Biodegradación de Residuo Graso Industrial

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González, D., Amaíz, L, Medina L, et al. 2012. Rev Latinoam Biotecnol Amb Algal 3(2):105-118
Artículo original de investigación
Biodegradación de residuo graso industrial empleando
bacterias endógenas
Diana González1, Luis Amaíz*2, Luis Medina2, Rosmary Vargas2,
Noja Izzeddin2 y Oscar Valbuena2
1
Departamento de Biología, Facultad de Ciencias y Tecnología (FACyT).
Centro de Investigaciones Microbiológicas Aplicadas (CIMA-UC). Facultad de Ciencias de la Salud (FCS).
Universidad de Carabobo, Valencia, Venezuela.
2
* Autor de correspondencia ([email protected]; [email protected])
Resumen
A nivel mundial, ha surgido preocupación por el deterioro ambiental y de salud que originan los
residuos industriales, entre ellos los efluentes grasos. Al no existir una estructura para la disposición
final de estos residuos, las empresas adoptan conductas de manejo, con sistemas de disposición final
temporal o definitiva no acordes a la normativa. El propósito de este trabajo estuvo dirigido a dos
aspectos: I- aislar cepas bacterianas lipolíticas endógenas de un residuo graso industrial (RGI) y IItratar biológicamente dicho residuo con un consorcio bacteriano preparado con las cepas aisladas del
mismo. A tales efectos, el RGI fue adicionado a un medio mínimo mineral e incubado bajo
condiciones de laboratorio, obteniéndose colonias bacterianas, las cinco preponderantes, se asignaron
a los géneros Pseudomonas (cepas 1 y 2), Bacillus (cepas 3 y 4) y Enterobacter (cepa 5). El
consorcio bacteriano, una mezcla de las cepas aisladas, en 21 días y a temperatura ambiente,
degradó 341,5 mg de grasa (91,4 % de degradación); la carga bacteriana superó 1010 UFC/mL, la
DBO5,20º y DQO disminuyeron en un 33,6 % y 59,8 %, respectivamente, durante el mismo lapso de
tiempo. La actividad lipasa de las cepas, evaluadas a las 24 y 48 horas de tratamiento, se detectó por
titulación potenciométrica de los ácidos grasos liberados, usando aceite de oliva como sustrato. La
actividad enzimática específica de las cepas, con un promedio de 0,500 mmoles x min-1 x μg-1, osciló
entre 0,141 y 0,158 mmoles x min-1 x μg-1 y las tasas de actividad entre 8,8-12,2 mmol x min-1. El
consorcio bacteriano fue efectivo en eliminar el 90 % del volumen de residuos grasos y olores
desagradables de trampas de grasa de empresas procesadoras de cerdos y aves, representando una
herramienta útil para el tratamiento de estos residuos.
Palabras Claves: Grasas, Lipasas, Biodegradación, Consorcio bacteriano.
Biodegradation of an industrial fatty residue
by endogenous bacteria
Abstract
Environmental and health deterioration induced by industrial residues constitutes a great concern
throughout the world. This situation has partially evolved by the inexistence/deficiency of final
discard facilities for these residues and inadequete policies adopted by the industrial companies. The
aim of this study was devoted to two aspects: I- isolation of indigenous lipolytic bacteria from
industrial fatty residues (IFR) and II- biodegrading these residues by a bacterial consortium prepared
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with the isolated bacterial strains. To reach such goals, a minimal mineral medium was supplemented
with IFR under laboratory conditions. After appropiate incubations, five bacterial strains were
predominantly detected; they were assigned to Pseudomonas (strains 1 and 2), Bacillus (strains 3 and
4) and Enterobacter (strain 5) genera. The bacterial consortium (a mixture of the five previuosly
isolated strains) degraded 341.5 mg of fat (91.4 % degradation) after 21 days of biotreatment, besides
the bacterial load increased to values higher than 1010 CFU/mL, and BOD5,20º and COD were reduced
in 33,6 % and 59.8 %, respectively. The bacterial lipase activity was determined by potenciometric
tritation of the released fatty acids using olive oil as substrate, at 24 and 48 h of biotreatment. The
lipase specific activity of the bacterial strains ranged from 0.141 to 0.158 mmol x min -1 x μg-1 (0.500
mmol x min-1 x μg-1 as average value), whereas lipase activity rates were estimated in the 8.8-12.2
mmol x min-1 range. The bacterial consortium reduced the level of the fatty residues 90 % and totally
eliminated unpleasant odors of porcine and chicken fatty residues at two industrial facilities. The
bacterial consortium can be used as an usefull biotechnological tool for degrading industrial fatty
residues.
