2do. informe - Biodiversidad Mexicana

Transcription

2do. informe - Biodiversidad Mexicana
Proyecto Recopilación y análisis de la información existente de
las especies de los géneros Cucurbita y Sechium que crecen y/o
se cultivan en México
Responsable
Dr. Rafael Lira Saade, FES Iztacala, UNAM
Co-responsables
Dr. Luis Eguiarte Fruns, Instituto de Ecología, UNAM
Dr. Salvador Montes Hernández, INIFAP, Campo Experimental Bajío
Segundo Informe (Julio 2009)
Objetivos del Proyecto y Preguntas a Resolver
Este proyecto pretende contribuir a la construcción de una política de
estado clara y permanente respecto a la conservación in situ de los recursos
genéticos para los que nuestro país es centro de origen y diversidad, mediante la
detección de riesgos a la diversidad genética de las especies domesticadas de los
géneros Cucurbita y Sechium, tanto por la liberación de organismos
genéticamente modificados o por otros aspectos que pudieran promover la pérdida
de variedades locales de los taxa domesticados y sus parientes silvestres más
importantes. Las preguntas a resolver por el proyecto son:
1. ¿Cuál es la representación taxonómica de ambos géneros en México?
2. Considerando lo señalado por el artículo 87 de la Ley de Bioseguridad de
los Organismos Genéticamente Modificados ¿Cuáles son los elementos
que permitirían proponer a México como centro de origen de especies
domesticadas de los géneros Cucurbita y Sechium?
3. ¿Cuál es la diversidad de las especies domesticadas de los géneros
Cucurbita y Sechium que se cultivan en México y cómo está distribuida en
el país?
4. ¿Cuáles son las especies silvestres más cercanamente relacionadas con
las especies domesticadas de ambos géneros, en donde están distribuidas
y cuáles podrían considerarse como áreas de riqueza?
5. ¿Cuál es la situación legal y real en términos de conservación de dichas
especies?
6. ¿Existen organismos genéticamente modificados de ambos géneros que ya
hayan sido liberados o que estén en posibilidades de serlo?
7. Considerando los modos de reproducción de las especies de ambos
géneros ¿cuáles serían los riesgos reales y potenciales relacionados con la
posible liberación de organismos genéticamente modificados?
8. Considerando los aspectos señalados en los puntos 2-6 ¿Cuáles podrían
ser otros riesgos potenciales para la diversidad genética de las especies
silvestres y domesticadas de ambos géneros en México?
Contenido del Informe
En el primer informe se cubrieron totalmente las respuestas a las preguntas
1 y 2 y parcialmente a la pregunta 4. En este informe se presentan las respuestas
a la pregunta 3 y se complementan las correspondientes a los aspectos faltantes
de responderse para la pregunta 4. Como en el informe anterior, la información
respecto a los temas que se comprometieron para resolverse en esta entrega y las
fuentes consultadas, se presentan por separado para cada género.
2
Cucurbita L.
3
1. Resumen de las Conclusiones del Primer Informe y Otras
Fuentes de Evidencia que las Corroboran
El marco de referencia de este informe son las conclusiones derivadas del
análisis de la información presentada en el primer informe, las cuales pueden
resumirse de la siguiente forma:
1. El continente americano es la región del mundo de donde son originarios
los taxa silvestres y domesticados del género Cucurbita.
2. México es el centro de origen y diversidad del género, pues dentro de sus
límites geográficos prosperan 15 de los 20 taxa que lo conforman.
3. Los taxa mexicanos incluyen plantas domesticadas (C. argyrosperma ssp.
argyrosperma, C. pepo ssp. pepo, C. ficifolia y C. moschata), así como dos
de sus ancestros silvestres (C. fraterna ssp. fraterna y C. argyrosperma ssp.
sororia).
4. Los restantes 9 taxa silvestres que crecen en México están relacionados en
mayor (C. okeechobeensis ssp. martinezii y C. lundelliana) o menor grado
(todas las de los grupos Digitata y Foetidissima) con las plantas
domesticadas.
5. Desde el punto de vista arqueológico, México también es sumamente
importante, pues los restos más antiguos conocidos de tres de las plantas
domesticadas del género (C. argyrosperma ssp. argyrosperma, C. pepo
ssp. pepo y C. moschata) también se han recuperado dentro de sus límites.
Diferentes estudios modernos que han empleado distintos marcadores
moleculares han confirmado muchas de estas conclusiones y especialmente las
referentes a las relaciones dentro del género Cucurbita y en particular las
correspondientes a los grupos silvestre-domesticada. Los resultados de dos de los
trabajos más importantes en este tema se presentan continuación.
1. Wilson et al. (1992). En este trabajo se estudió la filogenia del género
usando RFLPs del cloroplasto. La reconstrucción filogenética obtenida
(Figura 1) muestra en la base al único miembro del grupo Digitata (C.
digitata), seguido de un grupo formado por los dos miembros del grupo
Foetidissima (C. foetidissima y C. pedatifolia) y un gran clado en el que
están ubicadas todas las plantas domesticadas y sus parientes silvestres.
En la base de este gran clado está C. ficifolia, y le siguen tres clados, uno
de los cuales incluye a los taxa del grupo Pepo (referidos como C. fraterna,
C. pepo y C. texana), otro en el que se ubican los taxa de los grupos
Argyrosperma (referidos como C. mixta y C. sororia) y Okeechobeensis
(referido como C. martinezii) y C. lundelliana, además de C. moschata, y
uno más conformado por los taxa del grupo Maxima (referidos como C.
máxima y C. andreana) y C. ecuadorensis. Las plantas domesticadas del
grupo Pepo se dividieron en dos grupos: uno asociado a C. texana y otro a
C. fraterna. Los análisis no resolvieron más finamente las relaciones entre
C. moschata y el grupo Argyrosperma.
4
Figura 1. Filogenia del género Cucurbita obtenida por Wilson et al. (1992)
Sanjur et al. (2002). En este trabajo se analizaron 65 individuos de ocho taxa
silvestres y seis cultivados de Cucurbita, usando el intrón 2 del gene nad1 de la
mitocondria, que es de unos 1.6 kilo-pares de bases. La filogenia se obtuvo
mediante el método de Maximum Likelihood (Máxima Verosimilitud) y como
grupos externos se usaron al chayote, Sechium edule y a la sandía Citrullus
lanatus. Al igual que en el estudio anteriormente descrito, en el cladograma
obtenido en este trabajo (Figura 2) la especie basal del grupo de las
domesticadas y sus parientes y/o ancestros silvestres resultó ser C. filicifolia,
aunque en este caso seguida de C. foetidissima, una de las especies perennes
del género y poco emparentada con las domesticadas. Posteriormente el árbol
se divide en dos clados, uno de los cuales es exclusivamente sudamericano,
formado por el grupo Maxima (referidos como C. máxima y C. andreana) y
teniendo como grupo hermano a C. ecuadorensis. El otro clado presenta en la
base al único miembro del grupo Okeechobeensis, C. okeechobeensis ssp.
martinezii (como C. martinezii) y posteriormente los taxa del grupo Pepo
formando dos agrupaciones: una que incluye a una parte de las plantas
domesticadas (referida como C. pepo ssp. ovifera, con sus diferentes
variedades), y a C. pepo ssp. fraterna, todos con el mismo haplotipo
5
mitocondrial, y otra que sólo contiene plantas domesticadas (referidas como C.
pepo subs. pepo) seguida por el grupo Argyrosperma y C. moschata.
Figura 2. Filogenia del género Cucurbita obtenida por Sanjur et al. (2002)
Lo consignado en estos estudios deja en claro que, en México están presentes,
tanto la mayoría de las plantas domesticadas y sus parientes silvestres de
Cucurbita (con la excepción del grupo Maxima y C. ecuadorensis), como los taxa
registrados en ambas filogenias como los más basales y los más derivados, por lo
que no queda duda que nuestro país es el centro de origen y diversidad del
género. En las siguientes secciones de este informe se presenta un análisis de los
datos existentes sobre la variación morfológica, agrícola y genética, así como la
distribución y difusión de los cuatro taxa domesticados que se cultivan en México,
así como también de sus ancestros reconocidos y parientes silvestres más
cercanos, es decir todos los taxa del grupo Argyrosperma y la mayoría de los
reconocidos para los grupos Okeechobeensis y Pepo, además de C. ficifolia, C.
moschata y C. lundelliana.
6
2. Información del Grupo Argyrosperma y C. moschata
En virtud de la estrecha relación entre las plantas de estos grupos, la
información recopilada para ambos se presenta en esta sección.
Variación morfológica, agrícola, nomenclatura tradicional y diversidad
genética. La variación de la subespecie argyrosperma incluye las razas o
variedades locales empleadas como alimento que se cultivan en el suroeste de
Estados Unidos, México y Centroamérica, además de unos cuantos cultivares
comerciales que han sido desarrollados fundamentalmente en los Estados Unidos y
entre los que destacan los llamados "Green Striped Cushaw", "White Cushaw",
"Magdalena Striped", "Papago", "Japanese Pie", "Hopi", "Taos", "Parral Cushaw",
"Veracruz Pepita" y "Silver Seed Gourd"; este último, segun Merrick (1990), es
aparentemente cultivado más bien como una curiosidad hortícola. Las variaciones
más importantes que se observan entre estos tipos cultivados corresponden a las
dimensiones, formas y patrones de coloración de los frutos y las semillas.
