrollo de células
espermáticas del semental comienza tempranamente durante
la etapa fetal con una conducta reproductiva que parte desde el
primer mes y tiene un incremento en la producción de semen a los
6 meses (Cuadro 1).
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Cuadro 1
Edad
Proceso de Maduración del Semental
Proceso de Maduración
Feto (día 20 – 40 gestación)
División de células germinales y diferenciación
Feto (día 60 gestación)
Descenso testicular desde el abdomen hasta el escroto
1 – 2 meses
Muestra comportamiento de monta
3 meses
2da división de las células germinales y aumento de los testículos
en relación al peso corporal
4 meses
Espermatozoides aparecen en túbulos seminíferos y pueden ocurrir erecciones
5 ½ meses
Inicio de la pubertad con presencia de espermatozoides en el eyaculado
6 – 18 meses
Aumenta tamaño de testículos, concentración de semen y volumen de eyaculado
(Knox, 2003)
Los testículos son responsables de la producción de
espermatozoides y testosterona. Los espermatozoides son
producidos y llevados hacia el centro de cada testículo o
mediastino (área blanca) y luego continúan hacia la cabeza del
epidídimo (Foto 1). Un semental sexualmente maduro es capaz
de producir 16 x 109 espermatozoides por día desde ambos
testículos (Senger, 2005).
• La producción espermática, o espermatogénesis, es un
proceso altamente complejo que ocurre en compartimentos
especializados en los testículos llamados túbulos seminíferos.
En cualquier momento, habrá células espermáticas en
diferentes etapas de desarrollo para permitir una continua
producción espermática. El proceso de espermatogénesis
toma en promedio 39 días en un semental (Senger, 2005).
Foto 1. Flujo de Producción Espermática
TP= Parénquima testicular, EH= Cabeza del epidídimo
ET= Cola del epidídimo, M= Mediastino
(Senger, 2005)
6
El epidídimo se compone de tres secciones incluyendo la cabeza,
cuerpo y cola. Cada sección juega un papel en el almacenamiento
de los espermatozoides, en su sustento y en la finalización del
proceso de maduración (9-14 días). Las células espermáticas deben
transitar a través del epidídimo para adquirir el potencial para la
fertilización. Sin el epidídimo, la reproducción del semental no sería
posible.
Las glándulas sexuales accesorias incluyen la glándula prostática,
glándulas vesiculares, y glándulas bulbos uretrales y son importantes
para la adición de plasma seminal a las células espermáticas. La
función de la glándula prostática es remover la orina y las bacterias
del tracto reproductivo antes de que el espermatozoide entre en la
uretra. Las glándulas vesiculares producen secreciones viscosas y
lechosas en apariencia y componen la mayor parte del volumen del
eyaculado. Por último, las glándulas bulbos uretrales producen la
fracción de gel del eyaculado y son grandes y densas en el semental
(Knox, 2003; Senger, 2005).
Foto 2. Órganos Reproductivos del Verraco
(Senger, 2005)
El pene está dividido en tres secciones; incluyendo la base, pene
y glande del pene. El glande contiene nervios sensoriales y es
responsable del inicio de la eyaculación. La forma del glande es
similar a un sacacorchos, lo que es único en el semental (Senger,
2005).
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Parte 2: Cuarentena y Aclimatación
Típicamente, los sementales entran en cuarentena a los 6 meses de edad
y permanecen ahí entre 4 a 8 semanas. Este periodo de tiempo debe ser
usado para evaluar posibles enfermedades importantes y para establecer
protocolos de vacunación. Dependiendo del número de vacunaciones,
éstas deben ser espaciadas durante el periodo de cuarentena para
distribuir el estrés asociado con las vacunas.
Las instalaciones de la cuarentena y su ubicación dependen de la
densidad de cerdos que hay en la región. Normalmente, una distancia
de 2.4 - 3.2 km (1.5 – 2.0 millas) al stud es preferida, pero en un área
más densa de cerdos es mejor tener la cuarentena más cerca del stud,
pudiendo estar conectados ambos sectores por un pasillo cerrado.
La entrada al centro debe ser cerrada durante el periodo de cuarentena
hasta que se tengan los resultados del diagnóstico de los sementales
que están cuarentenados. Con el desarrollo e implementación de filtros
de aire en la granja, se deben tomar medidas para reducir la posibilidad
de diseminar una enfermedad hacia el centro de sementales. Si el centro
tiene filtros para prevenir la entrada de alguna enfermedad, la cuarentena
deberá tener filtros también. Si el centro no tiene filtros debido a que
se ubica en un área de baja densidad de cerdos, el aire de salida de
la cuarentena puede ser filtrado para prevenir la aparición de alguna
enfermedad. Los filtros pueden ser abiertos después de la evaluación,
cuando se indique que el grupo es negativo a las enfermedades en
cuestión.
Que Hacer:
• Tener un baño con ducha separado del edificio.
• Los trabajadores del centro pueden hacerse cargo de la unidad de
cuarentena al final del día, con un tiempo de vacío de una noche
antes de volver al stud.
• Realizar un muestreo estadístico inicial y evaluar a los sementales
dentro de los primeros siete días desde la llegada. Sin embargo,
al final del periodo de cuarentena se deberá evaluar al 100% de la
población.
• En el caso de que la cuarentena esté lejos del centro de machos,
asegúrese de que el camión de transporte sea lavado, desinfectado
y secado antes de mover los machos desde la cuarentena hacia el
stud.
• Mueva los sementales al centro tan pronto como sea posible
después de recibir los resultados negativos.
Que No hacer:
• Ubicar el edificio de cuarentena muy cerca del centro de machos
(menos de 400 metros) si no tiene filtros de salida aire y el centro
principal no tiene filtros de aire.
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Los gerentes pueden elegir entrenar a los sementales en cuarentena o
en el centro. Cualquiera de las opciones funcionará mientras se cuente
con un protocolo adecuado de entrenamiento en el lugar (ver Parte 8:
Entrenamiento).
Los sementales deben ser alojados individualmente y no deben ser
mezclados durante la transferencia al centro de machos.
Se debe registrar diariamente la temperatura máxima y mínima de la
posta.
Los sementales deben ser aislados tras la entrega desde la granja
fuente, según acuerdo comercial de PIC (Condiciones de Venta).
El edificio debe ser lavado, desinfectado y secado entre cada grupo
de sementales que ingrese ala cuarentena. Se recomienda un periodo
de reposo de 1 día después de una apropiada limpieza, desinfección y
secado.
El periodo mínimo de aislamiento es de 30 días después de la última
entrada de sementales a la unidad de cuarentena.
Todos los sementales en cuarentena deben ser clínicamente
monitoreados diario. Se debe registrar la información de cada individuo
que presente signos clínicos o requiera tratamientos. Cualquiera de
los sementales que no esté comiendo o esté clínicamente enfermo,
se le debe registrar su temperatura, ser monitoreado y manejado
individualmente. El aumento de la incidencia de animales que no comen
o que se encuentran en estado febril día tras día, es un indicador de
la introducción de una enfermedad. Es recomendado que el Gerente
del centro de sementales notifique a su Veterinario si ocurre alguna
enfermedad clínica o muerte de machos.
La evaluación para la liberación de los sementales hacia la posta incluye
lo siguiente:
• Evaluar una muestra estadística de los sementales a los 7 días de
llegada.
• Evaluar serológicamente para PRRS al 100% de los sementales al
término de la cuarentena, antes de la liberación de los sementales a
la posta, usando ELISA (individual) y PCR (pool de cinco).
• Asegurar que el laboratorio de diagnóstico corra el PCR antes que la
prueba de ELISA para evitar contaminación. Un Médico Veterinario
debe determinar que la población es negativa antes de ingresar los
animales al centro principal.
• Los requerimientos de evaluación de enfermedades variarán de país
en país y región/estado. Consulte a su Veterinario.
• Vea Parte 10: Bienestar y Salud, para detalles adicionales en
evaluaciones en cuarentena.
9
No mueva a los sementales de la cuarentena al centro de machos
si PIC le notifica algún problema de salud en la granja fuente o si
la cuarentena está pasando por un brote de alguna enfermedad.
Antes de liberar a los animales de la cuarentena hacia el centro,
comuníquese con su Veterinario de granja o con el Departamento
de Aseguramiento Sanitario de PIC para verificar el estatus actual
de salud de la granja fuente.
La bioseguridad del edificio de cuarentena debe ser mantenida
de forma estricta y se debe requerir que todo el personal tome un
baño al entrar y al salir del edificio de cuarentena.
• El personal de servicio que entra al edificio de cuarentena
debe seguir las mismas restricciones usadas en el centro
y debe adherirse a las mismas reglas sobre tiempo de vacío
sanitario.
• El equipo de producción puede visitar y trabajar en la unidad
de cuarentena después de trabajar en el centro, pero debe
cumplir con una noche de vacío sanitario antes de volver a
ingresar al stud.