Keywords: Fat, Lipases, Biodegradation, Bacterial consortim.
1. Introducción
Los residuos grasos industriales generados
en el sector alimentario y descargados al
medio ambiente, ocasionan impacto
ambiental negativo debido a la alta carga
orgánica e inorgánica que éstos contienen
(Saatci et al., 2001; Abass et al. 2011).
Además, generan en su descomposición,
productos altamente tóxicos debido al
proceso de peroxidación lipídica. Estos
peróxidos causan daño celular en los
animales, siendo por ello utilizado en
ocasiones como indicador del estrés
oxidativo y como biomarcadores de
contaminación ambiental (Di Giulio, 1991).
La descomposición de dichos residuos
produce olores desagradables, componentes
atrayentes de plagas e inclusive, podría
afectar
la salud de las comunidades
cercanas; constituyendo así un problema de
salud pública (Cirne et al. 2007; Chin et al.
2010). Para el tratamiento de residuos grasos
industriales, se usan técnicas convencionales
que implican procesos y adición de
productos químicos de alto costo, que
generalmente deterioran el medio ambiente,
y que al final, generan productos
recalcitrantes, requiriendo éstos últimos un
tratamiento más complejo y costoso (Abass
et al. 2011). Actualmente, las empresas
capturan y acumulan las grasas en depósitos
conocidos como trampa de grasas, un
sistema diseñado y construido para separar
las grasas y aceites de los efluentes.
Posteriormente, estos residuos grasos son
almacenados en tanques y llevados a su
disposición final, tal como lo indica la
regulación ambiental venezolana. En la
práctica, se ha evidenciado que las trampas
de grasa que se construyen son pequeñas,
rebasándose en poco tiempo su capacidad
por los volúmenes producidos que deben
tratarse. En este caso, se aplican medidas de
emergencia que implica la remoción manual,
siendo éste una acción repulsiva y costosa.
Es por ello que en la actualidad, se ha
enfatizado en la búsqueda de nuevas
alternativas
biotecnológicas
para
el
tratamiento de este tipo de residuos y al
mismo tiempo minimizar o detener los
efectos que se mencionan. El biotratamiento
es una de las alternativas empleadas, donde
se utilizan las propiedades catalíticas de
organismos vivos (entre ellos bacterias) para
eliminar los residuos contaminantes de los
ecosistemas (Thassitou y Arvanituyannis,
2001; Bhumibhamon et al. 2002; Kushwaha
et al. 2011). La biodegradación de las grasas
y aceites de origen biológico, que conforman
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este tipo de residuo, comienza con la
hidrólisis enzimática del enlace éster del
triglicérido, llevado a cabo mediante lipasas
excretadas por estos microorganismos,
seguido por el consumo de glicerol y beta
oxidación de los ácidos grasos (Bailey y
Ollis,
1996;
Bornscheuer,
2002;
Mongkolthanaruk y Dharmsthiti, 2002;
Gupta et al. 2004; Jaeger y Eggert, 2004;
Singh et al. 2006). De tal manera, estos
microorganismos son empleados con el fin
de aumentar la velocidad de degradación y
transformación de los contaminantes en
sustancias más inocuas y asimilables y por
ende disminuir la contaminación ambiental
que éstos ocasionan. El uso de bacterias
reduce en costos el tratamiento de estos
residuos; además, las enzimas extracelulares
son biodegradables y representan, en masa,
entre 0,1 y 1% del sustrato a ser degradado,
contribuyendo de manera despreciable a la
demanda química de oxígeno del agua
residual (Cammarota y Freire, 2006; Da
Silva et al. 2009). Un aspecto importante a
tomar en consideración para justificar la
búsqueda de bacterias lipolíticas, está ligado
a los problemas ambientales, los altos costos
de los combustibles fósiles y a la demanda
energética mundial generada por el uso del
petróleo y sus derivados. Al respecto, la
producción de combustibles alternativos
(bioetanol y biodiesel), más amigables con el
ambiente, parecen ser opciones válidas
(Akoh et al. 2007; Rivera-Pérez y GarcíaCarreño, 2007; Bajaj et al. 2010; SantosCorrea et al. 2011). De tal manera que, la
primera fase en la producción de biodiesel
implica la hidrólisis de la grasa a una mezcla
de ácidos grasos libres y glicerol, para así
posteriormente, en una segunda fase generar
los ésteres metílicos o etílicos de los ácidos
grasos
liberados
bajo
condiciones
apropiadas. Entre otras aplicaciones a nivel
industrial, las lipasas son empleadas en las
industrias farmacéuticas como aditivos a
productos que facilitan la digestión, en la
resolución de compuestos quirales, en la
obtención de ésteres a partir de aceites y
grasas de ácidos grasos de elevada pureza
con un alto rendimiento (Gunstone, 1999;
Jaeger y Eggert, 2006; Jeganaesan et al.
