MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS

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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
Código : LABMTM2006-1
Edición : 05
Fecha: 05. MAY. 2014
Página 1 de 77
Vigencia : 2014 -2017
TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS
CONTENIDO:
1.
2.
3.
4.
5.
6.
Generalidades...............................................................................................................................2
Alcance .........................................................................................................................................2
Asignación de responsabilidades ..................................................................................................3
Elaboración de la orden o solicitud de examen y rotulación de las muestra: .................................3
Condiciones del paciente al momento de tomar la muestra ..........................................................4
Traslado de las muestras ..............................................................................................................5
6.1
Desde los servicios Clínicos hacia el Laboratorio. .................................................................5
6.2
Desde los Consultorios y consultorio de Especialidades hacia el Laboratorio .......................5
6.3
Hacia los Laboratorios de derivación .....................................................................................6
7. Conservación de las muestras ......................................................................................................6
8. Recepción y rechazo de las muestras ...........................................................................................7
8.1
Criterios de rechazo de muestras ..........................................................................................8
9. Descripción de la toma de muestras .............................................................................................8
9.1
Unidad Hematología ..............................................................................................................9
9.2
Unidad Bioquímica ..............................................................................................................10
9.3
Unidad TBC.........................................................................................................................13
9.4
Unidad Parasitología ...........................................................................................................13
9.5
Unidad Microbiología ...........................................................................................................14
10.
Registros .................................................................................................................................30
11.
Indicadores de medición definidos en su aplicación ................................................................31
12.
Referencias bibliográficas .......................................................................................................35
13.
Responsable de calidad ..........................................................................................................35
14.
Distribución .............................................................................................................................35
15.
Anexos ....................................................................................................................................35
Elaborado por:
TM. Caterina Barra Tello
Encargada Calidad
Fecha: 05 MAYO 2014
Revisado por:
EU. Julia Hernández
Enfermera IAAS
Fecha:06 MAYO 2014
Revisado por:
BQ. Alfredo Bravo S.
Encargado OFICALIDAD
Fecha:12 MAYO 2014
Aprobado por:
TM. Paola Araya F.
Jefe Laboratorio
Fecha: 19 MAYO 2014
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Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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Vigencia : 2014 - 2017
1.
Generalidades:
El trabajo en el laboratorio clínico se basa fundamentalmente en el análisis de muestras de
pacientes y su objetivo es apoyar eficazmente el diagnóstico y tratamiento clínico,
proporcionando evidencia efectiva de condiciones patológicas, monitoreo de terapias, evolución
clínica, pronóstico etc. Esta labor se concreta mediante la entrega en un “resultado de examen”
que proporciona la información investigada a partir de una muestra clínica.
Sin embargo, para que el resultado de una muestra en estudio posea utilidad clínica es
fundamental que todas las etapas involucradas en este proceso (fases pre-analítica, analítica y
post-analítica) se ejecuten en forma óptima para asegurar con ello la calidad de la muestra, de
los procesos y de los resultados.
El garantizar que el proceso que incluye desde la solicitud del examen hasta la emisión del
informe sea adecuado, requiere del compromiso permanente del equipo de salud, en el
entendido de que las decisiones derivadas de la información emitida por el laboratorio “el
resultado”, deben asegurar la calidad y seguridad en la atención de nuestros pacientes y reflejar
su real estado fisiológico.
El presente documento describe los aspectos más relevantes de la etapa pre-analítica
incluyendo:
1.- La elaboración de la orden o solicitud de exámenes y rotulación de las muestras.
2.- Las condiciones del paciente al momento de tomar la muestra
3.- Traslado de las muestras.
4.- Conservación de las muestras
5.- Recepción y rechazo de las muestras
6.- Descripción de la Toma de Muestras
La utilización de la información descrita en este manual nos permitirá asegurar la trazabilidad en
los procesos y estandarizar las técnicas de toma de muestra, así como también, incorporar y
desarrollar mejoras continuas en la calidad de los procesos del laboratorio clínico del Hospital de
Los Andes.
2.
Alcance:
El presente manual y todas las disposiciones que contiene son de alcance, aplicación y
cumplimiento de todo el personal que trabaja en el área clínica del Hospital San Juan de Dios de
Los Andes y que le corresponde tomar las distintas muestras biológicas para la realización de los
exámenes.
También es extensiva a las salas de toma de muestra del laboratorio y a los consultorios y postas
de la red asistencial y que derivan exámenes al laboratorio del Hospital de Los Andes.
Sin excepción se debe aplicar en todos aquellos procedimientos y situaciones relacionadas con
la toma de muestras biológicas.
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Fecha : 05.MAY.2014
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3.