PIC informará al personal del centro sobre cualquier cambio
significativo en el estatus sanitario de la granja fuente de PIC. El
stud o sus Veterinarios serán proveídos con los resultados de las
evaluaciones serologicas realizadas en la granja fuente para los
sementales que son destinados a ser colocados en el edificio de
cuarentena.
10
Parte 3: Manejo General de los Sementales
Se debe llevar un registro de todos los sementales que estén en
tratamiento o que no estén comiendo lo suficiente.
Cuando se coloque a los sementales en el centro, éstos deben ser
ubicados por línea genética y luego por edad. Agrupe juntos a los
machos jóvenes y evite mezclarlos con machos adultos.
Parte 3: Manejo General de los Sementales
El administrador o el técnico asignado debe supervisar los
corrales diariamente, identificando a los animales que no han
comido lo suficiente, levantando a los sementales al momento
de la alimentación para buscar signos de cojeras y también para
identificar problemas de tos u otros problemas respiratorios.
Consulte a su Veterinario por protocolos de tratamiento.
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Parte 4: Manejo del Área de Sementales
Las recomendaciones de manejo aplican tanto para la zona de
cuarentena como para el centro principal.
Los sementales son animales tranquilos, pero el equipo del área
necesita prevenir cualquier riesgo innecesario cuando los entrena,
muestrea, trata, pasea y los colecta. Cuando lleve animales a la
zona de colección o los saque de ella, camine detrás de los machos
y utilice una tabla de manejo (Para mayor información vea la Parte
10: Bienestar Animal y Salud).
La temperatura óptima para la producción de espermatozoides es
entre 18 – 20°C (64 - 68°F). Rociadores, atomizadores, refrigeración
por evaporación y aire acondicionado son usados para controlar
la temperatura de la posta pero se debe evitar crear un medio
ambiente húmedo.
Los corrales deben tener una adecuada ventilación y un movimiento
de aire suficiente para reducir los niveles de amoniaco y los niveles
de olor, manteniendo una temperatura ambiental aceptable tanto
para los sementales como para el personal del stud (Ver Parte 5.
Ventilación y Flujo de Aire). La parte trasera de las jaulas no debe
ser sólida, debe ser de barras abiertas para crear un flujo adecuado
de aire y una temperatura óptima alrededor de los testículos de los
sementales.
La tasa mínima de flujo de agua es 1cuarto de lt/min (250 ml /
min), ya que los sementales consumen en promedio 5.6 – 7.8 L
(1.5 – 2 galones) de agua por día. El flujo de agua se debe medir
trimestralmente (una vez a la semana durante los meses de verano)
para asegurarnos de que los sementales tienen suficiente acceso al
agua y así prevenir la falta de agua en los tejidos o la deshidratación.
Las evaluaciones físico químicas del agua deben ser realizadas
dos veces al año para detectar niveles de impurezas, minerales y
bacterias. Los Municipios locales pueden requerir evaluaciones más
frecuentes.
El pediluvio con una solución de sulfato de cobre debe ser usado
a la entrada y salida del edificio de cuarentena. En la posta, los
sementales deben caminar a través del pediluvio con sulfato de
cobre durante el camino de regreso a sus jaulas después de
la colección. Esto ayudará a endurecer las pezuñas y prevenir
problemas de cojera.
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Se debe colocar tapetes bajo los sementales con problemas
en los pies o pezuñas para asegurar su confort y promover su
recuperación. Debe haber suficientes tapetes para cubrir al 10% de
los machos de la posta.
Revise y asegúrese de que NO existe flujo de corriente eléctrica
por las líneas de agua y equipos.
Situación
Factores de Manejo que Impactan la Calidad del Semen
Descripción
Efecto en Sementales
Referencia
Cuadro 2
Recuperación
Alta temperatura
>29°C (85°F) por 3
Fuerte aumento en
McNitt y First, 1970
ambiente
días o más
espermatozoides
Wetteman et al., 1976
2 meses
Suriyasomboon, 2005
6-8 semanas
McNitt y First, 1970
8 semanas
Kennedy y Wilkins, 1984
Descanso 2 semanas
anormales por eyaculado
Temperaturas
26 - 29°C (79 - 85°F)
Incremento gradual en
ambientales
+ 75% o más de
espermatozoides
moderadas y alta
humedad por 4
humedad
semanas o más
Fiebre (causada por
Temperatura
Fuerte aumento en
vacunación o
Corporal >39°C
espermatozoides
enfermedad)
(103°F) por 2+ días
Regímenes de
Decremento gradual en
colección
>3 veces por
número de
aumentados y
semana
espermatozoides
erráticos
Diferentes factores de manejo en la granja pueden impactar la
calidad del semen (Cuadro 2).
normales por eyaculado
Reducción de
>15% reducción en
Libido reducido y
nutrientes en la
energía o proteína
decremento gradual en
ingesta
en ingesta por más
espermatozoides
de 8 semanas
normales por eyaculado
>16 horas de luz o
Decremento gradual del
Fotoperiodos
<8 horas de
libido y la producción de
Subóptimos
oscuridad
espermas no es
Variable. Depende en la
Louis et al., 1994 a, b
severidad de la
restricción
Sancho, 2004
NA
consistente
Bajo volumen de semen,
Sementales
<6 a 7 meses
bajo número de
inmaduros
dependiendo del
espermatozoides
genotipo
normales y presencia de
Tiempo necesario para
Kennedy y Wilkins, 1984
alcanzar madurez
gota citoplasmática
Después de que las colecciones son terminadas, el área de colección
debe ser lavada diariamente con agua caliente a alta presión. Las áreas
de limpieza incluyen el área de pre-calentamiento, corrales o jaulas de
colección, potro de monta y tapetes. Después del lavado, el área debe
estar limpia de material orgánico (ej. excremento, semen). Una vez por
semana se debe desinfectar el área de colección después del lavado
con un producto hecho específicamente para instalaciones de animales.
Asegúrese de incluir todas las superficies (ej. Paredes, barras de las
jaulas).
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Parte 5: Ventilación y Flujo de Aire
Optimizar las condiciones ambientales para los sementales es algo crítico
por varias razones:
• Se optimiza la producción de células espermáticas y se mejora la
calidad del semen.
• Se regulan los requerimientos de alimento para mantenimiento diario.
• Controla el crecimiento bacteriano en el ambiente.
• Promueve la salud y reducción de cojeras.
El objetivo de un programa de ventilación es alcanzar la temperatura
deseada del cuarto (TDC o DRT por sus siglas en inglés) y humedad, a
través de la remoción del calor húmedo para crear confort.
TDC se refiere a la temperatura óptima para el confort del semental en un
ambiente dado. Se deben realizar los ajustes necesarios para alcanzar la
TDC en diferentes tipos de ambientes, ya sea con distintos tipos de pisos
o diferentes tipos de construcciones.
• Diferentes TDC han sido asociados a distintos “puntos de partida”
(punto en el cual el ventilador aumenta su velocidad) considerando
ambientes variables para alcanzar el máximo confort del semental
(Cuadro 3; extracto de la Herramienta Modelo de Ventilación PIC,
disponible a petición).
Cuadro 3
Variables Ambientales del Edificio y Recomendaciones de Condiciones Optimas
Ejemplo 1
Ejemplo 2
Ejemplo 3
Ejemplo 4
Tipo de Piso
Slats
Slats
Solid
Solid
Tipo de Construcción
Sólida a los lados
Cortina
Sólida a los lados
Cortina
Temperatura Deseada del Cuarto
66°F, 19°C
68°F, 20°C
63°F, 17°C
65°F, 18°C
Punto Partida en Invierno
69°F, 21°C
71°F, 22°C
66°F, 19°C
68°F, 20°C
Punto de Partida en Verano
65°F, 18°C
67°F, 19°C
62°F, 16°C
64°F, 18°C
La Humedad Relativa en la posta de sementales debe ser entre 40 y
65%.
La Humedad y TDC son controladas mediante el manejo y
manipulación del flujo de intercambio de aire entre el interior y exterior,
lo que es medido en pies cúbicos por minuto (CFM).
• Durante la respiración normal del semental se produce calor y
vapor de agua, causando un incremento de la temperatura y
humedad del ambiente, a menos que exista un buen intercambio de
aire.
• Se recomienda un flujo de aire mínimo de 14 CFM para mantener
los requerimientos de temperatura y humedad.
14
La velocidad del aire que ingresa es importante para lograr una mezcla
efectiva de aire fresco y poder eliminar las corrientes y áreas de
condensación. La velocidad es medida en pies por minuto (FPM por
sus siglas en Ingles).
• Una velocidad de aire de 800 es óptima para ventiladores que
funcionan a alta velocidad, mientras que 400 FPM es mucho más
práctico en ventiladores que funcionan a baja velocidad.
• Rutinariamente evalúe la velocidad del aire para asegurar una
mezcla apropiada de aire en la sala.
Se requerirán calefactores adicionales para controlar las temperaturas
mínimas críticas y son esenciales en situaciones de emergencia.