2004; Sangeeth et al. 2011) y como agentes
degradadores
de
residuos
grasos
provenientes de industrias lácteas (Mendes
et al, 2010). En este estudio, como estrategia
de tratamiento de efluentes grasos,
usualmente acumulados durante largos
períodos, se plantea degradar los residuos
grasos provenientes de una empresa
procesadora de productos cárnicos mediante
el uso de bacterias endógenas aisladas de
tales residuos.
2. Materiales y Métodos
2.1. Residuo graso industrial (RGI)
El residuo graso industrial fue suministrado
por una empresa procesadora de cerdos,
ubicada en Valencia, Estado Carabobo,
Venezuela.
La muestra,
viscosa,
heterogénea en su consistencia, de color
grisáceo y con un fuerte y desagradable olor,
fue manipulada en campana extractora de
gases.
2.2. Cultivos bacterianos suplementados
con RGI
En experimentos iniciales, debido a la
viscosidad del RGI, se determinó la cantidad
de residuo a adicionar a 100 mL del medio
de cultivo, que permitiera una adecuada
agitación de los mismos. De tal manera, los
cultivos en caldo nutritivo (CN, HIMEDIA,
India) y medio mínimo mineral (MMM:
FeSO4, 0,1 g/L; NaCl, 5 g/L; KH2PO4, 5 g/L;
MgCl2, 0,14 g/L; (NH4)2SO4, 3 g/L; CaCl2,
0,058 g/L; ZnSO4, 0,013 g/L y tampón
fosfato 20 mM, pH 7,0), contenían 10 g de
RGI por 100 mL de medio de cultivo.
2.2.1. Aislamiento de bacterias endógenas
A 100 mL de CN, esterilizado a 121ºC y 15
libras de presión durante 15 min, se
adicionaron 10 g de RGI incubándose el
sistema a temperatura ambiente (20-24 ºC)
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durante 24 h. Alícuotas de este cultivo se
retiraron y estriaron en placas de agar
nutritivo (AN), incubándose una vez más
bajo las condiciones indicadas. Las colonias
bacterianas aisladas se observaron en una
lupa estereoscópica (Wild M7A, Heerbrugo,
Suiza) para describir su morfología
macroscópica y luego de la tinción de Gram
se observaron en un microscopio óptico
(Nikon HFX-DX, Labophot-2, Japón).
2.2.1.1 Caracterización bioquímica e
identificación de cepas bacterianas
Las colonias aisladas se caracterizaron
mediante los ensayos de glucosa/lactosa,
catalasa, oxidasa, movilidad, VogesProskauer e indol (Forbes et al. 2004; Mac
Faddin, 2004). Para la identificación de las
cepas bacterianas, a nivel de género, se
utilizaron las galerías API 20E, API 20NE y
API 50CHB (bioMérieux, Francia), (Mac
Faddin, 2004; Browns, 2009).
2.2.1.2 Cultivos bacterianos en caldo
nutritivo
Con la finalidad de obtener suficiente
biomasa, las cepas aisladas se cultivaron
individualmente en caldo nutritivo, en
agitación constante, en las condiciones
establecidas en la sección 2.2.1.
2.2.2 Biotratamiento de RGI
El tratamiento de RGI se efectuó usando un
inóculo bacteriano constituido por una
mezcla (consorcio, CB) de las cepas aisladas
previamente cultivadas en CN, constituido
por volúmenes iguales de los cultivos
respectivos de cada cepa bacteriana y
preparándose tres cultivos (sistemas A1, A2,
A3). El sistema A1 se utilizó para la
determinación
de
los
parámetros
fisicoquímicos (grasa remanente y pH) y el
biológico (carga bacteriana, UFC/mL). Este
sistema (preparado por triplicado) contenía
50 mL CB y una mezcla previamente
esterilizada conteniendo 10g de RGI y el
volumen necesario de MMM para completar
110 mL, incubándose bajo las condiciones
señaladas en la sección 2.2.1 y retirándose
alícuotas de 20 mL a las 0, 24, 48 y 72 h de
incubación. El sistema A2 se utilizó para la
determinación
de
los
parámetros
fisicoquímicos y biológico ya mencionados a
tiempos mayores de incubación (0, 7, 14 y
21 días) y comparar los resultados con las
demandas química y biológica de oxígeno
(DQO y DBO5,20, respectivamente). Este
sistema contenía 100 mL de CB, 20 g de
RGI y el volumen necesario de MMM para
completar 220 mL. El sistema A3 se utilizó
para la determinación de la demandas
química y biológica de oxígeno (DQO y
DBO5,20,
respectivamente),
retirándose
alícuotas a los 0,7,14, y 21 días de
incubación (DQO); y 0 y 21 días de
incubación (DBO5,20). La composición de
este sistema fue idéntica al sistema A2. Las
determinaciones de grasa, DQO y DBO5,20
(métodos 5520D, 5220B y 5210B,
respectivamente) se realizaron de acuerdo a
lo establecido en Clesceri et at. 1998.