En contraste, C. moschata despliega una amplia variación en todos los
aspectos. Se cultiva en un relativamente amplio intervalo geográfico-altitudinal en
que se cultiva, presenta una notable diversidad morfológica de sus frutos (colores,
formas, y grosores y durabilidad de la cáscara del fruto, etc.) y semillas, y se han
registrado variantes con ciclos de vida de diferente duración, así como numerosos
cultivares y razas o variantes locales en varias partes del mundo con características
agronómicas sobresalientes. Ejemplos de cultivares muy conocidos en los Estados
Unidos son los llamados "Butternut Squash" y "Golden Cushaw", mientras que
algunas variantes regionales interesantes que se cultivan en México son las de la
Península de Yucatán con dos ciclos de vida de diferente duración (Xmejen K’uum
de ciclo corto y Xnuk K’uum de ciclo largo) y una variedad comercial (Calabaza
Yucateca) muy apreciada en toda la región, así como también las cultivadas en
algunos estados mexicanos como Guanajuato y Chiapas, en las que se ha
encontrado resistencia a algunas enfermedades virales y que ya han sido
empleadas con cierto éxito en programas de mejoramiento.
Los nombres comunes asignados en México para ambos cultivos reflejan su
importancia y hasta cierto punto las diferencias en la variación desplegada por cada
una de ellas. Estos nombres son los siguientes:
Subespecie argyrosperma
Chihuahua: Babaskil Imai, Alimai, Vavuli, Iimvavuli, Iim, Bajchi, Arota,
Cherota. Sonora-Sinaloa: Arota, Haal, Aali, Calabaza, Calabaza Caliente,
Calabaza de Las Aguas, Calabaza Pinta. Sinaloa-Nayarit: Tecomata,
Temprana, Salayota. Jalisco: Calabaza Pinta. Michoacán: Chuma, Zapoma,
Calabaza de Casco, Calabaza Criolla, Calabaza Tupona. Guerrero:
Calabaza Pipiana, Pipiana. Tamaulipas-San Luis Potosí: Calabaza Pama,
7
Calabaza Borrada. Tamaulipas: Calabaza Rayada, Calabaza Guajolota.
Veracruz: Nipxi, Pipián. Oaxaca: Chompa, Jit-tsen, Kuij-che'. Península de
Yucatán: Xka', Xtoop, Kaíta, Calabaza de Pepita Gruesa. Sur de
Campeche, Tabasco y posiblemente Chiapas: Chihua.
Cucurbita moschata
Chihuahua: Calabaza de Castilla, Calabaza Cuaresmera, Calabaza
Caliente, Tongudat Vavuli, Sequaloa. Sonora, Sinaloa, Nayarit: Sequaloa.
Michoacán: Calabaza, Chicamita, Calabaza de Pellejo. Guerrero:
Tamalayota. Oaxaca: Tamalayota, Támala, Calabaza de Castilla, Mmá, Kámí, Ká-maaré, Ká-narin, Ká-rumi, Moen-yé, Calabaza de Camote, Shikinñaami. Tamulipas: Calabaza de Castilla, Calabaza de Casco, Calabaza de
Pellejo. Veracruz y Tabasco: Calabaza. Península de Yucatán y otras
áreas de influencia Maya en Chiapas: K'uum y numerosas variaciones de
este nombre modificadas por descriptores de diferentes características de las
razas locales cultivadas, calabaza de pepita menuda.
El estudio de la variación genética del Grupo Argyrosperma y C. moschata ha
sido motivo de unos cuantos trabajos, los cuales son analizados a continuación.
1. Wilson (1990). En este estudio se analizaron de manera simultánea 46
poblaciones con datos de 9 loci isoenzimáticos y 24 alelos para variedades
criollas de C. moschata y C. argyrosperma subsp. argyrosperma (como C.
mixta) y poblaciones silvestres de C. argyrosperma subsp. sororia de varias
regiones de México. El fenograma resultante (Figura 3) mostró dos
agrupaciones principales. La agrupación A en donde se encuentra
solamente la especie empleada como grupo externo (C. galeottii), y la
agrupación B conformada por las agrupaciones C (plantas de C. moschata)
y D (plantas del Grupo Argyrosperma). La agrupación C es en la que se
registró mayor variación genética, mientras que para la agrupación D se
encontró amplio flujo genético entre las subespecies argyrosperma y
sororia, pero un poco menor variación genética total que la registrada para
C. moschata.
2. Montes-Hernández y Eguiarte (2002). Estos autores usaron 12 loci
isoenzimáticos para estudiar 11 poblaciones de plantas domesticadas y
silvestres del Grupo Argyrosperma, cuatro de C. moschata y una de C.
pepo como grupo externo, todas ellas del Estado de Jalisco. Los resultados
(Figura 4) revelaron agrupaciones prácticamente idénticas a las reportadas
por Wilson (1990), y los niveles de variación genética para todas las
poblaciones fueron altos, un poco más altos en las poblaciones de la
subespecie sororia (Heterocigósis promedio esperada de entre 0.411 a 0.
433), un poco más bajos en la subespecie argyrosperma (H entre 0.356 a 0.
419) e intermedios en C. moschata (H entre 0.356 a 0.4579).
Adicionalmente, se encontró un exceso de heterócigos en las poblaciones y
que la diferenciación genética total (Fst) para los tres taxa y las 15
8
poblaciones fue de 0.087, lo cual sugiere cierto flujo génico entre todo el
conjunto (Nm = 5.22). Finalmente, el estudio también mostró baja
diferenciación genética (medida como la Fst,) entre las poblaciones de cada
taxon (subespecie sororia Fst = 0.04; Nm = 18.85, subespecie argyropserma
Fst = 0.096; Nm = 5.74 y C. moschata Fst = 0.077; Nm = 11.54) (Figura 4).
Figura 3. Resultados del análisis de variación genética de las plantas del grupo
Argyrosperma y C. moschata, realizado por Wilson (1990).
9
_____________________________________________________________________________
Localidad(no. pobl.)
Fis
Fit
Fst (Nm)
_____________________________________________________________________________
Total(15)
-0.061
0.031
0.087 (5.22)
C. arg.sororia (5)
0.004
0.044
0.40 (18.85
C.arg.argyrosperma(6)
-0.042
0.058
0.096 (5.74)
C. moschata(4)
-0.162
0.0956
0.0259 (11.54)
San Miguel (4)
-0.142
-0.109
0.028 (22.46)
San Lorenzo(3)
-0.075
0.133
0.062 (4.41)
El Chante (3)
-0.001
0.099
0.099 (3.24)
Los Parajitos (3)
0.1000
0.061
0.116 (3.31)
_____________________________________________________________________________
Figura 4. Resultados de los análisis de variación genética de las plantas del grupo
Argyrosperma y C. moschata realizado por Montes-Hernández & Eguiarte (2002).
3. Ferriol et al. (2004). En este trabajo se analizó una colección de muestras
de C. moschata, elegidas para representar la variación morfológica de los
frutos encontrados en España y las Islas Canarias. Para el análisis se
emplearon AFLPs y SRAPs (sequence-related amplified polymorphism) y
características morfológicas, registradas para 47 accesiones que incluían
12 accesiones de Centro y Sudamérica, dos de Marruecos y una variedad
comercial (Butternut, de los Estados Unidos). Los SRAPs dieron 148
fragmentos (loci) reproducibles, 98 (66.2%) polimórficos, mientras que con
los AFLPs se obtuvieron 156 bandas (loci), 134 (85.9%) polimórficos. Las
plantas se separaron según su origen en dos grandes agrupaciones, una
con accesiones de Sudamérica y otra con accesiones tanto de América
10
Central como de España (Figura 5). Este arreglo fue interpretado como la
posibilidad de que hayan existido dos procesos de domesticación
independientes: una que da origen a los materiales de Sudamérica y otra a
las variedades de América Central, de donde viene los cultivares de la
península Ibérica y de las Islas Canarias. Los SRAPs permitieron separar
mejor las accesiones de América del Sur y separaron a las accesiones de la
Península Ibérica de las de las Islas Canarias. Desafortunadamente el
estudio no incluye ninguna planta de México, pero queda claro que los
SRAPs podrían dar una buena resolución para clasificar la diversidad de
este cultivo en nuestro país.
Figura 5. Resultado del análisis de SRAPs (sequence-related amplified polymorphism)
para variedades de C. moschata presentado por Ferriol et al. (2004).
Distribución y difusión del cultivo. El cultivo de la subespecie argyrosperma y de
C. moschata sido documentado para muchas partes de México en los que con
frecuencia se siembran juntas (Figura 6). Sin embargo, los datos acerca de la
difusión extra-americana de la primera son muy escasos y aunque fue originalmente
descrita en el Viejo Mundo, no se tiene la certeza de que en el pasado haya sido
cultivada en esas regiones. El dato más reciente de su presencia en el Viejo Mundo,
11
lo representan los reportes de frutos de este cultivo en varios mercados de China.
En Centroamérica como en México, también es comúnmente cultivada y conocida
como Pipián, Pepitoria, Saquil, Shaquila o Chiua, mientras que para América del
Sur se sabe que se cultiva en Perú y Argentina, aunque parece ser que se trata de
introducciones muy recientes. Las razones de la escasa difusión a nivel mundial de
las plantas de esta subespecie son desconocidas y un tanto sorprendentes,
principalmente porque las dimensiones de las semillas de las formas cultivadas
pudieron resultar atractivas para los primeros europeos que las conocieron.