• Cada edificio requiere la adición de calefactores adicionales para
asegurar el control de temperaturas bajas críticas y calefactores
para ser usados en situaciones de emergencia.
• Si los calefactores están programados demasiado cerca al punto
óptimo de temperatura, el consumo de gas o propano será
excesivo. Programe el calefactor con un mínimo de 2 grados
menos que el óptimo e incremente la velocidad del ventilador al
punto óptimo. Ej. Si la temperatura óptima es de 21ºC, los
calefactores se encenderán a los 18ºC.
• Cuando la humedad y temperatura están afuera del rango óptimo,
se requerirá cambiar el flujo de aire para dejar salir apropiadamente
el exceso de calor y reemplazarlo con aire más fresco y más seco.
• El aire más fresco retiene menos vapor de agua, permitiendo una
caída efectiva de la humedad relativa en la sala.
• Incrementar el flujo de ventilación para mejorar la humedad relativa
cuando la temperatura exterior es superior a la deseada, no
mejorará la humedad relativa.
La secuencia de los ventiladores es establecida para mantener la
temperatura de la sala tan cerca como sea posible a la temperatura
deseada del cuarto, sin causar mayores variaciones de la temperatura
mediante la remoción progresiva de calor y humedad.
• La velocidad de los ventiladores no es igual a los CFM (ej. el 50%
de la velocidad de los ventiladores no equivale al 50% de
los CFM). Por esto, es importante entender la relación entre las
velocidades de los ventiladores y tasa de salida de aire (Figura 2).
15
Figura 2
• Tamaños diferentes de ventiladores, juanto con la presencia
de un cono, influencian los CFM que sale (Cuadro 4)
Cuadro 4
Estimaciones de CFM Dependiendo del Tamaño del Ventilador
CFM, ventiladores con cono
Tamaño, cm
CFM, salida
16
20
450
500
25
1100
1200
31
1500
1600
46
3500
3600
61
5700
6000
91
9700
10000
122
17000
18000
127
22000
23000
140
23000
24000
Para proveer un ambiente óptimo a los machos se requiere de
muchos factores que deben operar en conjunto. En la medida que
los CFM aumentan se deben considerar lo siguiente:
• Cada pulgada2 de inlet del techo provee 4.5 ft3 de aire por
minuto.
• Cada pulgada2 del inlet provee 2.5 ft3 de aire por minuto.
• Si el sistema no tiene el apropiado número de inlets abiertos
y la cantidad apropiada de inlet en el ático, no importa
cuántos ventiladores estén trabajando, el aire no entrará a la
nave efectivamente.
• Las curvas de los motores dependen de los diferentes
tamaños de los ventiladores y se obtienen de la relación entre
los voltajes entregados al motor y las revoluciones por minuto
resultantes (RPM).
• La adaptación incorrecta de la curva del motor y el tamaño
del motor puede quemar los ventiladores o causar velocidades
de ventilación no precisas, ej. Un ajuste del 60% en la
velocidad de ventilación puede resultar en 90% de velocidad
de ventilación.
• La tasa de intercambio de aire puede aumentar debido a que
aumentan las temperaturas del exterior, hay cambios de
estación o incrementa la temperatura interior porque aumenta
la actividad de los machos.
• Se deben hacer cambios moderados en la ventilación y se
deben evitar incrementos del doble de CFM.
Se puede utilizar agua para refrescar el ambiente por medio de
goteros o enfriamiento por evaporación. El propósito de los sistemas
de gotero es refrescar los testículos para optimizar la temperatura
para la producción de espermatozoides.
• Tener más agua en el aire y en el piso incrementa el riesgo
de elevar la humedad del ambiente, aumenta la probabilidad
de desarrollar cojeras y crea un ambiente ideal para el
crecimiento bacteriano.
• Para secar el piso se debe aumentar la tasa de ventilación.
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Parte 6: Condición Corporal
Parte 6: Condición Corporal
La condición corporal es importante para mantener óptimos
niveles de libido, producción de semen y una adecuada habilidad
de montar en el potro de colección. El objetivo es que el 90% de
los sementales del stud tengan una condición corporal normal
(Vea las Figuras 3, 4 y 5).
Fotografía 3: Condición Corporal Delgada
Fotografía 4: Condición Corporal Normal
Fotografía 5: Condición Corporal Obesa
18
Parte 7: Alimentación y Nutrición
Los sementales en condiciones corporales normales deberán ser
alimentados con 2.3-2.7 kg. (5-6 lb.) de alimento una vez al día.
Ajuste la alimentación para lograr el objetivo corporal deseado
(Ver Parte 6: Condición Corporal). Un semental obeso debe ser
limitado a 1.6-1.8 kg. (3.5-4 lb) de alimento al día, mientras que un
semental delgado deberá recibir 3.2-3.6 kg (7-8 lb) al día.
Si se utilizan comederos automáticos de caída, pese muestras
una vez por trimestre para verificar la precisión del comedero.
Las mediciones deberán efectuarse con cualquier ajuste de
ingredientes para considerar los cambios de densidad.
Los sementales deben ser alimentados a libre acceso cuando
llegan a la cuarentena, esto permite mejorar la transición hacia
el edificio. Este nivel de alimentación debe ser mantenido por 2
semanas y después se debe reducir a 2.3 kg/día. (5 lb.) por lo que
resta del periodo de cuarentena.
Los comederos deben ser ajustados cada 2 semanas para
mantener una condición corporal apropiada y una buena
producción de semen. El mantenimiento adecuado de la condición
corporal ayudará a mantener un buen nivel de libido y una
correcta habilidad de trabajo de los sementales.
Un adecuado nivel de consumo y la fortificación de nutrientes
deben ser provistos para optimizar la producción de semen (véase
los Apéndices A y B).
Las micotoxinas pueden tener varias consecuencias detrimentales
sobre el desempeño del semental, incluyendo impactos
negativos en la calidad del semen (Cuadro 5). Evite el uso de
los subproductos o co-productos donde se puedan encontrar
micotoxinas. Seleccione ingredientes de alta calidad y monitoree
regularmente los niveles de micotoxinas en ellos.
19
Cuadro 5
Impacto de las Micotoxinas en el Alimento sobre el
Desempeño del Semental.
Micotoxina
Efecto
Retraso de la pubertad
Zearalenona
Reduce el tamaño testicular
Disminución del libido
Pobre calidad espermática
Edema del prepucio – pérdida de vello
Aflatoxinas
Disminución de la concentración espermática
Incremento de anormalidades morfológicas
Reducción de la capacidad de fertilización
No come
Ocratoxina
Úlceras gástricas
Tricotecenos
No come
(T2, DON, DAS)
Vómito
(P. Matzat, resumen de varias fuentes)
20
Parte 8: Entrenamiento
Entrenamiento para Colección Manual
Nunca comience a entrenar a un semental antes de los 150 días de
edad.
Identifique a las personas que estén dispuestas a dedicar tiempo y
sean pacientes para entrenar a los sementales jóvenes. Comience
el entrenamiento entre los 3 a 5 días de la llegada del semental.
Asegúrese que un sistema de registro se encuentre en su lugar
para registrar el progreso de cada semental. Todos los machos
deben estar entrenados después de 4 semanas de iniciado el
entrenamiento.
Antes de iniciar el entrenamiento, ajuste la altura del potro para que
esté a la altura de los sementales jóvenes. El área de recolección
deberá estar libre de corrientes y tener un buen piso.
Se debe seguir el siguiente protocolo:
• Remover cualquier fuente distractora en el área de colección.
• Asegurarse que el semental esté cómodo con el contacto
humano y asegurarse de la seguridad del personal.
• Apriete el divertículo del prepucio para estimular al semental
y haga todo el esfuerzo para que el semental ponga atención al
potro.
• Una vez que el semental monte el potro, asegure el pene y
proceda con la colección.
• Observe posibles problemas anatómicos en los sementales.
(por ejemplo, pene flácido, frenillo persistente) en este
momento.
• El siguiente semental deberá ser colocado en la zona de
calentamiento para ser preparado para el entrenamiento
mientras que el primer semental está siendo recolectado.
• Si el semental no muestra interés para montar el potro en
10 minutos, llévelo al área de calentamiento y administre una
prostaglandina natural. Espere 5 a 10 minutos y trate
nuevamente de colectarlo.
• Una vez que el semental ha sido entrenado, repita el proceso 3
días seguidos para reforzar su experiencia de aprendizaje.
• Una vez que los sementales ya estén entrenados, deberán ser
recolectados 1 vez por semana.
21
Entrenamiento usando un Sistema de Colección Automátizado
El sistema de colección automática incluye un cérvix artificial (CA),
un brazo deslizante, un cérvix artificial sujetador y un potro. El
CA imita el cérvix de la cerda y brinda presión para estimular al
semental. El brazo deslizante permite movimientos hacia delante y
atrás durante la colección.
• Sigua los pasos anteriormente mencionados para el primer día
de recolección.
• Al segundo día, colecte la primera porción del eyaculado
manualmente por aproximadamente 1 minuto con la mano
izquierda.