2.3 Determinación cuantitativa de la
actividad lipolítica
La actividad de lipasas se determinó usando
una suspensión aceite de oliva como
substrato y por titulación potenciométrica de
los ácidos grasos liberados. A tal fin se
procedió de la siguiente manera:
2.3.1 Preparación del extracto enzimático
Volúmenes (usualmente 20-25 mL) de
cultivos correspondientes a cada cepa
bacteriana, suministrando un total de 20
unidades de absorbancia a 540 nm, se
mezclaron con 5 g de RGI y el volumen
necesario de MMM para completar 55 mL,
estableciéndose dos cultivos independientes,
uno para su incubación durante 24 h y el otro
a 48 h. Luego de incubación de acuerdo a lo
establecido en la sección 2.2.2., los cultivos
se centrifugaron a 14.000 rpm durante 15
min en una centrífuga (Spectrafuge 16M) y
los sobrenadantes libres de células (SLC) se
utilizaron para determinar la actividad
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enzimática (Daniele et al. 2011) y cantidad
de proteínas (Bradford, 1976).
2.3.2. Preparación del substrato:
En una licuadora se adicionaron 15 g de
aceite de oliva (El Gallo), 50 mL de goma
arábiga 1 % m/v (Sigma), 1,0 mL de
desoxicolato sódico 8% m/v (Sigma), 65 mL
de tampón fosfato 0,01M, pH 7,0 (Riedel de
Haën) y el volumen de agua necesario para
completar 150 mL. La mezcla se
homogeneizó aplicando 5 ciclos de agitación
de 5 min seguidos de enfriamiento en hielo.
Las concentraciones finales de cada
sustancia en el substrato fueron: 1,0 % m/v
de aceite de oliva, 0,33 % m/v de goma
arábiga, 0,053 % m/v de desoxicolato y 8,7
mM de fosfato.
2.3.3. Sistema de reacción enzimática:
El sistema enzimático se preparó mezclando
30 mL del substrato, previamente calentado
a 37 ºC y ajustado a pH 9,5 mediante
agregado de NaOH 0,1M inmediatamente
antes del inicio del ensayo, con 1,0 mL de
SLC. El sistema se incubó a 37 ºC, en
agitación constante, manteniendo el pH en
9,5 por titulación potenciométrica con NaOH
0,1 M, durante 20 min, registrando el
volumen gastado de NaOH cada 4-5 min.
2.3.4. Cálculo de actividades enzimáticas:
Los datos obtenidos, mmoles de ácidos
grasos liberados y los tiempos respectivos de
reacción, se sometieron a análisis de
regresión lineal, con la finalidad de obtener
las pendientes de las rectas, las cuales
representan las tasas de velocidad (mmoles
de ácidos grasos liberados x min-1)
correspondientes a cada cepa. Las
actividades específicas de las preparaciones
enzimáticas (mmoles x min-1 x μg-1) se
calcularon luego de determinar el contenido
de proteínas en los SLC. Una unidad de
actividad lipolítica se define como la
cantidad de enzima requerida para liberar un
μmol de ácidos grasos por minuto por μg de
proteína.
2.4 Cuantificación de proteínas totales.
La determinación de proteínas se cuantificó
mediante el método de Bradford, 1976,
empleando suero albúmina bovina (100
μg/mL) como patrón. La recta obtenida
representa el promedio de tres ensayos
independientes.
2.5 Cálculos estadísticos.
Las desviaciones estándar y la regresión
lineal se determinaron aplicando el programa
de Microsoft Office Excel 2007.
3. Resultados
3.1 Aislamiento e identificación de las
cepas bacterianas.