Asignación de responsabilidades:
- Los Tecnólogos Médicos encargados de las respectivas secciones del laboratorio son
responsables del material para la toma de muestra y de la actualización de los procedimientos
de toma de muestra.
- El jefe de Laboratorio es responsable de las actualizaciones del Documento.
4.
Elaboración de la orden o solicitud de examen y rotulación de las muestras:
Según el art 15º del reglamento de laboratorios clínicos, los exámenes pueden ser solicitados
por:
- Un Médico Cirujano
- Otros profesionales del equipo de salud habilitados para el diagnóstico o tratamiento de las
enfermedades o estados fisiológicos
- Requerimiento del propio interesado.
Para ello cada profesional emite un documento que individualiza al paciente y explicita el examen
requerido. Este documento puede ser, en el caso de pacientes hospitalizados o de urgencia, una
orden de solicitud de examen generada en el sistema informático del establecimiento o también
una orden directamente por el médico o profesional, en el caso de pacientes de consultorios o
ambulatorios. Esta petición de examen deberá contener a lo menos:
a.- Membrete o timbre del establecimiento solicitante o del profesional;
b.- Nombre, código y/o número de RUN del profesional y/o domicilio del establecimiento;
c.- Nombre y apellidos, RUN, edad y/o sexo del paciente.
d.- Nombre o código del lugar de procedencia.
d.- Identificación de las prestaciones requeridas.
e.- Firma del profesional que refrenda la petición (en el caso de orden médica escrita).
Los exámenes solicitados en carácter de urgencia deberán tener prioridad en su procesamiento y
entrega de resultados.
Los exámenes para detección del virus de Inmunodeficiencia Humana (VIH) deberán realizarse
de acuerdo a la normativa y reglamentación específica sobre esta materia.
Toda solicitud primaria emitida por el profesional pertinente y los registros en la ficha clínica,
constituyen el documento formal de solicitud de exámenes y este es la base para generar en el
Sistema Informático del Laboratorio (SIL) una orden computacional que será derivada junto a la
muestra a las dependencias del laboratorio clínico.(Anexo 20)
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Para el caso de las muestras tomadas en el servicio de urgencia la orden de examen es emitida
vía SIL por el profesional solicitante y para ese caso el número de historia clínica es reemplazado
por el numero de folio que corresponde al número correlativo asignado por paciente atendido en
dicha unidad
Es requisito para la recepción de una muestra en el laboratorio, que ésta esté acompañada de la
solicitud de examen y que presente la identificación respectiva mediante “un rotulo”, que puede
ser simple o un código de barras. Este rotulo en ambos casos debe contener a lo menos el
nombre y dos apellidos del paciente y el lugar de procedencia.
Para el posterior procesamiento de las muestras al interior del laboratorio, es necesario que las
muestras tengan un rótulo de código de barras, el cual puede ser emitido directamente en el área
de la toma de muestra (servicios clínicos, urgencia, CAE, consultorios) al momento de ingresar la
solicitud primaria al SIL o ser generado al interior del laboratorio. Con lo anterior, una muestra
debidamente respaldada por el documento oficial, puede presentar un rótulo simple o uno de
código de barras.
La etiqueta código de barra está estandarizada según tipo de muestra o recipiente, con la
información y el tamaño requerido. La información necesaria para la rotulación con código de
barra es: Nombre completo del paciente, procedencia, número de solicitud, fecha de recepción
(solo cuando es obtenido en la recepción del lab.) y código de barra que contiene los exámenes
solicitados. (ver anexo 19)
En el caso de las muestras que son derivadas a Barnaffi-Krause (BK), se requiere de
documentos adicionales a la orden computacional emitida por el sistema informático, como la
orden médica emitida directamente por el médico la que debe incluir RUT y fecha de nacimiento
del paciente.
Para las muestras que por programas de vigilancia deben ser enviadas al Instituto de Salud
Publica (ISP), éstas deben adjuntar el formulario de envío según laboratorio de derivación o
estudio en el ISP. Así según sección de destino existen formularios a virología, parasitología etc.
Estos formularios deben ser solicitados a la secretaria del laboratorio cada vez que sea necesario
realizar una toma de muestra para derivación.
El anexo 18 muestra el listado de exámenes que son derivados por nuestro laboratorio a los
laboratorios anteriormente señalados.
5.
Condiciones del paciente al momento de tomar la muestra:
Es responsabilidad de todo el equipo de salud que participa del proceso de la obtención de
muestras clínicas, el conocer las condiciones necesarias para realizar una toma de muestra de
calidad y en el caso que sea el paciente quien obtenga la muestra, estas instrucciones deben
darse por escrito, en forma clara y precisa.