• Después de 1 minuto asegure el pene al sistema de colección
automática y permita al semental terminar la colección.
• Repita el proceso en el día 3 de entrenamiento.
• El tiempo de aclimatación de cada semental al sistema
dependerá en cada individuo.
Vea el Apéndice C para ver las instrucciones con fotos.
22
Parte 9: Colección del semental
La higiene deberá ser mantenida durante la colección para limitar
la contaminación bacteriana. El método del guante doble es
preferido.
Los termos recolectores deberán ser preparados un día antes de
la colección y deben ser almacenados en un área limpia, cerrada,
higiénica y tibia (37°C o 98°F) hasta su uso.
El eyaculado del semental tiene 4 fracciones:
• Pre-espermática
• Rica en espermatozoides
• Post-espermatica
• Gelatinosa (tapón)
Los sementales siempre deberán ser llevados al área de
calentamiento antes de la colección. Esto le permite al semental
prepararse para ser colectado. El prepucio debe limpiarse en
el área de calentamiento y asegúrese de que el divertículo del
prepucio esté libre de contenidos. El vello alrededor del prepucio
deberá ser recortado periódicamente.
El semen deberá ser colectado en un contenedor limpio
desechable, incluyendo bolsas de polietileno, contenedores de
plástico, etc. Todos los métodos deberán utilizar un filtro para
remover el material gelatinoso.
Una vez montado en el potro, el semental hará intentos de
desenvainar el pene y con la mano con un guante limpio atrape y
retenga el glande del pene (sacacorchos) y sigua el movimiento
del semental hasta que se sujete.
Evite colectar la fracción pre-espermática dentro del contenedor.
Esta es típicamente una emisión clara que contiene orina y
bacterias.
La fracción rica en espermatozoides es seguida de la fase preespermática. Recolecte el semental hasta que termine con la
eyaculación. Típicamente este proceso toma de 8 a 10 minutos,
algunos sementales pudieran tardar más.
Después de la recolección, el filtro deberá ser removido de la
bolsa en la zona de colección y no debe entrar al laboratorio.
23
La identificación clara y precisa del semental, la genética y el
técnico o el colector deben ser registrados y pegados a la bolsa o
al contenedor que contiene el semen.
24
Todos los sementales, independientemente de la demanda de
semen, deben ser colectados regularmente. Una guía para los
intervalos de colección de machos terminales se presenta en
la Cuadro 6. Se debe entender que cada semental y/o líneas
se pueden desempeñar mejor a diferentes intervalos que los
sugeridos; asumiendo que las recolecciones sean realizadas
regularmente. Generalmente, las líneas maternas deberán ser
recolectadas 1 vez por semana sin importar la edad.
Cuadro 6
Intervalos de Colección por Edad del Semental
en Líneas Genéticas Terminales
Edad
Intervalo
<12 meses
1 x semana
≥12 meses
2 x semana
Parte 10: Bienestar Animal y Salud
Temperatura Corporal y Apetito
Pruebas de Diagnóstico
Se deben realizar pruebas semanales de PRRSv PCR de sangre
o suero con la frecuencia y número adecuado para alcanzar una
muestra estadística mínima de 95% de nivel de confianza con 5%
de prevalencia basados en un tipo de muestra y la sensibilidad/
especificidad de la prueba PCR. Un muestreo más riguroso
es dejado a criterio del stud. Muestras en pool hasta 5 son
permitidas.
Se debe medir la temperatura rectal de los sementales que no
comen o que presenten signos clínicos de alguna enfermedad.
Si la temperatura del semental se mantiene >40°C (104°F), el
semental no deberá ser colectado ese día y se deberá notificar
al Veterinario. Se debe considerar un diagnóstico de trabajo,
incluyendo pruebas de PRRSv PCR en suero o hisopos de
sangre. Si el número de sementales que no comen/o en estado
febril aumenta de un día a otro, la posta debe ser cerrada y se
debe iniciar un diagnóstico completo.
Las pruebas para PCR deben ser colectadas y enviadas de
acuerdo al protocolo del laboratorio de diagnóstico.
Se recomiendan revisiones mensuales de PRRSv ELISA (30
muestras individuales) o pruebas semanales de un número similar.
Considere hacer pruebas inmediatas de PRRSv PCR de
muestras de sangre de cualquier semental con fiebre, que no
coma o presente otros signos clínicos. Estas muestras deben ser
examinadas por PCR de manera individual, en lugar de ser parte
de un pool.
La técnica del hisopo de sangre ha sido utilizada durante los
últimos años y es una manera efectiva de recolectar sangre para
pruebas semanales de PRRS PCR. Otro método utilizado es la
vena tarsal en la parte posterior de la pierna del semental, es una
buena técnica para recolectar sangre para PRRS PCR y ELISA.
Contacte a su veterinario de granja o instrucciones de PIC acerca
de la recolección de sangre.
25
Criterios para el cierre de la Posta
La decisión de suspender el envío de semen desde el stud recae
fuertemente en el juicio del Gerente y Veterinario de la granja.
El semen no debe ser colectado para el envío si se tiene alguna
duda del estatus de salud de cierto semental. Las temperaturas
deben ser registradas si el semental es sospechoso de tener
algún problema de salud. La suspensión de la venta de semen
debe ser considerada cuando una enfermedad clínica (ejemplo:
tos, diarreas, falta de apetito) sea evidente o existan temperaturas
elevadas (>40°C o 104°F) en más del 5% de los sementales. Si el
número de sementales con fiebre y con falta de apetito es menor
al 5% pero está aumentando diariamente, la posta deberá cerrarse
para elaborar un trabajo de diagnóstico. Otro motivo para detener
el envío de semen es si el Veterinario o el Gerente de la granja
tuviesen otras preocupaciones de riego para la granja, como
problemas de bioseguridad. Las sospechas de enfermedad clínica
o sub-clínica deben ser reportadas al Veterinario de la granja para
determinar si se puede seguir distribuyendo el semen.
Se debe confirmar los resultados positivos para enfermedades
transmitidas vía semen, como PRRS.
Manejo y Eutanasia
Los sementales maduros son grandes y fuertes y pudieran causar
lesiones a los cuidadores durante el manejo de los animales. Se
debe tener especial cuidado cuando se mueven, tratan o toman
muestras de los sementales. Si es necesaria una examinación
detallada o se requiere de un tratamiento, el semental debe ser
manejado de manera segura, efectiva y humanamente moderada.
Las técnicas apropiadas para realizar eutanasia se encuentran
en el documento “Eutanasia para Cerdos en la Granja:
Recomendaciones para el Productor” (AASV y NPB,2009).
26
Transporte de los Sementales
Cuadro 7
Recomendaciones de Densidades Basadas en Peso, Temperatura y Distancia a viajar
Peso
Requerimientos de ft² por Semental
>90°F (32°C) y
80-90°F (27-32°C) >90°F (32°C)
>250 miles
lb
Kg
<80°F (27°C)
241-258
109-117
3.6
3.9
4.3
5.1
259-305
118-138
4.3
4.7
5.1
6.1
306-364
139-165
4.9
5.4
5.9
7.1
365-399
166-181
5.6
6.1
6.7
8
400-449
181-203
6.4
7
7.7
9.2
450-499
204-226
6.9
7.6
8.3
10
500
227
7.6
8.4
9.1
10.9
Los conductores que transporten sementales deben estar
certificados para TQA®. La densidad durante el transporte deberá
estar basada en peso, temperatura y distancia a viajar (Cuadro 7).
27
Parte 11: Gestión del Laboratorio
Al personal de la granja NO SE LE DEBE permitir entrar al
laboratorio en ningún momento, a menos que se hayan bañado y
cambiado de ropa.
El personal del laboratorio deberá usar una ropa diferente al que
usan los trabajadores del área de sementales. Estos artículos
deben lavarse por separado de la ropa de la granja.
• Batas de laboratorio y redes para el cabello deberán estar
disponibles para el personal del laboratorio.
• No se permite comer o fumar en el laboratorio.
• Las mesas deberán ser limpiadas diariamente con una
solución clorada después de que la producción ha sido
finalizada.
• Las mangueras deben ser enjuagadas con agua desionizada
(DEI) mojadas con alcohol, enjuagadas nuevamente y
colgadas para su secado antes de la producción del día
siguiente.
El laboratorio deberá estar listo para que el procesamiento de
semen sea realizado con eficiencia (Figura 3).
Figura 3. Flujo del Laboratorio
28
Calidad del Agua
El agua purificada es el componente mayor en una dosis de semen y
por lo tanto la calidad y control del agua es de suma importancia.
Las opciones son comprar agua purificada (mejor opción para
inventarios con menos de 100 sementales) o instalar un sistema
adecuado de purificación dentro de la posta. El costo puede ser
variable, dependiendo de la calidad del agua y del origen de ella.
Se debe llevar un monitoreo diario para asegurar que la calidad
sea consistente. Muchos studs en Estados Unidos usan un equipo
Myron ‘L’ 250 II para monitorear los Megaohms (MΩ) y tiene que
estar colocado en el laboratorio, ya que arroja un resultado visual de
inmediato.