En el presente estudio, cinco cepas
bacterianas fueron aisladas e identificadas a
nivel de género. Las características de
colonias bacterianas, identificadas de
acuerdo a las pruebas bioquímicas,
características morfológicas de cada cepa y
galerías API, se especifican en la Tabla 1.
Las cepas 1, 2 y 5 son bacilos Gram (-), de
los cuales las dos primeras pertenecen al
género Pseudomonas, y la tercera al género
Enterobacter. Las cepas 3 y 4 son bacilos
Gram (+), ambas pertenecientes al género
Bacillus.
3.2 Tratamiento biológico del residuo graso
industrial (RGI).
La evaluación del tratamiento biológico se
efectuó al determinar los parámetros
fisicoquímicos (grasas, pH, DQO, DBO5,20º)
y carga bacteriana.
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Tabla 1. Caracterización morfológica y bioquímica de las cepas bacterianas aisladas.
* Determinados mediante galerías API 20E, 20NE y 50CHB
Pruebas Bioquímicas
VoguesCatalasa
Indol
Proskauer
Cepas
Glu/Lac
Oxidasa
1
-/-
+
+
-
-
+
2
-/-
+
+
-
-
+
3
+/+
-
+
+
-
+
4
+/+
-
+
+
-
+
5
+/+
-
+
+
-
+
3.2.1 Parámetros fisicoquímicos
En la Tabla 2 se muestran los valores del
consumo de grasa por los microorganismos
durante el lapso de tiempo de 0 y 72 h de
biotratamiento en los sistemas A1. En estos
ensayos, las cepas bacterianas fueron
capaces de degradar 227,6 mg de RGI en
72h de incubación, representando un
porcentaje de remoción de 53.2 %. La carga
bacteriana se incrementó desde 2.83x107 a
4.60x108 UFC/mL y los valores de pH se
mantuvieron en el intervalo de 7.0 a 7.1; lo
que probablemente indica que éste sea el pH
óptimo para el desarrollo de los
microorganismos. En un segundo ensayo
Movilidad
Gram
Bacilos
(-)
Bacilos
(-)
Bacilos
(+)
Bacilos
(+)
Bacilos
(-)
Género*
Pseudomonas.
Pseudomonas.
Bacillus.
Bacillus.
Enterobacter.
(sistema A2), se evaluó el biotratamiento de
RGI en el lapso de tiempo de 0 a 21 días de
incubación. Los valores mostrados en la
Tabla 3 indican que los microorganismos
endógenos fueron capaces de degradar 341.5
mg de RGI en 21 días de incubación, lo que
representa un porcentaje de remoción de
91.4 %. Adicionalmente, la carga bacteriana
se incrementó desde 51x106 UFC/mL hasta
>1010 UFC/mL. La DBO5,20 y DQO,
mostraron una reducción de 33.6 % y 59.8 %
respectivamente, lo que indica que estos
microorganismos pueden degradar parte de
la materia orgánica presente en el RGI en las
condiciones establecidas en el laboratorio.
Tabla 2. Contenido de grasa, carga bacteriana y pH en los sistemas bacterianos (A1) respecto al
tiempo de incubación.
Parámetros
Grasa remanente
Grasa
pH
(mg)
consumida (mg)
427.6 ±70.8
0
2.87 ±2.05
0
7.1
[100%]
360.7±80.9
66.9 ±23.9
24
9.53 ±0.99
7.0
[84.3%]
[15.7%]
254.8 ±85.4
172.8 ±15.1
48
36.0 ±29.82
7.0
[59.6%]
[40.4%]
200
227.16
72
46.0
7.0
[46.8]
[53.2%]
Nota: Los valores en corchetes representan el porcentaje de grasa remanente o consumida en 20mL
de muestra analizada.
Tiempo
(h)
Carga bacteriana
(UFC/mL)x10-7
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Tabla 3. Parámetros fisicoquímicos y biológicos durante el biotratamiento RGI.
Parámetros
Sistema
A2 y A3
Tiempo
(días)
UFC/mL
Grasa
remanente
(mg)
Grasa
consumida
(mg)
pH
DQO
(mgO2/L)
DBO5,20º
(mgO2/L)
0
51x106
373,6
0
7,0
37.091
11.900
271,8
7,2
29.808
(72,7%)
315,9
14
14,4x108
57,9
7,1
22.096
(84,5%)
341,5
21
>1010
32,3
7,0
14906
(91,4%)
Nota: los números entre paréntesis indican el porcentaje de remoción de grasa.
7
36,4x107
101,9
3.2.2 Determinación cuantitativa de la
actividad lipolítica.