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El personal que por motivos de su cargo realiza la toma de muestra debe estar debidamente
capacitado para conocer aquellos factores que pudiesen ocasionar variaciones importantes en
los constituyentes a analizar o pesquisar. Para ello este manual cuenta con la información
relevante a cada toma de muestra según su área de procesamiento al interior de la unidad.
El anexo 21 detalla los exámenes realizados por el laboratorio con las condiciones necesarias
del paciente para la toma de muestra, el transporte y la conservación.
6.
Traslado de las muestras
Para el traslado de las muestras biológicas se debe remitir a la aplicación del procedimiento
“Traslado y Conservación de muestras para exámenes de Laboratorio” que contempla la
utilización de un recipiente primario, según sea el tipo de muestra (tubos plásticos para suero y
sangre, según estandarización de color, tubos de vidrio estériles, tórulas con medio de
transporte, etc.). Este recipiente debe introducirse en un contenedor secundario y en otro
terciario según sea el caso.
6.1 Desde los servicios Clínicos hacia el Laboratorio.
El traslado de muestras debe realizarse, utilizando el sistema de transporte neumático al
vacío de especímenes biológicos, guiado por profesionales del área de la salud desde el
lugar de procedencia hacia el laboratorio.
Nunca se transportarán muestras, sin que el contenedor esté cerrado correctamente, el tubo
de muestra debe ser enviada en doble contenedor de plástico (bolsa), uno para la muestra y
otro para documentos. Además no serán sometidas a la exposición al sol y la capacidad de
las mismas es de 2 pacientes por bala y/o un máximo de 10 tubos. El tercer contenedor es la
bala del sistema neumático.
Las muestras sanguíneas serán trasladadas a temperatura ambiente a excepción de los
gases arteriales, gases venosos y muestra para amonio que deben venir en una jeringa
heparinizada transportada con tapa y en hielo, debe ser enviada inmediatamente al
laboratorio.
Un sistema alternativo de transporte de muestras es un contenedor plástico con cierre
hermético que debe ser utilizado igual que el sistema neumático, el tubo en doble
contenedor de plástico (bolsa), uno para la muestra y otro para documentos. El tercer
contenedor en este caso es la caja de transporte.
6.2 Desde los Consultorios y consultorio de Especialidades hacia el Laboratorio:
Las muestras deben ser trasladadas desde el consultorio al laboratorio clínico del Hospital
San Juan de Dios de Los Andes, por un estafeta del consultorio capacitado en la
manipulación de muestras. Éstas son transportadas en un maletín plástico con cierre
hermético que contiene una gradilla, así los tubos pueden transportarse de manera vertical.
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El consultorio de Especialidades del hospital transportará las muestras en un carro que
contiene un maletín plástico con cierre hermético donde se transportarán las muestras.
Para muestras aisladas especialidades debe utilizar el sistema alternativo de transporte de
muestras.
6.3 Hacia los Laboratorios de derivación:
Las muestras que deben ser derivadas a los laboratorios del ISP, al laboratorio BK o al
Laboratorio San Camilo, si no son derivadas luego de ser obtenidas deben ser conservadas
en refrigeración según corresponda a la indicación del examen solicitado.
El traslado de las muestras de derivación al laboratorio BK se realiza a temperatura
ambiente en tubos de polipropileno como contenedor primario, el que debe ir con su orden
de examen y un formulario tipo de identificación de las muestras derivadas a BK dentro de
un capacho plástico (contenedor secundario), el que a su vez se deposita dentro del sobre
de envío (contenedor terciario)
Para las muestras derivadas al ISP estas se recolectan en un contenedor primario que a su
vez se deposita en un contenedor secundario, que corresponde a un frasco plástico de tapa
rosca. Este último se dispone al interior de un cooler que contiene refrigerantes. Junto a este
dispositivo, se adjunta el formulario tipo de acuerdo a la muestra, al interior de un cuaderno
de registro exclusivo para muestras enviadas al ISP que contiene los datos del paciente, el
tipo de examen, la fecha de envío.
Este mismo sirve de respaldo de recepción de la muestra, ya que una vez recepcionada la
muestra por el personal del ISP, éste procede a timbrar frente al registro del paciente
correspondiente. La secretaria del laboratorio prepara los registros y el envío para ser
trasladadas por el estafeta del establecimiento o por encomienda, cada 15 días al ISP y
según necesidad al laboratorio BK. (Exámenes derivados en anexo 18)
Para las muestras derivadas al Laboratorio San Camilo, estas se recolectan en un
contenedor primario que a su vez se deposita en un contenedor secundario (Bolsa o caja
plástica). Este último se dispone al interior de un contenedor que contiene refrigerantes.
7.