La difusión de C. moschata nuevamente contrasta con la de la subespecie
argyrosperma, pues está presente prácticamente en todo el mundo. La amplia
adaptación a las más diversas condiciones ecológicas de sus distintas variantes o
razas, seguramente facilitó su temprana difusión hacia otros países fuera de
Latinoamérica. Esto puede ser inferido de la existencia de la variante llamada
Seminole Pumpkin y cultivada desde tiempos precolombinos por grupos indígenas
de Florida, las ilustraciones botánicas de sus frutos realizadas en Europa en el siglo
XVII y las variantes existentes en varios países de Centroamérica con nombres
comunes nativos como Ayote, derivado del Nahuatl Ayotli y K’uum, de origen Maya.
Esta difusión debe haber sido lo suficientemente continua e intensa para
poder alcanzar muchos otros puntos del mundo durante el siglo XIX, cuando C.
moschata aparentemente ya se cultivaba en países como la región oriental de la
India, Java, Angola y Japón. De acuerdo con estos datos, al parecer C. moschata
llegó a Europa procedente de Oriente, lo cual en cierta medida seguramente
contribuyó a acuñar la teoría de su origen asiático.
Referencias bibliográficas y reportes de colecciones de germoplasma,
indican que en la actualidad los frutos de C. moschata son muy apreciados como
alimento humano y animal en Estados Unidos, la India y Nigeria, además de que
también se le cultiva en muchas otras regiones de Africa (Egipto, Etiopia, Zambia y
Zimbabwe), Asia (República Popular de China, Tailandia y Malasia) y Europa
(Bulgaria y Yugoslavia). En América del Sur se ha documentado su presencia en
Colombia, Venezuela, Ecuador (Auyama, Zapallito, Zapallo y similares), Perú
(Yuwi), Brasil (Jurimú, Jurimúm, Ka-apor, Albolboda) y Bolivia (Joko).
3. Información de Cucurbita ficifolia
Variación morfológica, agrícola, nomenclatura tradicional y diversidad
genética. Cucurbita ficifolia es con mucho la especie menos diversa de todas las
especies domesticadas del género y no se sabe que se hayan desarrollado
cultivares comerciales. Desde el punto de vista morfológico, las variaciones más
importantes se presentan en los patrones de coloración y dimensiones de sus frutos
12
Figura 6. Mapas de la distribución conocida para México de las plantas del Grupo
Argyrosperma y de C. moschata, basados en los registros consignados en las bases de
datos de la CONABIO.
13
y semillas (frutos blancos a verdes con diferentes patrones de manchas o franjas
blancas, y semillas pardo claras a pardo obscuras o negras), pero la correlación
entre estas variantes fenotípicas se desconoce.
La relativamente escasa variación morfológica de esta especie, es
congruente con la observada a nivel de los patrones de isoenzimas, pues en el
único estudio realizado para este cultivo con este tipo de marcadores, sólo 5 de 50
loci analizados mostraron variación. Este resultado, sin embargo, debe tomarse con
reservas, pues las colecciones empleadas no abarcaron un amplio rango
geográfico, principalmente en lo que corresponde a Centroamérica y América del
Sur. Vale la pena señalar que la mayor cantidad de accesiones (28) analizadas en
ese trabajo fueron recolectadas en México.
No obstante lo anterior, desde el punto de vista agronómico es posible
pensar en la existencia de cierta diversidad genética para C. ficifolia, por tres
razones principales: 1) Se cultiva en una amplia región geográfica cuyas
condiciones, aunque relativamente uniformes en cuanto a la altitud, seguramente
son más diversas en cuanto a otros factores ecológicos locales; 2) es una especie
que puede ser cultivada de manera indistinta tanto en sistemas agrícolas de alta
competencia (milpas de temporal), como en otros que permiten un manejo más
intensivo (milpas cultivadas en épocas de sequia en terrenos de humedad, huertos,
solares, etc.); y 3) se han detectado colecciones con resistencia diferencial a
enfermedades virales de gran importancia para las restantes especies cultivadas del
género. La productividad en cuanto al número de frutos y la cantidad de semillas por
fruto, es otro aspecto que posiblemente refleje la diversidad genética de la especie.
Observaciones de campo han revelado que algunos frutos de tamaño mediano
contienen más de 500 semillas y que cada planta puede llegar a producir
numerosos frutos. Desafortunadamente, hasta la fecha ninguno de los aspectos
antes mencionados ha sido evaluado desde esta perspectiva y se requieren
observaciones más sistemáticas al respecto para ampliar el conocimiento acerca de
la variación genética de este cultivo.
Difusión del cultivo. El cultivo de Cucurbita ficifolia se practica en un área
relativamente amplia de México (Figura 7) y abarca hasta Argentina y Chile. Se
sabe que su difusión hacia otras regiones del mundo como Europa (Francia y
Portugal, por ejemplo) y Asia (India), se inició en los siglos XVI-XVII, cuando sus
frutos llegaron al Viejo Mundo por la ruta América del Sur-India. Desde entonces, su
cultivo se ha extendido a otros países como España, Alemania, Francia, Japón y
Filipinas. Exploraciones botánicas realizadas en el noroeste de México, indican que
ésta región posiblemente sea el área de expansión más reciente de esta especie en
América.
La importancia de este cultivo para los diferentes grupos humanos de México
y otras partes del mundo, se puede inferir de los nombres comunes que se han
podido documentar y que se enlistan a continuación.
14
Estados Unidos: Fig Leaf Squash, Fig Leaved Gourd, Malabar Gourd.
México en general: Chilacayote, Chilacayota (nombres de origen Náhuatl
derivados de tzilacayotli o tzilicticayotli. Chihuahua: Imai, Pipintimai, Xiotai,
Xiloc. Veracruz: Chilaca, Calabaza. Oaxaca: Kán, Shikin-tinduyu, Itú-beesi,
Ietu-wetsi, Jit-wes, Caj-tsé. Chiapas: Mayil, Ook. Guatemala: Chilacayote,
Ayote-chilacayote, Cidracoyote, Ccoocc, Elaoc, Ooc. Costa Rica: Chiverre,
Chiverri. Colombia: Auyama, Victoria, Vitoriera, Mexicana, Calabaza.
Venezuela: Zapallo, Zapayo. Ecuador: Zambo, Sambo, Zambu, Tambo.
Perú: Calabaza, Calabaza Blanca, Lacayota. Bolivia: Lacayota, Lacayute,
Blanca, Lacayo. Bolivia, Peru y Norte de Argentina: Lacahuiti, Silacayote,
Alcayota, Cayote, Tintimoro.
Figura 7. Mapa de la distribución conocida para México de C. ficifolia, basado en los
registros consignados en las bases de datos de la CONABIO.
4. Información del Grupo Pepo
Variación morfológica, agrícola, nomenclatura tradicional y diversidad
genética. La variación morfológica y agrícola de Cucurbita pepo ssp. pepo abarca
cultivares comerciales, razas o variedades locales comestibles con características
morfológicas y/o fenológicas diversas, sino también varios cultivares que en la
actualidad son empleados con fines ornamentales como los llamados Orange Ball,
Miniature Ball y Striped Pear. La extraordinaria variación de esta subespecie ha
permitido reconocer 60 cultivares comestibles, entre los que se encuentran algunos
15
de hábito subarbustivo como los llamados Black Zucchini, Fordhook Bush y Boston
Greek, así como otros de hábito rastrero-trepador y cuyos frutos son empleados
principalmente en la madurez como los llamados Connecticut Field y Table Queen.
Con base en esta diversidad y en algunos casos tomando en cuenta los tipos de
usos culinarios a los que se destinan estos cultivares, diferentes botánicos han
propuesto esquemas de clasificación que han intentado reflejar su origen y posible
evolución, sin que ninguno de ellos haya sido del todo exitoso.
La variación que existe para esta especie en las comunidades campesinas
de al menos México a Centroamérica (principalmente Guatemala) es también muy
notable. Comprende variantes que son cultivadas en altitudes por arriba de los 2000
m (ya sea en condiciones de temporal o incluso en épocas de sequía en terrenos
que conservan la humedad), y otras que pueden crecer sin problemas en zonas
cercanas al nivel del mar y/o en condiciones ecológicas mucho más limitantes,
como las que son cultivadas en la Península de Yucatán o el Valle de TehuacánCuicatlán en los estados de Puebla y Oaxaca. Por otra parte, es común que en un
simple campo de cultivo tradicional los campesinos manejen una buena
representación de razas o variedades locales con rasgos morfológicos similares a
los que se han atribuido como específicos de algunos grupos de cultivares
comerciales.
La importancia de este cultivo para los diferentes grupos humanos de nuestro
país y su alta variación morfológica y agronómica, se refleja en la gran cantidad de
nombres comunes que se han podido documentar para las plantas de Cucurbita
pepo ssp. pepo en México, los cuales se enlistan a continuación.
Chihuahua: Imai, Vavuli, Aala, Iim. Guerrero: Tempranilla. Chiapas: Tsol,
Tsolito, Tsul. Oaxaca: Güiche, Güichi, Güicha, Jit-Jich, Letu-Chuua', CapChe', Calabaza De Carrizo, Shikin-Iñu. Jalisco, Michoacán, Guanajuato,
San Luis Potosí: Calabaza, Calabaza de India, Calabaza India; Puebla:
Calabaza de Castilla, Calabaza de Comer. Veracruz: Calabaza, Calabaza de
Manteca. Península de Yucatán: Tsol, Mensejo.