La actividad enzimática se determinó por
titulación potenciométrica de los ácidos
grasos liberados empleando NaOH como
agente titulante y aceite de oliva como
sustrato. Estas actividades lipolíticas se
detectaron a 24 y 48 horas de crecimiento
bacteriano en los SLC de los cultivos
evaluados. Los resultados obtenidos se
muestran en la Figura 1 y Tabla 4. Las
gráficas de la figura 1, muestran la actividad
lipolítica total in vitro obtenida para cada
una de las cepas aisladas a los tiempos de
incubación indicados. Dichas actividades
7.900
incrementaron linealmente con el tiempo
hasta alcanzar valores máximos aproximados
a 0,25 mmoles de ácidos grasos liberados a
las 48 horas de tratamiento bacteriano. De
las cinco cepas aisladas, la cepa 3,
perteneciente al género Bacillus, mostró la
mayor actividad lipolítica (0,21 y 0,26
mmoles) a las 24 y 48 h de incubación
respectivamente, mientras la cepa 5,
perteneciente al género Enterobacter, mostró
valores mínimos (0,13 y 0,13 mmoles). El
resto de las cepas bacterianas mostraron
valores de actividad cercanos 0,18 mmoles a
los tiempos de tratamiento indicados.
Tabla 4. Actividad enzimática específica de los SLC provenientes de las cepas bacterianas
aisladas a las 24 y 48 horas de biotratamiento.
Actividad
Actividad enzimática
Proteínas
enzimática total
específica
Cepa
μg x mL-1
mmol x min-1
mmol x min-1x ug-1
24h
48h
24h
48h
24h
48h
131.5
144.5
18.8±1.4
22.8±5.9
0.143
0.158
1
114.3
141.0
17.4±1.3
19.4±1.8
0.152
0.138
2
137.9
133.8
21.0±1.7
24.4±7.7
0.152
0.182
3
119.7
134.7
17.8±3.1
19.0±3.1
0.148
0.141
4
120.5
148.8
17.6±1.5
21.2±1.7
0.146
0.142
5
112
González, D., Amaíz, L, Medina L, et al. 2012. Rev Latinoam Biotecnol Amb Algal 3(2):105-118
Pseudomonas (48h)
0,25
0,25
0,2
0,2
0,15
0,1
C1
C2
0,05
moles de ac. grasos
mmoles ac. grasos
Pseudomonas (24h)
0,15
0,1
C1
0,05
C2
0
0
0
4
8
12
16
0
20
4
8
0,2
0,2
0,15
0,1
C3
C4
0,05
0
moles de ac. grasos
12
16
moles de ac. grasos
0,25
0,15
0,1
C3
0,05
C4
0
0
20
4
8
12
16
Tiempo (h)
Tiempo (h)
Enterobacter (24h)
Enterobacter (48h)
0,25
0,25
0,2
0,2
0,15
0,1
0,05
C5
moles de ac. grasos
moles ac. grasos
0,25
8
20
Bacillus (48h)
Bacillus (24h)
4
16
Tiempo (h)
Tiempo (min)
0
12
20
0,15
0,1
0,05
C5
0
0
0
4
8
12
Tiempo (h)
16
20
0
4
8
12
16
20
Tiempo (h)
Figura 1.- Actividad lipolítica de las cepas aisladas del RGI a 24 y 48 horas de incubación.
Valores de regresión lineal: Para 24h; Cepa 1: Y=0,0094x-0,0014; R2= 0,9995; Cepa 2:
Y=0,0087x+0,0062; R2= 0,9953; Cepa 3: Y=0,0105x+0,01; R2= 0,9927; Cepa 4:
Y=0,0089x+0,007; R2= 0,9948; Cepa 5: Y=0,0088x-0,0053; R2= 0,9948. Para 48h; Cepa 1:
Y=0,0114x + 0,0215; R2= 0,9825; Cepa 2: Y=0,0097x + 0,0141; R2= 0,9906; Cepa 3: Y=0,0122x
+ 0,0289; R2= 0,9808; Cepa 4: Y=0,0095x + 0,0244; R2= 0,974; Cepa 5: Y=0,0106x + 0,0060;
R2= 0,9936.