Los grados y especificaciones del agua, los niveles de
contaminación microbiológica y las especificaciones de calidad del
agua deben estar a la mano para su uso en el laboratorio (Tablas
8-10, ASTM, 1991). El objetivo de los sistemas de agua pura
instalados en los studs de sementales es producir agua entre los
grados Tipo I y Tipo III.
Cuadro 8
Parámetros para Calidad del Agua y sus Especificaciones
Parámetro
Tipo I
Tipo II
Tipo III
Tipo IV
Conductividad Eléctrica, max, µS/cm a 298 K (25°C)
0.056
1.0
0.25
5.0
Resistividad Eléctrica, min, Ω-cm a 298 K (25°C)
18.0
1.0
4.0
0.2
pH a 298 K (25°C)
A
A
A
5.0 to 8.0
Carbón Orgánico Total (TOC), Max, µg/L
50
50
200
No Límite
Sodio, max, µg/L
1
5
10
50
Cloruros, max, µg/L
1
5
10
50
Sílice total, Max, µg/L
3
3
500
No Límite
A: La medida de pH en Tipo de agua I, II, y III ha sido eliminada de esta especificación porque estos grados
de agua no contienen componentes en suficiente cantidad para alterar significativamente el pH.
Cuadro 9
Tipos de Contaminación Microbiológica
Parámetro
Tipo A
Contenido Máximo de bacterias
heterótroficas
Cfu a /mL
Endotoxina, EU /ml
b
a
b
Tipo B
Tipo C
10/1000 mL 10/100 mL 100/10 mL
0.01
0.1
10
0.03
0.25
NA
Cfu = Unidades formadoras de colonias;
EU = unidades de endotoxinas
29
Cuadro 10
Especificaciones de la Calidad del Agua para Laboratorio
Parámetro
Target
Bacteriología
<1 cfu a /mL
Pureza inorgánicos
=18 MΩ @77°F (25°C)
Orgánicos
>0.001 AU@254 nm
Carbono Orgánico total
>50 ppb b
pH
6.8 a 7.2
cfu = unidades formadoras de colonias;
ppb = partes por billón; MΩ = megaohm – cm (resistencia eléctrica)
aa
b
Si las muestras de agua no cumplen con éstas especificaciones, se
deberá realizar un análisis extenso para poder corregir el problema.
Llegada del Semen
Una posta que pasa el semen al laboratorio a través de una ventana,
debe tener una cámara de calentamiento para pre-calentar los
termos de colección antes de la colecta. Debe estar programada a
37°C (98°F).
Una posta que utiliza un sistema de entrega de tubo neumático
debe también tener una cámara de calentamiento cerca al área de
colección.
El eyaculado de los sementales necesita ser claramente identificado
con el arete del semental y con la línea genética. Los técnicos de
granja necesitan evitar pasar contenedores sucios a través de la
ventana.
Los técnicos del laboratorio deben estar atentos cuando el
eyaculado llegue a la ventana, ya que éste debe ser diluido dentro
de los 10 minutos de su llegada.
Evaluación del Semen
Una vez que el semen llega al laboratorio se debe evaluar el color
y el olor para determinar si existe presencia de sangre u orina en el
eyaculado.
El peso total del eyaculado debe ser medido en gramos mediante el
uso de una balanza calibrada.
30
Prepare una muestra para evaluarla, diluyendo el semen fresco con
el diluyente o una solución de citrato de sodio en una dilución 1:20.
Si el eyaculado es muy líquido, una dilución 1:10 deberá ser utilizada
o si es muy cremoso o concentrado utilice una dilución 1:40. Esto es
importante debido a que puede tener un impacto en la precisión al
determinar la concentración del semen.
Cuadro 11
Criterios de Aceptación de la Calidad del Semen
Característica
Umbral
Motilidad Total
≥80%
Espermatozoides normales
≥70%
Gotas Citoplasmáticas, proximales y distales
<15%
Aglutinación
<30%
Un microscopio puede usarse para evaluar la motilidad total usando
una placa cubierta calentada a 37°C y/o un Sistema de Análisis de
Semen Asistido por Computadora (CASA).
Los sistemas CASA pueden evaluar la morfología en la misma
muestra usada para evaluar la motilidad. Si este sistema no es
usado, se debe preparar una muestra y se debe contar 100 células
para tener el porcentaje de células normales en un eyaculado.
Una vez que el semen llega al laboratorio, utilizando un microscopio,
se debe evaluar la motilidad y morfología de los espermatozoides
y los resultados deben cumplir con los estándares de calidad
propuestos (Cuadro 11).
Se debe registrar la presencia de desechos celulares y aglutinación
de células espermáticas.
Menos de un 10% de los eyaculados deben se descartados porque
no cumplen con los criterios de calidad. Si este número es más alto,
hay que realizar un análisis detallado de las razones de desecho
para entender dónde existe el problema.
Determinación de la Concentración
Las opciones para medir la concentración del eyaculado incluyen
hematocitómetro, fotómetro, espectrofotómetro o los sistemas
CASA.
Las técnicas apropiadas de mezclado de semen fresco y de pipeteo
son importantes para asegurar tener una muestra representativa
del eyaculado diluido y así determinar la concentración total
de espermatozoides. Dependiendo del equipo disponible, esto
proporcionará una medición expresada como total de células
espermáticas en millones por ml. de semen fresco.
31
Dilución del semen
El personal del laboratorio necesita saber con antelación cuántas
dosis se necesita hacer para que puedan preparar suficiente
diluyente para un día normal de colecta. Una regla general es
multiplicar el número objetivo de dosis por el volumen total por
dosis y sumar 5 a 10% más para tener suficiente diluyente para la
producción de semen y usos consecuentes como dilución de semen
fresco, derrames, pre-diluciones, u órdenes de último minuto.
Siga exactamente las instrucciones del fabricante del diluyente o
conservador. El peso preciso del agua purificada y del diluyente
es vital para una producción correcta de dosis. Las desviaciones
de esto pueden alterar la osmolaridad de la mezcla. El diluyente
necesita ser continuamente mezclado por 1 hora para permitir que
los componentes de éste se estabilicen antes de agregar el semen.
La temperatura del diluyente debe ser mantenida a 35°C (95°F). Una
colección de semen tiene una temperatura de 37-38°C (98-100°F) y
hay una caída de 2-3 grados de temperatura del eyaculado durante
el proceso de evaluación. Consecuentemente el diluyente necesita
guardarse a 35°C (95°F).
Después que el eyaculado y el diluyente hayan sido mezclados,
observe una muestra al microscopio antes de llenar las dosis.
Los diluyentes pueden contener uno o múltiples antibióticos. Los
antibióticos en el diluyente pueden ser modificados y adaptados a su
situación. Una comunicación abierta con su proveedor es necesaria.
Envasado de las Dosis de Semen
Después de la dilución, el semen debe ser puesto en un baño de
agua a 35°C (95°F) o se deben envasar las dosis inmediatamente.
Antes del envasado, el semen debe ser mezclado suavemente ya
que los espermatozoides se pueden asentar en el fondo.
Todo el proceso, desde el tiempo en que llega el semen a la ventana
hasta el envasado de dosis, debe tomar máximo 20 minutos.
32
Enfriamiento del Semen y Empaque de las Dosis Enfriadas
Para mover, almacenar y enfriar el semen, se pueden utilizar
estantes de alambre o carros de transporte. Esto permite el flujo
de aire fresco y un enfriamiento más uniforme de las dosis de
semen. Las dosis necesitan bajar la temperatura de dilución (35°C
o 95°F) a la temperatura de conservación (15 - 17°C o 59 – 63°F).
Con el uso de diluyentes modernos, las dosis pueden ser movidas
inmediatamente al cuarto frío.
El semen debe ser enfriado por 4 horas antes de su distribución.
Esto es especialmente importante para el semen que es
transportado en una caja doble de espuma de poliestireno™ que
es una combinación más fresca, ya que estas hieleras conservan
una temperatura constante durante el transporte. Se puede
utilizar registradores de temperatura (loggers) para monitorear las
temperaturas en tránsito. La clave es que el semen se enfríe hasta
la temperatura de conservación antes de ser empacado.
Se utilizan cuartos frescos para enfriar y almacenar el semen antes
de que éste sea distribuido. La temperatura debe mantenerse entre
15- 17°C (59 - 63°F). Un ventilador debe ser usado para asegurar
la circulación del aire. Registre diariamente las altas y bajas
temperaturas del cuarto.
Envío y Transporte del Semen
El semen enviado a través de un servicio de mensajería externa, tal
como UPS o FedEx, debe ser empacado en cajas dobles de espuma
de poliestireno™, ya que será entregado al día siguiente. El semen
que se envíe al exterior debe ser empacado y sellado dentro de un
ambiente controlado (17°C o 63°F).