El conocimiento de la variación morfológica, agrícola y etnobotánica de este
grupo en general y para México, contrasta con el escaso entendimiento de su
variación genética. Así, aunque este aspecto ha sido estudiado en diferentes
momentos, la representación de su diversidad morfológica en esos estudios ha sido
relativamente baja y especialmente en el caso de la variación mexicana, lo cual
impide tener conclusiones definitivas. Los estudios que consideramos más
importantes en este rubro son analizados a continuación.
1. Kirpatrick et al. (1985). En este estudio, se analizó la segregación de seis
sistemas isoenzimáticos que dieron 12 alelos en total en una cruza entre
Cucurbita pepo ssp. texana (como C. texana) y materiales de la variedad
comercial “Black Zucchini” de la J.B. Rice Seed Co., correspondiente a una de
las variedades de C. pepo ssp. pepo (C. pepo ssp. pepo var. medullosa). Los
resultados sugieren que las distancias genéticas entre las poblaciones de cada
16
taxon son tan grandes que podrían indicar correspondencia a especies
diferentes. Sin embargo, estas distancias genéticas tan grandes lo interpretamos
actualmente como producto de la complejidad y diversidad de todo el grupo
Pepo. Otras conclusiones interesantes de ese trabajo es la propuesta de que C.
pepo ssp. texana tiene pocos alelos del acervo total del grupo y que los patrones
de segregación de varios confirman la propuesta de otros autores en cuanto al
origen alopoliploide del género Cucurbita.
2. Decker (1985). En este trabajo se usaron siete loci isoenzimáticos polimórficos
para analizar 50 accesiones de 15 cultivares del grupo, con énfasis en
materiales de los Estados Unidos y sólo cuatro accesiones de México (1 de
Puebla, 1 del Estado de México y dos de Michoacán), a las que se les ubicó
como Criollas Mexicanas. El análisis de UPGMA de los datos obtenidos (Figura
8), diferenció dos grupos con una distancia genética muy grande entre sí. El
primer grupo es el más variable y abarca 5 distintos cultivares principalmente
ornamentales de los Estados Unidos, mientras el segundo grupo incluye a las
plantas mexicanas de la subespecie pepo (Criollas Mexicanas), y nuevamente a
plantas de grupos de cultivares comerciales comestibles (Zucchinis, Pumpkin y
Vegetable Spaghetti). Según una medida de variación genética (Proporción de
Figura 8. Resultado del análisis de isoenzimas para 50 accesiones de 15 cultivares del
Grupo Pepo presentado por Decker (1985).
Loci polimórfico por grupo) los grupos con menor variación genética son el grupo
de ornamentales (Ovifera) y el de las Pumpkin, mientras que los grupos menos
variables serían el Fordhook (aunque solo estuvo representado por una
accesión) y el Vegetable Spaghetti. La poca variación de las plantas mexicanas
del grupo registrada en este estudio es muy probable que pueda atribuirse a lo
reducido de la muestra que fue considerada en el análisis.
17
3. Andres (1987). En este trabajo se analizaron 25 loci representantes de 10
enzimas y se compararon las isoenzimas de accesiones de Cucurbita pepo
ssp. fraterna, C. pepo ssp. texana y C. pepo ssp. pepo (referidas como C.
fraterna, C. texana y C. pepo), además de C. argyrosperma ssp. sororia
(referida como C. sororia), además de otras especies del género cuyos
nombres no son mencionados. Los resultados obtenidos revelaron que mayor
variación alélica en las dos muestras analizadas de C. pepo ssp. fraterna que
en las 20 colecciones estudiadas de C. pepo ssp. texana. Adicionalmente, se
encontró que las enzimas estudiadas en C. fraterna ssp. fraterna fueron
indistinguibles de las obtenidas en una de las muestras de C. pepo ssp. pepo
colectada en zonas cercanas, mientras que las plantas de C. aryrosperma ssp.
sororia, también procedentes de sitios aledaños, aunque comparten muchos
alelos encontrados en C. pepo ssp. fraterna, también contienen varios que no
se encuentran en C. pepo ssp. pepo. Vale la pena señalar que en este trabajo
se presenta por primera vez la propuesta de reconocer a C. pepo ssp. fraterna
como el ancestro silvestre de C. pepo ssp. pepo.
4. Wilson (1990). En este caso se usaron datos de 8 loci isoenzimáticos para
81poblaciones, incluyendo a C. pepo ssp. fraterna (como C. fraterna), C. pepo
ssp. texana (como C. pepo ssp. ovifera var. Texana) de Texas, y plantas
silvestre del Este de los Estados Unidos (en nuestro trabajo también reconocidas
como C. pepo ssp. texana), junto con variedades criollas de México (26
accesiones sin información precisa de procedencia) y algunas comerciales, tanto
ornamentales, como para consumo humano. El resultado del análisis se muestra
en la figura 9, en donde se pueden distinguir dos grupos principales: el grupo A,
conformado principalmente a las variedades criollas Mexicanas y algunas
comerciales de los Estados Unidos, y el grupo B, a su vez constituido por los
grupos C (sólo C. pepo ssp. texana de Texas) y D (poblaciones silvestres del
este de Estados Unidos, C. pepo ssp. fraterna y la mayoría de las variedades
comerciales de los Estados Unidos). El contingente con mayor variación
genética correspondió al grupo D, mientras que el grupo con menor variación fue
el C, en tanto que el grupo B (en donde están las plantas mexicanas) resultó ser
intermedio. Los bajos niveles de variación genética en las poblaciones silvestres
del este de los Estados Unidos, son interpretados como evidencia de que estas
poblaciones son más bien escapadas derivadas de antiguos linajes
domesticados, por lo que han sufrido cuellos de botella, o bien que forman un
complejo de especie domesticada- pariente silvestre (companion weed), con
amplio flujo génico entre ambas.
18
Figura 9. Resultado del análisis de isoenzimas para 81 accesiones de cultivares y plantas
silvestres del Grupo Pepo presentado por Wilson (1990).
5. Jobst et al. (1998). En este trabajo se usaron ITS para analizar la filogenia de
11 especies de Cucurbita pero se obtuvieron resultados muy modestos,
debido a que las especies incluidas son muy cercanas y comparten alelos.
6. Katzir et al. (2000). Estos autores usaron ISSR para analizar al complejo C.
pepo y encontraron una clara diferencia entre C. pepo ssp. pepo y ssp. ovifera,
así como también que ésta última se agrupó con C. fraterna, confirmando
hasta cierto punto algunos de los resultados obtenidos en estudios previos.
7. King et al. (2005). En este estudio los autores intentaron usar datos de
satélites en 9 especies del género, pero otra vez no pudieron definir los clados,
19
ya que se comparten alelos entre especies.
Distribución y difusión del cultivo. Las variedades de las plantas domesticadas
del grupo Pepo se cultivan en muchas partes de México (Figura 10) y algunos
países de América Central (Güicoy, Tsol y Mucum en Guatemala, Supuyo y
Calabazo en Panamá) y América del Sur (Escariote, Cariote y Zapallito para Bolivia,
Guineo, Angolín, Angola y Zapallo para Argentina, Abobra y Abobrinka para Brasil,
Limeño para Ecuador), así como también en otras partes del mundo. De hecho, son
probablemente las plantas domesticadas del género Cucurbita que más
tempranamente y con mayor amplitud se difundieron hacia fuera del continente.
Lo anterior lo sugieren las numerosas pinturas de sus frutos realizadas por
artistas europeos de los siglos XVI a XVII, así como también la temprana llegada a
Europa de algunos cultivares que son populares aun en la actualidad. Desde esas
épocas se sabe que numerosos cultivares de C. pepo son consumidos en varios
países de Europa, Asia, Oceanía y Africa y que en la actualidad, los frutos de
algunos de ellos (v.gr.los llamados Zucchini y Cocozzelle) representan un elemento
alimenticio-comercial común a diversas regiones del mundo entero. En contraste
con la antigua presencia de C. pepo en el Viejo Mundo, parece ser que su arribo a
América del Sur es mucho más reciente.
Figura 10. Mapa de la distribución conocida para México de las plantas del Grupo Pepo,
basado en los registros consignados en las bases de datos de la CONABIO.
20
5. Información sobre el Grupo Okeechobeensis y C. lundelliana
Como se señaló en el informe anterior, el grupo Okeechobeensis está
conformado por dos taxa anuales: La subespecie. Okeechobeensis (originalmente
descrita en 1930 como Pepo okeechobeensis por J. K. Small y transferida a
Cucurbita por L.H. Bailey también en 1930), es endémica de los pantanos con
Annona del suroeste del Lago Okeechobee, Florida, mientras la subespecie
martinezii (descrita por L. H. Bailey en 1943 como C. martinezii) la cual sólo crece
desde el sur de Tamaulipas, este de San Luis Potosí, Puebla y una buena parte de
Veracruz, hasta el norte de Oaxaca y Chiapas. Cucurbita lundelliana, por su parte,
se distribuye desde el sur de México (Tabasco y sur de Campeche, Yucatán y
Quintana Roo) hasta Centroamérica, cuando menos hasta Nicaragua.
Si bien es cierto que ninguno de estos taxa son ancestros de alguno de los
taxa domesticados del género, como ya también se mencionó en el informe
anterior, al menos la subespecie martinezii y C. lundelliana pudieran tener cierta
relevancia para el mejoramiento de los cultivos, principalmente por su resistencia a
virus que provocan enfermedades importantes en las plantas de los taxa
domesticados y por su capacidad de hibridizar con plantas domesticadas y
silvestres de varios taxa del género.