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González, D., Amaíz, L, Medina L, et al. 2012. Rev Latinoam Biotecnol Amb Algal 3(2):105-118
4. Discusión
Luego de incubar el RGI en un medio
mínimo mineral estéril, en condiciones de
laboratorio, el crecimiento bacteriano se
evidenció por la turbidez desarrollada en los
medios de cultivo y posterior aislamiento de
colonias bacterianas. Cinco fueron los
morfotipos preponderantes en placas de agar
AN, los cuales fueron asignados a los
géneros Pseudomonas (cepas 1 y 2), Bacillus
(cepas 3 y 4) y Enterobacter (cepa 5), (tabla
1). Estos tres géneros bacterianos han sido
ampliamente utilizados en proceso de
degradación de aguas residuales y residuos
grasos (Mendes et al. 2006; Ruggieri et al.
2008; Browns, 2009; Cipinyte et al. 2009).
Generalmente, las cepas pertenecientes al
género Enterobacter son indicadores de
contaminación sanitaria (heces y orina de
origen animal); su presencia en tal residuo es
de esperarse debido a la procedencia del
material que se está tratando. Prasad y
Manjunath, 2011, reportaron que un
consorcio bacteriano conformado por
Pseudomonas, Bacillus y Acinetobacter
degradaron un 99% el contenido graso y la
DBO5,20º al biotratar residuos grasos
provenientes
de
diferentes
orígenes
(domésticos, industrial, mataderos, entre
otros.). Es importante resaltar que el residuo
tratado en este estudio, es un material que
proviene de una procesadora de productos
cárnicos y que además de contener grasas,
también contiene carbohidratos, proteínas y
otros componentes que, eventualmente
podrían coadyuvar a la viabilidad de la
población microbiana presente. Bajo estas
condiciones, las bacterias fueron capaces de
degradar en un alto porcentaje la grasa
contenida en ese residuo (53,2 % a las 72 h
de tratamiento y 91,4 % a los 21 días, tablas
2 y 3, respectivamente) y lograron reducir en
un alto porcentaje (60 %) el valor de la
DQO, sin embargo la remoción de la
DBO5,20 solo alcanzó el 33 % (tabla 3). El
valor relativamente alto de la DBO5,20
remanente (67 %) podría ser explicado por la
persistencia de componentes no lipídicos en
el RGI (polisacáridos, proteínas), debido a:
cantidades inadecuadas de las enzimas
encargadas de su degradación (glucanasas,
proteasas); condiciones experimentales no
apropiadas para la actividad enzimática, o
por un efecto del alto contenido graso que
interfiere físicamente con la degradación de
tales componentes al bloquear los enlaces
químicos que atacan dichas enzimas. El
contenido de grasa remanente a tiempo cero
suministra un dato que permite calcular la
cantidad de grasa presente en el RGI.
Tomando el valor promedio (400,6 mg) de
las determinaciones señaladas en las tablas 2
(427,6 mg) y 3 (373,6 mg), equivalentes a 20
mL de 110 mL de cultivo, conteniendo 10 g
de RGI, se obtiene un valor de 22 g de grasa
por 100 g de RGI. La diferencia en los
valores individuales a tiempo cero, es debida
a la consistencia heterogénea del RGI, lo
cual puede apreciarse en la desviación
estándar reportada en la Tabla 2.
El comportamiento de los SLC, en los
ensayos para la determinación cuantitativa
de la actividad de lipasas (figura 1), indicó
que en todos los casos el orden cinético de
reacción, respecto al substrato, fue cero,
condición necesaria para la determinación
cuantitativa de actividades enzimáticas
(Daniele et al., 2011). Las tasas de actividad
lipolítica se calcularon en base a las curvas
de regresión lineal, obtenidas con los
mmoles de ácidos grasos liberados, en el
intervalo de tiempo de 0 a 20 minutos,
determinándose las pendientes respectivas,
las cuales son equivalentes a las tasas de
actividad expresadas como mmol x min-1.
Los valores calculados, en todos los casos,
oscilaron en el intervalo de 8,7-11,4 mmol x
min-1 (figura 1). Además, la presencia de
actividad lipolíticas en los SLC, indica que
las bacterias excretan lipasas activas al
medio de cultivo (Valencia, 2009).
En la tabla 4, se evidencia que las
actividades específicas de cada una de las
114
González, D., Amaíz, L, Medina L, et al. 2012. Rev Latinoam Biotecnol Amb Algal 3(2):105-118
cepas aisladas a 24 y 48 h de biotratamiento,
mostraron actividades específicas ubicadas
en el intervalo de 0,141 y 0,158 mmol x min1
x μg-1 , no existiendo diferencias notables
entre los valores a las 24 y 48 h, ni entre las
diferentes cepas bacterianas. Aunque existen
reportes que indican que cepas del género
Bacillus son los mejores productores de
enzimas lipolíticas y las más adecuadas para
degradar residuos grasos (Rivera y García,
2007), Hasanuzzaman et al. 2004; Cipinyte
et al. 2009, señalan que microorganismos del
género Pseudomonas, Serratia, Enterobacter
y Burkholderia, son también capaces de
degradar residuos grasos, pero su actividad
lipolítica es baja debido a que los ácidos
grasos de cadenas largas, productos de la
hidrólisis enzimática, se acumulan en el
medio limitando dicha actividad. En nuestro
caso, bajo las condiciones experimentales
utilizadas, no pareciese haber diferencias
notables
entre los géneros bacterianos
evaluados, en términos de producción de
lipasas e hidrólisis de residuos grasos.