Para pedidos grandes, no se deben empacar más de 200 dosis en
una hielera Styrofoam™ (poliestireno). Por ejemplo, un cliente que
ordena 1200 dosis recibiría 6 hieleras de 200 dosis cada una.
Cuando las temperaturas son mayores a 26°C (80°F) o menores
a 4°C (40°F), las dosis deben ser empacadas utilizando una doble
hielera Styrofoam™ con paquetes de gel en los espacios de aire
en el interior, de otra manera una simple hielera puede ser usada.
En el invierno (<4°C o 40°F) utilice 2 paquetes de gel entibiado
y en el verano (>26°Co 80°F) utilice 1 paquete de gel congelado
(o 2 refrigerados) entre las hieleras. Vea el Apéndice D para más
instrucciones de empaque.
Para el semen que es enviado vía servicio de mensajería interna, la
temperatura debe ser revisada en el lugar de entrega.
33
Parte 12: Control de Calidad
Evaluación de la Motilidad Post-producción
• Garantizar la calidad de las dosis de semen es de vital
importancia. El mejor indicador que el laboratorio tiene que
evaluar es la viabilidad de las dosis conservadas, aplicando
una revisión de motilidad post-producción de todos los lotes y
colecciones de un solo macho.
• Una muestra de cada lote o de una colección de un solo
semental debe ser guardada en un tubo de vidrio de 5 ml.
o en una bolsa usada para empaque. Las muestras deben
ser preparadas para su evaluación de acuerdo a las
direcciones provistas por el fabricante del conservador (ver la
Cuadro 12).
Cuadro 12
Directrices del Fabricante para la Preparación de Muestras para Revisiones de la Motilidad
a
Fabricante Conservador
IMV
Gedil
Magapor
Vitasem
Minitube
Androhep
Muestra
Temp
Time
1-5 ml enfriado, conservado 99°F, 37°C 10 minutos
3 ml enfriado, conservado
99°F, 37°C
Evaluación
Motilidad
5 minutos
Motilidad
5 ml enfriado, conservado 100°F, 38°C 20 minutos
Motilidad
Enduraguard
a
Sólo para propósito de ejemplo. PIC no avala a los fabricantes de diluyentes específicados.
• Las postas deben realizar revisiones de motilidad postproducción al día 1, 3 y 5 como mínimo, donde el día de
colección es día 0.
• Si las dosis tienen una motilidad menor a 70%, realice una
revisión de motilidad post-producción una segunda vez para
confirmar los resultados. Si se confirman los resultados, una
llamada debe de hacerse a los clientes quienes recibieron el
semen instruyéndoles que deben desechar el semen.
Preparación del Diluyente y Trazabilidad
Cuadro 13
• Imprima y pegue en el área de dilución, una guía de referencia
en la que se indique cómo preparar el diluyente, indicando la
cantidad de agua y diluyente que recomienda el fabricante.
Una guía puede ser preparada para cada tipo de diluyente
disponible en una posta particular (vea Apéndice E).
• Genere un sistema de registro para seguir rastreando el
diluyente usado. Este registro debe incluir el tipo de
conservador, nombre y número de lote del fabricante (Cuadro 13).
Ejemplo de Sistema de Registro del Diluyente
Diluyente: xxx
Tasa de Dilución: xx g/kg
Fecha
Agua, kg Conservador, g Lote # Iniciales
11/01/2012
34
1 kg
50 g
1234
XX
Notas
Registro de Materiales Desechables
Especificaciones de Control de Calidad del Distribuidor
• Pida que su distribuidor le provea todas las regulaciones que ellos llevan a
cabo para la producción de los insumos. Por ejemplo, el distribuidor del
diluyente debe indicar cuál es el protocolo que llevan a cabo para la prueba
biológica de materiales plásticos. También pregunte a los distribuidores sobre
la certificación ISO 9000.
• Registre cuando cambie de distribuidor y cuando cambien los productos
que tengan contacto directo con el semen. Todas estas entradas necesitan
ser incluidas con fechas y número de lote.
• Desarrolle un ensayo en laboratorio para monitorear los efectos perjudiciales
potenciales (ej., reducción de motilidad).
• Por ejemplo, cuando un nuevo lote de tubos de dosis sea recibido, prepare
una muestra utilizando un tubo del lote nuevo y otra muestra utilizando
un tubo del lote antiguo, ambas muestras deben contener semen del mismo
macho.
• Evalúe la motilidad y morfología de ambas muestras durante los días 1, 3 y 5.
• Para otros consumibles nuevos como guantes, corte un pedazo de un guante
nuevo y un pedazo de un guante del lote antiguo y sumérjalos en muestras de
semen del mismo pool y evalúe el semen como se describió arriba.
Calibración del Equipo
• Se debe calibrar semanalmente las balanzas, las técnicas de pipeteo se
deben evaluar mensualmente y los termómetros de láser infrarrojo cada año.
En el laboratorio debe haber disponible una tabla de pesos maestros, una
balanza sensible (lectura a 0.001 g) para volúmenes de pipeta (para canales
simples de desplazamiento de aire de las pipetas) y un kit de calibración para
el termómetro láser infrarrojo.
Análisis de Agua Pura
• Las postas que tienen un sistema de purificación de agua (Fotografía
6-10) deben establecer un proceso de verificación para asegurar que todos los
componentes están operando apropiadamente. La frecuencia del análisis de
agua depende en la calidad original del agua y de la fuente. Filtros de carbón
y arena deben ser usados para capturar las partículas de mayor tamaño.
Estos equipos son funcionales para >500 mil galones de agua. Los filtros
deben ser revisados cada trimestre.
• Monitoree los niveles de sales en el suavizador de agua (Fotografía 6)
para asegurar una relación adecuada de ablandador consumido versus agua
producida.
35
- Monitoree los niveles de sales en el suavizador de agua
(Fotografía 6) para asegurar una relación adecuada de
ablandador consumido versus agua producida.
Fotografía 6. Ejemplo de Suavizador de Agua
- La máquina de Osmosis Inversa RO, necesita un mantenimiento
dos veces por año, reemplazando los cartuchos y filtros. El
uso de medidores RO y pruebas de cinta pueden ser usadas
para monitorear localmente el agua producida por el sistema
purificador de agua (ejemplo, fabricado por Myron L Company,
Fotografía 7).
Fotografía 7. Medidor de Agua Osmosis Inversa
- Los tanques de Desionización DEI deben trabajar en pares y
necesitan ser reemplazados dos veces por año. (Fotografía
8). Si el sistema tiene un indicador de luces que cambian de verde
a rojo, existirá un periodo de una semana de tiempo para
reemplazar el tanque agotado. El par de tanques opera en las
posiciones de “trabajo y pulido”. El tanque agotado es aquel que
está en la posición de trabajo y cuando el tanque de reemplazo
llegue, el tanque bueno existente se debe mover desde la posición
de pulido a la posición de trabajo y el tanque nuevo va a la
posición de pulido.
36
Fotografía 8: Tanques de Desionización para Sistemas de Agua
Fotografía 9. Sistema Micron
- El sistema 0.25 micron y lámpara UV deben ser cambiados cada
año (Fotografías 9-10).
Fotografía 10. Ejemplo de lámpara UV
- Las tuberías de agua desde la lámpara UV hasta las salidas de
agua en el laboratorio deben ser desinfectadas cada mes para
controlar bacterias. Desinfecte las líneas de agua y las salidas
de los grifos en el laboratorio, usando una solución de blanqueador
de lavandería. Déjelos en remojo por la noche y luego enjuague
bien.
- Semanalmente revise el sistema completo para identificar posibles
fugas de agua.
37
Hay muchas medidas de control de calidad en el laboratorio. Una lista
de mediciones (Cuadro 14) debe estar disponible para el técnico de
laboratorio con el nombre de la persona responsable para cada tarea.
Cuadro 14
Medidas de Control de Calidad y Frecuencia de Medición
Medida de control de calidad
Frecuencia
38
Revisiones de Motilidad
Día 1, 3 y 5
Materiales desechables
Número de lote Nuevo o productos
Calibración de balanzas
Semanalmente
Calibración de Pipetas
Mensualmente
Calibración de Termómetro Infrarrojo
Anualmente
Máquina Osmosis Inversa
Reemplazar filtro 2 veces por año
Tanques DEI
Reemplazar 2 veces por año
Líneas de Agua y grifos
Desinfectar mensualmente
Sistema .25 micron
Reemplazar 1vez por año
Lámpara UV
Reemplazar 1vez por año
Análisis de Evaluación de Terceras Partes
• Para asegurar que las dosis de semen diluidas cumplan con los estándares
mínimos de calidad, mensualmente se debe implementar una evaluación del
agua, diluyente y semen diluido.