Las relaciones entre todos estos taxa y su variación genética fueron
estudiadas mediante el análisis de 40 alelos de 20 loci isoenzimáticos (12
polimórficos), para 8 accesiones de C. lundelliana, 11 de C. martinezii y 9 de C.
okeechobeensis, con entre 7 y 20 individuos por accesión.
La menor variación genética se registró para C. okeechobeensis, con un
polimorfismo de sólo el 5%, mientras que C. martinezii resultó intermedia, con un
polimorfismo del 15%, en tanto que la que tuvo mayor variación fue C. lundelliana,
con 45%. Con estos datos elaboraron un diagrama de UPGMA (Figura 11), en
donde se muestra de manera muy clara que C. okeechobeensis y C. martinezii
están más relacionadas entre sí que con C. lundelliana. Adicionalmente, usando la
transformación de Sarich de la distancia de Nei a tiempo desde la divergencia,
calcularon que C. lundelliana divergió hace entre 1.72 y 2.49 millones de años,
mientras que C. okeechobeensis y C. martinezii se separaron hace unos 0.45
millones de años.
Con estos datos y un cuidadoso análisis morfológico para 46 caracteres y
se concluyó que, mientras C. lundelliana es una especie bien diferenciada, C.
okeechobeensis y C.martinezii pertenecen a la misma especie, con lo cual las
reducen a nivel de subespecies como C. okeechobeensis ssp. okeechobeensis y
C. okeechobeensis ssp. martinezii.
21
Figura 11. Resultado del análisis de los taxa del grupo Okeechobeensis y C. lundeliana
realizado por Walter & Decker-Walters (1993).
6. Conclusiones
1. Lo consignado en los estudios sobre la filogenia de Cucurbita, aunque
sorprendentemente escasos, indican que en la Republica Mexicana crecen,
tanto la mayoría de las plantas domesticadas y sus parientes silvestres (las
excepciones son el grupo Maxima y C. ecuadorensis), como los taxa
basales y derivados que aparecen en las filogenias, lo cual corrobora que
México es el centro de origen y diversidad del género.
22
2. No obstante lo anterior, en todos los estudios filogenéticos publicados
siempre faltan varias especies silvestres nativas de México. De acuerdo a
esto, consideramos importante analizar la filogenia de todas las especies
del género, usando tanto marcadores mitocondriales, como marcadores de
cloroplasto y nucleares, así como también usando mejores grupos externos
y colectas de la mayor cantidad posibles de especies y poblaciones
silvestres y de las principales variedades cultivadas de México. Los
resultados de estos análisis, seguramente permitirán obtener los relojes
moleculares y con ellos reanalizar los lugares, tiempos y ancestros
involucrados en la domesticación y filogeografía de todas las especies y
variedades del género.
3. Los estudios de variación genética hasta ahora realizados, por su parte, son
realmente insuficientes, tanto por la escasa diversidad de métodos, como
por la poca amplitud de las muestras. Es necesario realizar análisis con
otros marcadores moleculares y para un mayor número de muestras y
también sería ideal, por ejemplo, que los mapas de la distribución conocida
de todos estos taxa que aquí se presentaron, incluyeran valores de
variación genética a nivel regional o incluso para cada uno de los registros
que los sustentan.
7. Bibliografía Consultada
Andres, T. C. 1987a. Cucurbita fraterna, the closest wild relative and progenitor of C.
pepo. Cucurbit Genet. Coop. Rep. 10: 69-71.
Andres, T. C. 1990. Biosystematics, Theories on the Origin, and Breeding Potencial
of Cucurbita ficifolia. In: D. M. Bates, R.W. Robinson, & C. Jeffrey (Eds.),
Biology and Utilization of the Cucurbitaceae (pp. 102-119). Cornell Univ.
Press, Ithaca, NY.
Azurdia, C. A. & M. González. 1986. Informe Final del Proyecto de Recolección de
Algunos Cultivos Nativos de Guatemala. Facultad de Agronomía, Universidad
de San Carlos, Guatemala.
Bailey, L. H. 1929. The domesticated cucurbitas. First paper. Gent. Herb. 2: 61-115.
Castetter, E. F. 1925. Horticultural groups of cucurbits. Proc. Amer. Soc. Hort. Sci.
22: 338-340.
Castillo, R. et al. 1989. Catálogo de datos pasaporte de colecciones de
germoplasma de varios cultivos. INIAP. Quito, Ecuador.
Chakravarty, H. L. 1990. Cucurbits of India and Their Role in the Development of
Vegetable Crops. In: D. M. Bates, R.W. Robinson, & C. Jeffrey (Eds.),
Biology and Utilization of the Cucurbitaceae (pp. 325 334). Cornell Univ.
Press, Ithaca, NY.
Decker, D. S. 1985. Numerical analysis of allozyme variation in Cucurbita pepo.
Econ. Bot. 39: 300-309.
Decker, D. S. & H.D. Wilson. 1987. Allozyme variation in the Cucurbita pepo
23
complex: C.pepo var. ovifera vs. C.texana. Syst. Bot. 12: 263-273.
Decker Walters, D. S. & T.W. Walters. 1988. 1987 germplasm collections of
cultivated cucurbits from China and Hong Kong. Cucurbit Genet. Coop. Rep.
11: 93-94.
Erwin, A. T. & E.P. Lana. 1956. The Seminole pumpkin. Econ. Bot. 10: 33 37.
Ferriol, M., B. Pico, P. Fernández de Córdova & F, Nuñez. 2004. Molecular
Diversity of a Germplasm Collection of Squash (Cucurbita moschata)
Determined by SRAP and AFLP Markers. Crop Sci. 44: 653–664.
Garzon-Tiznado, J. A. 1989. Formación de variedades de calabacita tipo zucchini
(Cucurbita spp.) resistentes a los virus mosaico del pepino y de la sandía.
In: Informe de Investigación. Proyecto: Estudio y Contro de las
Enfermedades Virales en el Cultivo de la Calabacita (pp. 1 5). INIFAP
SARH, México.
Gerardo Gallegos, J. J. 1990. Avance generacional de genotipos de calabacita con
resistencia a virus mosaico del pepino y de sandía 1 y 2. In: Informe de
Investigación ciclo 1989 1990. Proyecto: Estudio y Control de las
Enfermedades Virales en el Cultivo de la Calabacita (pp. 1 32). INIFAP
SARH, México.
Jobst, J., K. King & V. Hemleben. 1998. Molecular Evolution of the Internal
Transcribed Spacers (ITS1 and ITS2) and Phylogenetic Relationships
among Species of the Family Cucurbitaceae. Mol. Phylog. Evol. 9: 204-219.
Katzir, N., Y. Tadmor, G. Tzuri, E. Leshzeshen, N. Mozes-Daube, Y. Danin-Poleg
& H.S. Paris. 2000. Further ISSR and preliminary SSR analysis of
relationships among accessions of Cucurbita pepo. Acta Hort. 510: 433-440.
King, K., J. Jobst & V. Hemleben. 1995. Differential homogenization and
amplification of two satellite DNAs in the genus Cucurbita (Cucurbitaceae).
J. Mol. Evol. 41: 996-1005.
Kirkpatrick, K. J., D. S. Decker & H. D. Wilson. 1985. Allozyme differentiation in the
Cucurbita pepo complex: C. pepo var. medullosa vs. C. texana. Econ. Bot.
39: 289-299.
Kirkpatrick K. J. & H. D. Wilson. 1988. Interspecific Gene Flow in Cucurbita: C.
texana vs. C. pepo. American Journal of Botany, 75: 519-527.
Lira, R. 1995. Estudios Taxonómicos y Ecogeográficos de las Cucurbitaceae
Latinoamericanas de Importancia Económica: Cucurbita, Sechium, Sicana y
Cyclanthera. Systematic and Ecogeographic Studies on Crop Gene Pools. 9.
International Plant Genetic Resources Institute. Rome, Italy. 281p.
Lira, R. 2004. Cucurbitaceae de la Península de Yucatán: Taxonomía, Florística y
Etnobotánica. Etnoflora Yucatanense 22. Universidad Autónoma de
Yucatán / CONACyT. Mérida, Yucatán, México. 312 pp.
Merrick, L. C. 1988. Wild and cultivated cucurbits from the Sierra Madre Occidental
of Northwest Mexico and the Rio Balsas Valley of Southwest Mexico.
International Board for Plant Genetic Resources.
Merrick, L. C. 1990. Systematics and evolution of a domesticated squash,
Cucurbita argyosperma, and its wild and weedy relatives. In: D. M. Bates,
R.W. Robinson, and C. Jeffrey (Eds.), Biology and Utilization of the
Cucurbitaceae (pp. 77-95). Cornell Univ. Press, Ithaca, NY, USA.
Merrick, L. C. 1991. Systematics, evolution, and ethnobotany of a domesticated
24
squash, its wild relatives and allied species in the genus Cucurbita. PhD.
Thesis Cornell University, Ithaca, NY, USA, 315 p.
Montes-Hernández, S. & L. E. Eguiarte. 2002. Genetic structure and indirect
estimates of gene flow in three taxa of Cucurbita in western Mexico. Amer.
J. Bot. 89: 1156-1163.
Nuez, F., M. J. Diez, J. Costa & J. Cuartero. 1988. Germplasm resources of
Cucurbita from Spain. Cucurbit Genet. Coop. Rep. 11: 86.
Paris, H. S. 1986. Origin for the edible bicolor fruited cultivars of Cucurbita pepo.