Tomando en consideración el promedio de
las actividades específicas (0,15 mmol x
min-1 x µg-1), la cantidad teórica de grasa
(expresada como tripalmitina con un peso
molecular de 800 g/mol) que podría degradar
una mezcla de los SLC de las cepas, podría
ascender a 40 Kg por cada gramo de
proteínas
bacterianas
extracelulares
presentes en el medio de cultivo (140,6
μg/mL, promedio del contenido de
proteínas/mL de los SLC a las 48 h de
incubación, tabla 4). A ésta concentración
proteica, se necesitarían unos 7,1 L de SLC
para degradar los 40 Kg de grasa, lo que
podría representar el tratamiento de unos 180
Kg de RGI (asumiendo 22 % de grasa en el
residuo). Finalmente, la actividad enzimática
específica promedio de los SLC, expresada
en unidades por mg de proteína (150 U/mg),
se encuentra entre las más altas de las
ofrecidas por Sigma-Aldrich (2011-2012),
para preparaciones de lipasas bacterianas
(Chromobaterium viscosum, 2000-8000
U/mg; Pseudomonas fluorescens, 300 U/mg;
Pseudomonas cepacia,
50 U/mg;
Pseudomonas sp, 15 U/mg; Burkholderia sp,
12 U/mg; Thermus flavus y T. thermophilus,
3 U/g).
Los valores de actividades enzimáticas
demuestran que, la población bacteriana,
puede degradar este tipo de residuo,
excretando al medio enzimas lipolíticas, lo
cual conlleva la remoción de los
componentes carbonados lipídicos que
conforman el residuo.
Actualmente, se está aplicando este
consorcio bacteriano en trampas de grasas
localizadas en industrias procesadoras de
cerdos y aves, que luego de tres meses y con
aplicaciones diarias, han obtenido un
porcentaje de remoción de 90% del volumen
que ocupan estos residuos, además de la
eliminación de olores desagradables
ocasionados por los mismos. Los detalles de
tales tratamientos son de naturaleza
confidencial, no obstante se muestran
imágenes de las trampas de grasa (Figura 2)
de dos empresas que actualmente emplean
este
consorcio
bacteriano
para
el
biotratamiento de sus residuos grasos.
Consecuentemente, estos microorganismos
pueden ser potencialmente empleados no
solo para aplicaciones industriales, sino
también para solucionar en un gran
porcentaje los problemas ambientales que
estos residuos ocasionan.
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González, D., Amaíz, L, Medina L, et al. 2012. Rev Latinoam Biotecnol Amb Algal 3(2):105-118
Figura 2. Trampas de Grasa de dos empresas generadoras de residuos grasos
después de tres meses de tratamiento con el consorcio bacteriano. Las imágenes a la
izquierda y derecha representan la situación antes y después del biotratamiento
respectivamente.
5. Conclusiones
Un total de 5 cepas bacterianas fueron
aisladas del RGI, identificándose, mediante
pruebas bioquímicas, tinción de Gram y
galerías API, como perteneciente a los
Bacillus
y
géneros
Pseudomonas,
Enterobacter. El consorcio bacteriano
degradó, en 21 días de biotratamiento, 91,4
% del contenido graso del residuo;
disminuyendo en un 33,6 % la DBO5,20º y un
59,8% la DQO. La actividad lipolítica de las
cepas se demostró cuantitativamente
(titulación potenciométrica) utilizando aceite
de oliva como sustrato alcanzó valor
promedio de 150 U/mg de proteínas. Aunque
las cepas Bacillus presentaron la mayor
actividad lipolítica, no existieron diferencias
notables en las actividades enzimáticas
determinadas entre las cepas evaluadas. Este
consorcio bacteriano puede ser empleado a
nivel industrial para el biotratamiento de
residuos con alto contenido lipídico.
116
González, D., Amaíz, L, Medina L, et al. 2012. Rev Latinoam Biotecnol Amb Algal 3(2):105-118
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