• Establezca un programa de monitoreo periódico de la calidad de las dosis
de semen producidas en la posta. Esto consiste en mandar a un tercero una
cantidad de dosis elegidas al azar para revisar cómo está funcionando el
control de calidad que se hace en el laboratorio del stud, concentración de
células espermáticas, motilidad total, morfología y volumen de dosis de
semen. Al mismo tiempo, envíe muestras de agua purificada, muestras de
diluyentes y muestras de semen diluido para realizarles análisis
bacteriológicos. Siga el protocolo para preparación de muestras de agua
y diluyente que se presenta en el Apéndice F. Después que la tercera
parte entregue los resultados de las evaluaciones, compárelos con sus metas
objetivas.
• El número de muestras de semen a enviar debe ser igual a un 1% de las
dosis que se producen en un día normal de producción o un mínimo de 10
dosis seleccionadas al azar entre lotes.
• La frecuencia de los envíos para evaluación debe ser calendarizada
mensualmente y las muestras deben ser tomadas aleatoriamente de todos
los lotes de dosis.
• Los objetivos deben ser establecidos para cada parámetro que se mida y la
variación de estar entre los rangos aceptables.
• Cuando una fuente de consumibles o número de lote cambia, se deben
enviar muestras del mismo lote, usando ambas fuentes/lotes y la tercera
parte debe estar consciente del cambio.
• La tercera parte que hace el servicio de evaluación de semen necesita ser
una entidad confiable e independiente. Vea a un representante PIC para
solicitar recomendaciones.
Las postas de sementales deben mantener una relación
empleado: semental igual a 1:60, con 60% de los empleados
trabajando en la posta y un 40% en el laboratorio.
Los empleados deben tener el certificado PQA Plus®.
El personal que trabaja directamente con los animales debe ser
entrenado sobre el movimiento animal y cómo se deben manejar
los sementales para garantizar la seguridad de los trabajadores.
El personal del laboratorio debe ser entrenado por otro empleado
con varios años de experiencia o mediante un programa de
entrenamiento a través de un tercero.
Se debe estandarizar los conocimientos de los empleados una vez
por trimestre, a través de una referencia cruzada entre el personal
del laboratorio sobre cómo preparar dosis, etc.
Parte 13: Manejo y Entrenamiento del Personal
Parte 13: Manejo y Entrenamiento del Personal
39
Parte 14: Indicadores Clave de Desempeño
Parte 14: Indicadores Clave de Desempeño
40
Tal como en las granjas de hembras, los studs de sementales
deben también dar seguimiento a los parámetros que son
indicativos sobre el desempeño del semental y calidad del semen
(Cuadro 15).
Cuadro 15
Indicadores Clave de Desempeño para Centros de Sementales
KPI
Objetivo
Espermatozoides totales por eyaculado
>30 mil millones
Colecciones por semental por semana
1.2
Sementales no entrenables
<3.0%
Uso de Prostaglandina
<1.5%
Colecciones desechadas
<6%
Dosis no usadas
<5%
Mortalidad sementales
<5%
Parte 15: Benchmarking de Producción
Se pueden hacer estimaciones de células espermáticas y producción
de dosis de líneas PIC basadas en la información propia, de un afiliado,
de un grupo de usuarios o tomando datos de clientes de las postas de
sementales (Figuras 4-6; Cuadros 16, 17).
Figura 4.
Pocos estudios han investigado el tiempo límite de cuándo la calidad
del semen para inseminación artificial comienza a deteriorarse. La
investigación (Wolf y Smital, 2009) sugiere que el volumen de semen,
número total de espermatozoides y los espermatozoides funcionales
alcanzan su máximo cuando el semental tiene 2 años de edad. La
concentración espermática aumenta hasta el mes 11 seguido de una
disminución de la concentración hasta que los sementales cumplen 3
años. El porcentaje de espermatozoides anormales aumenta a la edad de
8 a 48 meses. La motilidad se reduce a un ritmo constante en el tiempo
pero solamente por 1% de reducción.
Células Viables (vivos, normales) por Eyaculado por Línea Genética por Semana de Producción
41
Cuadro 16
42
Células Viables por Eyaculado por Línea Genética Promediado por 5 Semanas de Producción
Linea
W1-5 W6-10 W11-15 W16-20 W21-25 W26-30 W31-35 W36-40 W41-45
L02
35.0
46.1
53.8
58.2
60.0
62.0
63.2
64.6
64.8
L03
39.3
47.5
53.3
57.4
59.8
59.9
61.0
61.2
61.0
PIC280/L15
34.7
43.5
50.4
56.0
58.8
60.3
62.1
63.6
64.3
L19
36.5
47.4
55.4
60.3
62.5
64.0
65.7
64.6
66.5
PIC327/L27
28.6
42.3
51.3
56.7
60.0
61.6
62.6
63.7
65.1
PIC337/L65
26.8
44.2
52.3
57.5
61.4
63.5
65.5
66.6
67.2
PIC359
30.2
47.1
57.9
66.6
70.8
74.3
76.0
77.3
79.5
PIC380
41.6
52.0
60.2
65.4
69.1
71.3
72.5
73.7
75.1
Figura 5.
Promedio de dosis por Colección, por Edad y Línea Genética, asumiendo Dosis de 2500 millones
de Células Espermáticas Viables y un Promedio de 1.2 Colecciones por Semana por la Vida del
Útil del Semental.
Cuadro 17
Dosis PIC
Línea
<12 meses
≥12 meses
L02
19.1
25.1
L03
19.6
24.2
PIC280/L15
18.2
24.7
L19
19.7
25.8
PIC327/L27
17.6
25.0
PIC337/L65
17.8
25.8
PIC359
19.8
30.1
PIC380
21.7
28.8
Figura 6: Realización del Semental Terminal
Promedio de Dosis por Colección por
Edad y Línea Genética
43
Parte 16: Vida Útil del Semental y Tasa de
Reemplazo
Parte 16: Vida Útil del Semental y Tasa de Reemplazo
44
En los años anteriores, PIC en asociación con economistas de
las universidades, han desarrollado un modelo económico para
determinar el momento óptimo para desechar un semental de
la posta. La Vida Optima del Semental OBL (por sus siglas en
ingles) usa costos personalizados de las postas (alojamiento,
comida, precio de compra, costos de cuarentena, regalías, etc.) e
ingresos proyectados (el valor de las dosis de semen producidas
por el semental y el valor genético del semental comparado con
su potencial de reemplazo) para determinar objetivamente el
momento óptimo en que un semental debe permanecer en la
posta. Hay dos modelos de OBL que se acomodan a clientes
integrados que son dueños de una posta de sementales y de una
unidad de hembras y también existe un modelo desarrollado para
centros de transferencia genética y venta de semen.
Estos modelos entregan tasas objetivas de reemplazo y proveen
métricas basadas en información precisa y tiempo real. Por favor
contacte a Servicios Genéticos de PIC para más información sobre
OBL y su uso en su sistema.
Referencias
American Association for Swine Veterinarians and National Pork Board.
On-farm Euthanasia for Swine: Recommendations for the
Producer. Des Moines, IA. 2009.
ASTM International. 1991. D1193: Standard Specification for Reagent
Grade Water. Retrieved November 2012 from http://www.astm.org.
Knox, R. 2003. The Anatomy and Physiology of Sperm Production in
Boars.
Referencias
Kennedy, B.W. and J.N. Wilkins. 1984. Boar, breed and environmental
factors influencing semen characteristics of boar used in artificial
insemination. Can. J. Anim. Sci. 64: 833-843.
Louis, G.F., A.J. Lewis, W.C. Weldon, P.S. Miller, R.J. Kittok, and
W.W. Stroup. 1994. The effect of protein intake on boar libido,
semen characteristics and plasma hormone concentrations. J.
Anim. Sci. 72: 2038-2050.
McNitt, J.I. and N.L. First.1970. Effects of 72-hour heat stress on semen
quality in boars. Int. J. Biometeor. 14: 373-380.
Pineda M.H. 1989. Veterinary Endocrinology and Reproduction. 4th ed.
McDonald, LE. Lea & Febiger.
Sancho,S., E. Pinart, M. Briz, N. Garcia-Gil, E. Badia, J. Bassols, E.
Kádár, A. Pruneda, E. Bussalleu, M. Yeste, M.G. Coll, and S.
Bonet. 2004. Semen quality of postpubertal boars during
increasing and decreasing natural photoperiods. Theriogenology.
62. 7:1271-1282.
Senger, P.L. 2005. Pathways to Pregnancy and Parturition. 2nd rev. ed.
Pullman, WA: Current Conceptions, Inc.
Suriyasomboon, A. 2005. Herd investigation on sperm production in boars,
and sow fertility under tropical conditios. With Special Reference
to Season, Temperature and Humidity. Doctoral thesis. Swedish
University of Agricultural Sciences. Uppsala.
Wettemann, R. P., M.E. Wells, I.T. Omtvedt, C.E. Pope, and E.J. Turman.
1976. Influence of elevated ambient temperatura on reproductive
performance of boars. J. Anim. Sci. 42: 664-669.
Wolf, J. and J. Smital. 2009. Quantification of factors affecting semen
traits in artificial insemination boars from animal model analyses.