Phytologia 60: 447-452.
Paris, H. S. 1989. Historical records, origins, and development of the edible cultivar
groups of Cucurbita pepo (Cucurbitaceae). Econ. Bot. 43: 423-443.
Robinson, R. W. 1988a. Vine crops advisory commitee report for exotic cucurbit
species Horticultural Sciences Department. New York State Agricultural
Experiment Station, Geneva, NY. 11 pp.
Robinson, R. W. 1988b. Vine crops CAC report for squash and pumpkin
Horticultural Sciences Department. New York State Agricultural Experiment
Station, Geneva, NY. 21 pp.
Robinson, R. W. 1989. Genetic resources of the Cucurbitaceae. In: C. E. Thomas
(Ed.), Proceedings of Cucurbitaceae 89: Evaluation and Enhancement of
Cucurbit Germplasm, (pp. 85a-85j). Charleston, SC: USDA Agricultural
Research Service, U.S. Vegetable Laboratory.
Sanjur, O. I., D. R. Piperno, T. C. Andres, and L. Wessel-Beaver. 2002.
Phylogenetic relationships among domesticated and wild species of
Cucurbita (Cucurbitaceae) inferred from a mitochondrial gene: Implications
for crop plant evolution and areas of origin. Proc. Nat. Acad. Sci. 99: 535540.
Tapley, W.T., W.D. Enzie & G.P. van Eseltine 1937. The Vegetables of New York.
Part IV. N.Y. Agric. Exp. Sta., Geneva, NY. 131 p.
Walters, T. 1989. Historical overview on domesticated plants in China with special
emphasis on the Cucurbitaceae. Econ. Bot. 43: 279-313.
Walters,T. W. & D. Decker Walters. 1993. Systematics of the endangered
Okeechobee gourd (Cucurbita okeechobeensis: Cucurbitaceae). Syst. Bot.
18: 175-187.
Whitaker, T. W. 1947. American origin of the cultivated cucurbits. Ann. Missouri Bot.
Gard. 34: 102-111.
Wilson, H. D. 1989. Discordant patterns of allozyme and morphological variation in
mexican Cucurbita. Syst. Bot. 14: 612-623.
Wilson, H. D. 1990. Gene flow in squash species. Domesticated Cucurbita species
may not represent closed genetic systems. BioScience 40: 449-455.
Wilson, H. D., J. Doebley & M. Duvall. 1992. Chloroplast DNA diversity among wild
and cultivated members of Cucurbita (Cucurbitaceae). Theor. Appl. Genet.
84: 859-865.
Yang, S. L. & T. Walters. 1992. Ethnobotany and the economic role of the
Cucurbitaceae of China. Econ. Bot. 46: 349-367.
Zeven, A. C. & W.A. Brandenburg. 1986. Use of paintings from the 16th to 19th
centuries to study the history of domesticated plants. Econ. Bot. 40: 397408.
25
Sechium P.Br.
26
1. Resumen de las Conclusiones del Primer Informe y Otras
Fuentes de Evidencia que las Corroboran
La revisión presentada en el informe anterior presentó bases sólidas para
proponer a México como centro de origen del género Sechium , pues dentro de
sus límites geográficos prosperan todos los taxa que lo conforman, incluyendo por
supuesto al ancestro silvestre (S. edule ssp. sylvestre) de su única especie
domesticada, el chayote (S. edule ssp. edule). Las evidencias moleculares que
confirman esta conclusión, corresponden a estudios realizados con diferentes
marcadores, cuyos resultados se muestran en la figura 1 y en donde puede
observarse la parafilia de Sechium sensu Newstrom, Jeffrey, Lira y otros autores,
pues por ejemplo una de las especies silvestres, Sechium mexicanum, aparece
dentro del género Sicyos, a donde posiblemente se deberá de reasignar. También,
se observa un grupo formado por los chayotes cultivados (S. edule spp. edule) que
está muy cercano a la subespecie sylvestre y a S. chinantlensis, así como también
relativamente cercano a S. compositum y S. hintonii. Este arreglo es el soporte de
lo que en el primer informe se presentó como la nueva delimitación de Sechium.
Figura 1. Filogenia de Sechium y el resto de la subtribu Sicyinae obtenida por
Cross (2003) y Cross et al. (2006).
27
En esos trabajos también se realizaron análisis de reloj molecular, usando
el programa Penalized Likelihood r8s y datos del ITS y ETS y para calibrar el reloj
a un fósil del Mioceno (entre 15 y 5 millones de años) de Sicyos. Como resultado
se obtuvo un origen para la divergencia entre las dos subespecies de S. edule y S.
chinatlense de entre 0.2 a 0.4 millones de años (fecha curiosamente similar a la de
la divergencia de las dos subespecies de Cucurbita okeechobeensis que se
mencionó en la primera parte de este informe), y de entre 0.46 a 1.18 millones de
años para la divergencia del Tacaco y los otros taxa silvestres de Costa Rica que
en algún momento fueran clasificados en Sechium (Figura 2). Considerando lo
anterior, se puede sugerir que el linaje del chayote de México surgió a mediados
del Pleistoceno, hace 200-500 mil años, durante los cambios climáticos de las
glaciaciones. En esas épocas se expandieron los bosques de pino-encino a
altitudes más bajas en los periodos fríos y luego, al disminuir estas áreas, se
generaron procesos de diferenciación que han producido la diversidad entre
variedades y poblaciones del chayote en México y Centroamérica.
Figura 2. Resultado del análisis de reloj molecular de Sechium obtenido por Cross
(2003) y Cross et al. (2006).
28
2. Infromación sobre el Chayote Domesticado y Silvestre
Variación morfológica, nomenclatura tradicional y diversidad genética. La más
obvia manifestación de la variación del chayote domesticado (Sechium edule ssp.
edule) se observa en las características morfológicas de sus frutos. Esta variación
ha tratado de ser catalogada por diferentes autores, mediante simples y en
ocasiones incompletas descripciones, hasta de una forma más sistemática y
teniendo como fuente de información colecciones de germoplasma (Cuadro 1).
Las características consignadas en el cuadro 1 permiten observar que las
muestras analizadas documentan una amplia variación en los rasgos externos de
los frutos como las dimensiones, la presencia o ausencia de espinosidad y/o de
lenticelas en su superficie, la coloración e incluso, en algunos casos, caracteres
internos como la consistencia, fibrosidad y sabor de la pulpa, así como otros
referentes a la fenología y productividad de las plantas.
Características / Región
Costa Rica
Guatemala
Honduras/Panamá
México
Largo (cms)
4.8-26.5
4.7-19.3
4.4-11.0
4.9-16.4
4.6-11.6
4.3-8.7
7.1-15.9
6.6-10.9
6.6-9.9
3.0-25.0
2.7-12.6
2.7-10.2
58-1207
Sin información
Blanco, verde claro, verde
obscuro
Piriforme, sub-piriforme,
ovoide, comprimido,
esférico
Ausentes, pocas,
intermedias, muchas
Sin información
48-540
Sin información
Blanco, verde claro, verde
obscuro
Piriforme, sub-piriforme,
ovoide, comprimido,
esférico
Ausentes, pocas,
intermedias, muchas
Sin información
299-398
Sin información
Verde claro, verde obscuro
Consistencia de Pulpa
Sabor de Pulpa
Ausentes, angostos,
intermedios, profundos
Ausentes, pocas,
intermedias, muchas
Sin información
Sin información
Ausentes, angostos,
intermedios
Ausentes, pocas,
intermedias
Sin información
Sin información
Angostos, intermedios,
profundos
Pocas, intermedias,
muchas
Sin información
Sin información
Fibras en Pulpa
Días a Cosecha
Frutos por Planta
Sin información
Sin información
Sin información
Sin información
Sin información
Sin información
Sin información
Sin información
Sin información
61-1211
47-1227
Blanco, amarillo, verde
claro, verde obscuro
Elíptico, piriforme, subpiriforme, ovoide,
obovoide
Ausentes, pocas,
intermedias, muchas
Ausentes, pocas,
intermedias, muchas
Angostos, intermedios,
profundos
Ausentes, pocas,
intermedias, muchas
Suave, sólida
Simple, dulce, insípido,
sabroso, salado
Ausentes, pocas, muchas
102-331
49-521
Ancho (cms)
Grosor (cms)
Peso (grs)
Volumen (cm3)
Color
Forma
Espinas
Costillas / Crestas
Surcos
Lenticelas
Piriforme, sub-piriforme,
ovoide, esférico
Pocas, intermedias,
muchas
Sin información
Cuadro 1. Síntesis de la variación encontrada para las características más importantes de
frutos y plantas de chayote domesticado (Sechium edule ssp. edule) de México y
Centroamérica. Datos tomados de Cruz-León & Querol (1985), Engels (1983), Maffioli
(1983), Newstrom (1985, 1986) y Cadena-Iñiguez et al. (2008). Para algunas
características se destaca en color rojo el dato más comúnmente registrado.
La variación existente en las plantas de la subespecie sylvestre es mucho
menor, pues sólo en algunas poblaciones se han detectado frutos inermes y está
ausente el color amarillo que se ha documentado para los chayotes domesticados
(Cuadro 2).
29
Cuadro 2. Comparación de las características morfológicas de las inflorescencias
estaminadas y/o frutos de las poblaciones de Sechium edule ssp. sylvestre, de los
estados de Oaxaca, Querétaro y Veracruz. Todas las medidas están en centímetros.
Tomada de Lira et al. (1999).
La extraordinaria variación morfológica del chayote domesticado y su
importancia como alimento en prácticamente todo el país, se refleja en la riqueza
de nombres comunes que se han documentado en distintas regiones para este
cultivo, lo cual se presenta a continuación.
Michoacán. Apupo (U), Apopu. Oaxaca. Niktin, Naña, Itú-Tse, Jit-Jiap,
Yape, Aj-Shá, Rign, Nñ, Mishi, Cal-Mishi. San Luis Potosí. Tzihu, Tzihub.
Estado de México. Mú-U. Estado de México e Hidalgo. Shamú, Xamú.
Puebla y Morelos. Chayoj, Chayojtli. Sierra Norte de Puebla. Macltucún O
Multucún, Huisquilitl, Espinoso. Veracruz. Mulctucut, Ecshná, Erizo, Jerizo.
Península de Yucatán. Chayote, Kiix Pach K'uum (actualmente no usado).
Chiapas. Chumté, Nap, Niuc, Tzoyol, Chay, Huisquil, Güisquil, Uisquil.
La variación genética del chayote domesticado y silvestre también fue
estudiada recientemente, mediante el uso de AFLPs (453 marcadores, bandas o
loci). La muestra analizada consistió de 127 chayotes cultivados de México
(Veracruz, Oaxaca y Jalisco) y Costa Rica (Heredia y Cartago), así como
individuos de S. edule spp. Sylvestre (Oaxaca y Veracruz), S. chinantlense
(Oaxaca) y S. compositum (Chiapas). Un análisis de Neighbor-Joining (Figura 3) y
otro de componentes principales (Figura 4), mostraron que S. chinatlense es un
poco más cercano al chayote domesticado que S. compositum y que las formas
silvestres de Veracruz (ssp. sylvestre) parecen estar más relacionadas con los
chayotes cultivados que las formas de esa misma subespecie que crecen en
Oaxaca. Así mismo, se encontró gran variación genética en los chayotes
30
domesticados de México y Costa Rica.
Para las colectas de México, los valores más altos se registraron para
Oaxaca y Veracruz. Las de Costa Rica presentaron alta diversidad, posiblemente
como resultado de su antigua introducción y del intercambio genético con
materiales mexicanos que se ha venido dando a través de los años. En la figura 3,
estas colectas se observan formando dos clados monofiléticos independientes:
Uno pequeño que se encuentre dentro de los clados de México (Grupo B) y otro
más diferenciado y con mayor variación (Grupo A). En el cuadro 3 se muestran los
valores de diversidad genética registrada para los taxa silvestres y domesticados
de Sechium que crecen en México.
Cuadro 3. Valores de diversidad de los Indices de Shannon (I) y Nei’s (h) y porcentaje de
loci polimírficos (% PL), obtenidos por Cross (2003) y Cross et al. (2006), para de los taxa
silvestres y domesticados de Sechium.
31
Figura 3. Análisis de Neighbor-Joining realizado por Cross (2003 y Cross et al. (2006) a
partir deatos de Cross (2003) de marcadores AFLPs de una colección de 127 chayotes
cultivados de México y Costa Rica y parientes silvestres cercanamente emparentados.
Las bandas dobles indican la separación entre especies y las sencillas entre subesepcies.
Las letras A y B corresponden a los dos linajes de S. edule spp. edule de Costa Rica.
32
Figura 4. Análisis de componentes principales realizado por Cross (2003) y Cross et al.
(2006), para los datos de AFLPs descritos en la figura 4. El primer y segundo
componentes explican el 14.93% y 10.61% respectivamente.
En otro estudio también muy reciente, se usaron isoenzimas para analizar
42 accesiones del chayote de Costa Rica, de 17 localidades, principalmente de los
valles intermontanos y con 8 loci polimórficos y cinco monomórficos. Cada loci
sólo tuvo dos alelos, lo que sugiere poca variación genética y cuellos de botella.
En siete casos, dos accesiones tuvieron exactamente el mismo genotipo
multilocus, aun cuando algunas eran provenientes de diferentes localidades, lo
cual es una clara consecuencia de la propagación clonal. Muchos de los loci
resultaron homócigos en las accesiones, tal vez como resultado de
autofertilización, ya que son plantas autocompatibles, y porque en las poblaciones
las clonas de un solo genotipo o de genotipos similares pueden ser muy grandes
33
favoreciendo también la autofertilización.
Las relaciones entre las accesiones se muestran en un UPGMA obtenido
con la distancia de Dice (Figura 5), en donde se distinguen dos grupos claramente
diferenciados que pudieran corresponder a los dos grupos encontrados en Costa
Rica con los AFLPs en los estudios previamente descritos. Uno de los grupos es
más pequeño (Grupo B) y posiblemente esté relacionado con los chayotes de
México, y el otro es más amplio y podría corresponder a los chayotes nativos de
Costa Rica (Grupo A), que a su vez se puede diferenciar en tres subgrupos.
Figura 5. Análisis de UPGMA obtenido por Abdelnour y Rocha (2008), con datos
isoenzimáticos de 8 loci polimórficos de 42 accesiones del chayote procedentes de
17 localidades, principalmente de los valles intermontanos de Costa Rica.
Difusión del Cultivo. El chayote domesticado está ampliamente difundido en
América, en donde fue una planta cultivada por los aztecas desde mucho tiempo
antes de la llegada de los españoles. En cuanto a Centroamérica, se dice que fue
introducido a Costa Rica por los españoles, y que su distribución en la porción
norte de la región se debe a la influencia de las culturas Azteca y Maya. La
introducción del chayote hacia América del Sur, se sabe que se llevó a cabo entre
los siglos XVIII y XIX, mientras que su llegada a Las Antillas es posiblemente
anterior, pues a mediados del siglo XVIII se hace la primera mención formal en la
literatura del chayote, cuando se hace mención de su cultivo en Jamaica. En estas
mismas épocas, se sabe que el chayote se introdujo en Europa, de donde fue
llevado hacia Africa, Asia y Australia, mientras que su introducción en los Estados
34
Unidos data de finales del siglo XIX. En la actualidad, se sabe que el chayote es
cultivado en algunos estados del sur de Estados Unidos como California,
Louisiana y el sur de Florida, mientras que en el Viejo Mundo se sabe de su cultivo
cuando menos en la India Nueva Guinea, el sureste de Asia y Taiwan y algunos
países europeos como Italia y la antigua Yugoslavia (Dubravec, 1986). No
obstante, es probable que su cultivo no esté completamente establecido en todas
estas regiones, pues actualmente los Estados Unidos y algunos países de Europa
y Asia están importando chayote de América Latina.
Los numerosos nombres empleados para denominar al chayote que se han
podido documentar en los sitios del mundo en donde se le cultiva son los
siguientes.
Estados Unidos. Mirliton, Christophine. Centroamerica. Chayote, Güisquil,
Bisquil, Huisquil, Chuma, Chima, Chimaa, Huisayote, Güisayote, Perulero
(Guatemala, El Salvador; el primero también en Belice); Rasi Cimá
(Guatemala, Alta Verapaz); Ñame, Huisquil, Patasté, Patastilla (Honduras);
Chaya (Nicaragua); Chayote (Nicaragua, Panamá, Costa Rica y en General
en toda la región); Pís, Pog-Pog-Iku, Seuak, Surú, Tsua-Uá (Costa Rica;
Cabécar, Guatuso, Bri Bri, Térraba Y Brunka). Antillas. Chayote, Tayote,
Tayón, Chocho, Chiote (Cuba, Puerto Rico, Republica Dominicana,
Jamaica); Christophine, Mirliton (Haití, el primero también en Guadalupe,
Bermuda y Trinidad Y Tobago). America del Sur. Chayote (en general en
toda la región); Papa Del Aire (Argentina); Zapallo, Zapallo Japones
(Bolivia); Chocho, Chuchu, Xuxu, Machiche, Machuchu (Brasil); Cidra,
Cidrayota, Guatila, Chayota, Papa De Pobre (Colombia); Siciliano, Gayota
(Perú); Chayoto (Venezuela); Christophine (Guayana Francesa); Papa del
Aire, Cayota (Argentina). Viejo Mundo. Chocho (España); Chowchow
(Inglaterra); Chahiota, Cahiota, Caiota, Pepinella, Pipinella (Portugal); Zucca
(Italia, Roma); Zucca Centenaria (Italia, Sicilia); Chouchou, Chouchoute
(Madagascar, Reunion, Mauricio); Vilaiti Vanga (India); Leong-Siam
(Indonesia); Chocho, Choko (Australia); Labooh Selyem (Malasia); Labooh
Tjena (Java).
3. Conclusiones
1. La información analizada confirman la circunscripción del género Sechium
para incluir cinco taxa de cuatro especies (S. edule ssp. edule, S. edule ssp.
sylvestre, S. compositum, S. chinantlense y S. hintonii).
2. Esos estudios también corroboran que México es el centro de origen del
chayote domesticado, no sólo por la presencia de sus parientes silvestres,
sino también por la importante variación morfológica y genética que aquí se
ha documentado.
3. La alta variación genética registrada para Costa Rica, sugiere que ese país
es un importante centro de diversidad de este cultivo. Sin embargo, aún
35
cuando existe mucha variación entre las poblaciones de Chayote de Costa
Rica, aparentemente comienza a presentarse la misma clona en diferentes
localidades que, de ser comercialmente favorecida, pudiera llegar a
provocar que se pierda masivamente la variación genética, tal como ha
sucedido en otros cultivos de propagación clonal como el tequila y el
henequén.