J. Anim. Sci. 87: 1620-1627.
45
Colaboradores
Colaboradores
Equipo del Proyecto del
Manual PIC
Contribuyentes
Juárez, Arturo
Engle, Mark
Minton, Amanda
Geiger, Jerome
Morales, Jaime
Lewis, Craig
Pinilla, Juan Carlos
Matzat, Paul
Thompson, Bob
McCulley, Nick
Turley, Malcolm
Melody, Brian
Culbertson, Matt
Neill, Casey
Torgersen, Ole
46
Apéndice A
Requerimientos Nutricionales para Cerdos
Unidades NRC 1 2012
NSNG 2 2010
PIC 2011
Vitamina A
IU/lb
1818
4,000
5,000
Vitamina D
IU/lb
91
300
800
Vitamina E
IU/lb
20
30
50
Vitamina K
mg/lb
0.5
2
2
Colina
mg/lb
568
0
300
Niacina
mg/lb
4.5
22
20
Riboflavina
mg/lb
1.7
4
4.5
d-Pantothenate
mg/lb
5.5
12
15
Vitamina B-12
mcg/lb
15
20
17
Ácido Fólico
mcg/lb
591
0
750
d-Biotina
mcg/lb
91
0
250
Tiamina
mg/lb
0.5
0
1
Piridoxina
mg/lb
0.5
0
1.5
Zinc
ppm
100
165
125
Hierro
ppm
100
165
100
Manganeso
ppm
20
30
50
Cobre
ppm
5
16
15
Iodo
ppm
0.5
0.3
0.65
Selenio
ppm
0.3
0.3
0.3
1
2
Apéndice A
Nutriente
NRC = Requerimiento de Nutrientes del Cerdo
NSNG = Guía Nacional de Nutrición del Cerdo
47
Apéndice B
Apéndice B
Especificaciones Mínima de la Dietaa
Nutriente
NRC ME, Kcal/lb
1400
Proteína, %
16
Fibra, %
4.5 to 6.0
SID lisina , %
0.62
Calcio, %
0.80
aFósforoc, %
0.40
Sal adherida, %
0.45
Acido Linoleico, %
1.90
b
Cantidad / lb de dieta completa.
SID = Estandarizado ileal digestible.
c
a = disponible
a
b
Ejemplo Dieta para Sementales
Ingrediente
Porcentaje
Maíz
69.32
Pasta de Soya (2.62% SID Lisina)
13.75
Aceite de Soya
1.00
Fosfato monocálcico, 21% P
1.10
Limestone
1.20
Sal
0.45
Lisina HCl
0.11
DL-Metionina
0.02
L-Treonina
0.05
Cáscara de Soya
12.50
PIC Boar Stud VTM + Fitasa
0.50
100.00
48
Apéndice C
Sistemas Auitomatizados para Colección. Instrucciones paso a
paso para el uso.
1.
Apéndice C
Prepare el cérvix artificial (CA)
colocándolo a través del anillo
y envolviendo el revestimiento
exterior alrededor de este.
2.
Apriete el divertículo del
prepucio para vaciar su
contenido
3.
Una vez extendido el pene,
límpielo con una toalla
desechable usándola una sola
vez.
49
4.
Apéndice C
Pegue el CA a la palma
del guante con su mano
exponiendo el tape. Cuando el
semental comience a empujar,
agarre el pene.
5.
Coloque el final del CA en el
sujetador y presione el gatillo
hacia abajo. La punta del pene
debe llevarse ligeramente
al final del CA. Después
de colectar la fracción preespermática del eyaculado
remueva y deseche la bolsa
interior del CA.
6.
Coloque el exterior de la bolsa
dentro del termo de colección y
utilice un anillo y boca del termo
para crear un sellado.
50
7.
Apéndice C
8.
Una el termo de colección al
potro de monta pero no le aplique
fuerza excesiva de modo de evitar
que se doble. Libere el seguro
del brazo deslizable para permitir
el libre movimiento durante el
proceso de colección. Durante la
colección, el semen va desde la
bolsa externa del CA hasta el filtro
de la bolsa de colección localizada
en el termo de colección. Una vez
que se complete la eyaculación, el
semental retirará su pene del CA
y se desmontará. Libera la tensión
en el gatillo para quitar el CA y el
termo de colección.
Retire el CA del anillo y deséchalo. Quite la parte de arriba
de la bolsa de colección que contiene el filtro y deséchelo. El
eyaculado se encuentra ahora en la bolsa de colección y puede
ser entregado al laboratorio para ser procesado.
51
Apéndice D
Empaque de Dosis de Semen para Envío Usando Doble Hielera.
Apéndice D
1.
Prepara los revestimientos y
hieleras.
2.
Coloque las dosis adentro de la
bolsa Thermalast adentro de la
hielera interna.
3.
Ponga un paquete de gel con la
temperatura del cuarto.
52
4.
Apéndice D
Ponga la tapa y séllela con
cinta.
5.
Envuelve la hielera interna con
una bolsa Thermalast.
6.
Ponga la hielera interna dentro
de la hielera externa y agregue
paquetes de gel (caliente o frío
dependiendo de la temporada).
53
7.
Apéndice D
Tape y selle la caja con cinta.
8.
Ponga la caja dentro de la caja
para envío.
54
Apéndice E
Guía de Preparación del Diluyente
Diluyente: XXX
Volumen
Recomendación Proveedor:
50 g/kg de agua
Tub:
Agua a Diluyente Volumen Agua a Diluyente Volumen Agua a Diluyente Volumen
5kg
Agua a Diluyente
diluyente agregar a agregar diluyente agregar a agregar diluyente agregar a agregar diluyente agregar a agregar
(kg)
(g)
(L o kg)
(kg)
(g)
(L o kg)
(kg)
(g)
(L o kg)
(kg)
(g)
1
1
50
26
26
1300
51
51
2550
76
76
3800
2
2
100
27
27
1350
52
52
2600
77
77
3850
3
3
150
28
28
1400
53
53
2650
78
78
3900
4
4
200
29
29
1450
54
54
2700
79
79
3950
5
5
250
30
30
1500
55
55
2750
80
80
4000
6
6
300
31
31
1550
56
56
2800
81
81
4050
7
7
350
32
32
1600
57
57
2850
82
82
4100
8
8
400
33
33
1650
58
58
2900
83
83
4150
9
9
450
34
34
1700
59
59
2950
84
84
4200
10
10
500
35
35
1750
60
60
3000
85
85
4250
11
11
550
36
36
1800
61
61
3050
86
86
4300
12
12
600
37
37
1850
62
62
3100
87
87
4350
13
13
650
38
38
1900
63
63
3150
88
88
4400
14
14
700
39
39
1950
64
64
3200
89
89
4450
15
15
750
40
40
2000
65
65
3250
90
90
4500
16
16
800
41
41
2050
66
66
3300
91
91
4550
17
17
850
42
42
2100
67
67
3350
92
92
4600
18
18
900
43
43
2150
68
68
3400
93
93
4650
19
19
950
44
44
2200
69
69
3450
94
94
4700
20
20
1000
45
45
2250
70
70
3500
95
95
4750
21
21
1050
46
46
2300
71
71
3550
96
96
4800
22
22
1100
47
47
2350
72
72
3600
97
97
4850
23
23
1150
48
48
2400
73
73
3650
98
98
4900
24
24
1200
49
49
2450
74
74
3700
99
99
4950
25
25
1250
50
50
2500
75
75
3750
100
100
5000
Apéndice E
(L o kg)
55
Apéndice F
Preparación de la Muestra de Agua para Análisis por Terceras Partes
Apéndice F
(Desarrollado por G. Althouse, J. Morales y B. Thompson)
• Se deben recolectar muestras de agua en una bolsa estéril
Whirl-Pak® y sellar inmediatamente después de la recolección.
- Use guantes desechables antes de tomar la muestra.
- Limpie la superficie externa del grifo con un trapo sin pelusa
con un ligero spray con 70% de alcohol; asegúrese que no sea
saturado. Limpie físicamente el grifo e inserte ligeramente
el trapo en el extremo del grifo. Espere 30 segundos para que
se evapore el alcohol
- Permita que el agua que sale del proceso de ósmosis inversa
corra por 3 minutos para evacuar completamente las líneas.
- Abra la Whirl-Pak® y recolecte la muestra a la mitad del flujo
de la corriente.
- Muestree todos los grifos con la misma técnica.
• Muestree el conservador diluido:
- El empleado que pesa y adhiere el conservador al agua debe
usar una máscara N95 y usar guantes desechables cuando
trabaje con conservadores en polvo.
- Use una técnica similar con alcohol para limpiar el tubo de la
bomba peristáltica. Limpie la superficie externa del tubo de
conexión al Auto-diluyente y limpie por dentro dándole tiempo
a que se seque el alcohol.
- Recolecte aproximadamente 1 litro de conservador diluido
en el contenedor. Reduzca la velocidad de la bomba y tome
una muestra en una Whirl-Pak® y selle inmediatamente.
56
57
58

Manual de Manejo de la Posta de Sementales

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