4. La relativamente alta variación genética entre las diferentes poblaciones del
chayote domesticado, especialmente de México, sugiere que, aunque cada
una de las poblaciones cultivadas pudiera ser totalmente clonal, aún se
mantiene mucha variación en los sitios Mexicanos en donde se cultiva
tradicionalmente (huertos, plantaciones, etc.), lo cual amerita atención para
fines de conservación, especialmente porque en la actualidad no existen
colecciones ni bancos de germoplasma para este cultivo en nuestro país.
5. No obstante la existencia de estudios recientes que han utilizado
herramientas moleculares para analizar diferentes aspectos del género
Sechium, al igual que se señaló para las cuatro especies domesticadas de
Cucurbita que se cultivan en México, aun es necesario analizar una
muestra más amplia de los chayotes domesticados, pues los estudios que
aquí se discutieron no incluyeron plantas de regiones en donde pudiera
haber alta diversidad, como por ejemplo los estados de Puebla y Chiapas y
muchas zonas de varios países de Centroamérica, especialmente
Guatemala e incluso otras partes del mundo. Estos estudios, además,
debieran incluso ampliar la muestra de los taxa silvestres, pues en los que
aquí se analizaron no se consideraron materiales de Sechium hintonii, ni de
las poblaciones de S. edule ssp. sylvestre de Puebla (no incluida en el
cuadro 1) y Querétaro.
4. Bibliografía Consultada
Abdelnour A. & O. J. Rocha. 2008. Genetic characterization of a collection of
chayote, Sechium edule (Jacq.) Swartz, in Costa Rica by using isozyme
markers. Genet. Resour. Crop Evol. 55:163-170.
Bradbury, J. H., B. Hammer, T. Nguyen, J. Tamate, M. Anders, and J. S. Millar.
1985. Analyses of vegetables from the highlands of Papua New Guinea.
Papua New Guinea Medic. J. 28: 127-130.
Chou, T.G., S.J. Yang, & P.Y. Huang. 1976. Mycoplasma like bodies observed in
the plants of bottle gourd chayote and balsam pear with witches broom in
Taiwan. Plant Dis. Rep. 60: 378-380.
Browne, P. 1756. Civil and Natural History of Jamaica. London, England.
Bukasov, S. M. 1981. Las Plantas Cultivadas de Mexico, Guatemala y Colombia.
CATIE GTZ, Turrialba, Costa Rica.1a Edición en Español (J. León
Traductor). 173 p.
Cadena-Iñiguez, J., C.H. Avendaño-Arrazate, M. Soto-Hernández, L. M. RuizPosadas, J. F. Aguirre-Medina & L. Arévalo-Galarza 2008. Infraspecific
variation of Sechium edule (Jacq.) Sw.,in the state of Veracruz, México.
36
Genet. Res. Crop Evol. 55: 835-847
Cook, O. F. 1901. The Chayote: A Tropical Vegetable. USDA Div. Bot. Bull. 18: 131.
Cross, H. 2003. Evolution, systematics and domestication in Sechium and related
genera (Sicyeae, Cucurbitaceae). Ph. D. Dissertation. Columbia University,
New York.
Cross, H. B., R. Lira-Saade & T. J. Motley. 2006. Origins and diversifcation of
Chayote. In: T. J. Motley, N. J. C. Zerega & H. B. Cross (Eds.).Darwin's
Harvest: New Approaches to the Origins, Evolution, and Conservation of
Crops (pp. 171-194). Columbia University Press, New York.
Cruz León, A. 1985 86. ¿Chayote o cruzas intergenéricas?. Hallazgo y
características. Rev. Geogr. Agr. 9-10: 100-106.
Cruz León, A. & D. Querol. 1985. Catálogo de Recursos Genéticos de Chayote
(Sechium edule Sw.) en el Centro Regional Universitario Oriente de la
Universidad Autónoma de Chapingo. Universidad Autónoma de Chapingo,
Chapingo.
Chakravarty, H. L. 1990. Cucurbits of India and Their Role in the Development of
Vegetable Crops. In: D. M. Bates, R.W. Robinson, and C. Jeffrey (Eds.),
Biology and Utilization of the Cucurbitaceae (pp. 325-334). Cornell Univ.
Press, Ithaca, NY, USA.
Dubravec, K. 1986. Sechium edule Cucurbitaceae. A new adventive species in the
flora of Yugoslavia. Poljoprivredna Znanstvena Smotra 72: 53-56.
Engels, J. M. 1983. Variation in Sechium edule Sw. in Central America. J.Amer.
Soc. Hort. Sci. 108: 706-710.
Engels, J.M. & C. Jeffrey. 1993. Sechium edule (Jacq.) Swartz. In: J.S.
Siemonsma & K. Piluek (Eds.). Plant Resources of South-East Asia. No. 8.
Vegetables. (pp. 246-248). Pudoc Scientific Publishers, Wageningen.
Eguiarte L.E. & V. Souza. 2007. Historia natural del Agave y sus parientes:
Evolución y Ecología. En P. Colunga-García Marín, A. LarquéSaavedra, L.
E. Eguiarte, y D Zizumbo-Villareal (eds.) 2007. En lo ancestral hay futuro:
del tequila, los mezcales y otros agaves. (pp. 3-21). CICY, Mérida, Yucatán,
México.
Flores, E. 1989. El chayote, Sechium edule Swartz (Cucurbitaceae). Rev. Biol.
Trop. 37 (Suplemento 1): 1-54.
Herrera, A. 1870. Estudio sobre el chayote. La Naturaleza 1: 234-238.
Jacquin, N. 1788. Selectarum Stirpium Americanarum Historia. Leiden.
Jeffrey, C. 1978. Further notes on Cucurbitaceae. IV. Some New World taxa. Kew
Bull. 33: 347-380.
Jeffrey, C. 1990. Appendix: An outline classification of the Cucurbitaceae. In: D. M.
Bates, R.W. Robinson, & C. Jeffrey (Eds.). Biology and Utilization of the
Cucurbitaceae (pp. 449-463). Cornell University Press, Ithaca, NY.
Kabitarani, A. & T. Bhagirath. 1991. Powdery mildew of cucurbits in Manipur.
Indian Phytopathol. 44: 137-139.
Lira, R. 1992. Chayote (Sechium edule). In: E. Hernández Bermejo & J. León
(Eds.). Cultivos Marginados. Otra Perspectiva de 1492 (pp.77-82). FAO
Plant Production and Protection Series No. 26 en colaboración con el Jardín
Botánico de Córdoba. Roma, Italia.
37
Lira, R. 1995. Estudios taxonómicos en el Género Sechium P. Br. (Cucurbitaceae).
Tesis Doctorado en Ciencias. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional
Autónoma de México. 267 p.
Lira, R. 1996. Chayote, Sechium edule (Jacq.) Swartz (Cucurbitaceae). Promoting
The Conservation and Use of Underutilized and Neglected Crops. 8.
International Plant Genetic Resources Institute. Rome, Italy. 58 p.
Lira, R. 2004. Cucurbitaceae de la Península de Yucatán: Taxonomía, Florística y
Etnobotánica. Etnoflora Yucatanense 22. Universidad Autónoma de
Yucatán / CONACyT. Mérida, Yucatán, México. 312 pp.
Lira, R. & J.C. Soto. 1991. Sechium hintonii (P.G. Wilson) C. Jeffrey
(Cucurbitaceae). Rediscovery and observations. FAO/IBPGR Plant Genet.
Res. Newsletter 87: 5-10.
Lira, R. & F. Chiang. 1992. Two new combinations in Sechium (Cucurbitaceae)
from Central America and a new species from Oaxaca, Mexico. Novon 2:
227-231.
Lira, R. & M. Nee. 1999. A new species of Sechium sect. Frantzia (Cucurbitaceae,
Sicyeae, Sicyinae) from México. Brittonia 51: 204-209.
Lira, R., J. Castrejón, S. Zamudio & C. Rojas-Zenteno. 1999. Propuesta de
ubicación taxonómica para los chayotes silvestres (Sechium edule,
Cucurbitaceae) de México. Acta Botánica Mexicana 49: 47-61.
Maffioli, A. 1981. Recursos Genéticos de Chayote, Sechium edule (Jacq.) Swartz.
(Cucurbitaceae). CATIE/GTZ, Turrialba, Costa Rica. 151 p.
Newstrom, L. E. 1986. Studies in the Origin and Evolution of Chayote, Sechium
edule (Jacq.) Sw. (Cucurbitaceae). Tesis Ph.D. University of California,
Berkeley. 149 p.
Newstrom, L. E. 1989. Reproductive Biology and Evolution of the Cultivated
chayote, Sechium edule (Cucurbitaceae). In: J. H. Bock & Y.B. Linhart
(Eds.). The Evolutionary Ecology of Plants (pp. 491-509). Westview Press,
Boulder, Colorado.
Newstrom, L. E. 1990. Origin and Evolution of Chayote, Sechium edule. In: D. M.
Bates, R.W. Robinson, & C. Jeffrey (Eds.). Biology and Utilization of the
Cucurbitaceae (pp. 141-149). Cornell University Press, Ithaca, NY.
Newstrom, L. E. 1991. Evidence for the origin of chayote Sechium edule
(Cucurbitaceae). Econ. Bot. 45: 410-428.
Perrino, P. & K. Hammer. 1985. Collection of land races of cultivated plants in
South Italy, 1984. Kulturpflanze 33: 225-236.
38