Conservación de las muestras:
Las muestras que serán procesadas de acuerdo al protocolo de rutina para cada sección, son
depositadas en gradillas dispuestas en los mesones de trabajo a temperatura ambiente y son
procesadas inmediatamente después de cumplir el proceso de recepción. Para el caso de las
muestras de orina, estas deben conservarse refrigeradas hasta el momento de ser procesadas.
Cuando existe mucho tiempo de almacenamiento, las muestras sufren alteraciones como por
ejemplo, las muestras que son tomadas en la noche y trasladadas al laboratorio al día siguiente
en la mañana, la pérdida de CO2 del suero conduce a un aumento del nivel sérico del pH. El pH
del suero alcanzará un valor de 8,5 dos horas después de separarlo del coágulo.
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A este valor alcalino de pH se produce una degeneración de las proteínas y de los factores de la
coagulación lo que trae como consecuencia un aumento en los valores del tiempo de
tromboplastina parcial activada (TTPA) y del tiempo de protrombina (TP). Estos mismos
parámetros se verán también afectados si las muestras no son conservadas en refrigeración, por
degradación de factores lábiles (FV- FVII).
La glucólisis que ocurre en la sangre total provocará una disminución de la concentración sérica
de la glucosa si transcurre mucho tiempo entre la toma de muestra de sangre total y la
separación del suero. Las concentraciones disminuyen un 10% dos horas después de estar en
contacto el suero con el coágulo. Este mismo efecto provoca aumento de las concentraciones de
magnesio, fósforo y potasio.
En el Anexo Nº 21 se detalla por cada examen las condiciones de conservación.
El almacenamiento de las muestras una vez recepcionadas se realiza dependiendo del tipo de
muestra y de la unidad a la que pertenece:
- Unidad de Hematología: las muestras con EDTA, se conservan a temperatura ambiente y
tapadas en el tubo primario hasta su análisis. Las muestras con citrato se conservan
centrifugadas a temperatura ambiente hasta su análisis (hasta 2 horas).
- Unidad de hormonas: se almacena congelada una porción de suero obtenida del tubo
primario y rotulado con el número correlativo de la muestra, hasta el análisis.
- Unidad de Química Clínica: las hemoglobinas glicosiladas son conservadas en sus tubos
primarios tapados y refrigerados hasta ser analizadas.
- Unidad de Microbiología: los parasitológicos son conservados en PAF a temperatura
ambiente hasta su análisis. Leucocitos fecales, rotavirus y adenovirus son refrigerados
hasta el momento de ser examinados. Muestras de coprocultivo y secreciones se
conservan en su medio de transporte hasta el análisis.
8.
Recepción y rechazo de las muestras:
Para la recepción de muestras se aplica lo descrito en el procedimiento de “Recepción de
muestras para exámenes de laboratorio” donde se describen las actividades propias de esta
etapa.
El laboratorio realiza exámenes de rutina en horario hábil, luego de este período, las muestras
recepcionadas son procesadas de acuerdo al listado de exámenes de urgencia, descrito en el
anexo Nº1
Horario hábil de atención:
Lunes a Jueves
Viernes
: 8.00 a
: 8.00 a
17.00 hrs.
16.00 hrs.
Horario de recepción de muestras:
La recepción de las muestras de rutina se realiza hasta las 11:00 hrs de lunes a viernes, ello para
asegurar la calidad de las muestras que son tomadas de preferencia en ayuna considerando el
tiempo de transporte al laboratorio.
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8.1 Criterios de rechazo de muestras
En el “Procedimiento de criterios de rechazo de muestras”, se describen las situaciones que
derivarán del no cumplimiento de las normas, instructivos e instrucciones descritas en este
manual para que una muestra sea de calidad y aceptada.
Cuando no es posible llevar a cabo el procesamiento de la muestra, se habla de causal de
rechazo de muestras, en las que destacan :
- Muestras sin rotular.
- Discordancia entre solicitud y rotulo del tubo.
- Envase incorrecto con respecto a los exámenes solicitados.
- Muestra coagulada o hemolizada.
- Tubo con volumen de sangre incorrecto o relación sangre/anticoagulante incorrecta.
- Baciloscopia derramada, mal rotulada o sin muestra.
- Volumen de orina insuficiente.
- Transporte inadecuado de la muestra o demora en su envío.
- Muestra derramada o con rotura del envase.
Si una muestra cumple con los requerimientos de calidad, los exámenes serán procesados en el
transcurso de la jornada y de acuerdo a las capacidades del servicio.
Cuando exista problema de suministro de insumos y no esté un examen disponible se avisará
oportunamente a los Servicios, consultorios y especialidades.
Una vez que las muestras son procesadas y validadas de acuerdo a lo establecido en los
documentos de analítica y post analítica de cada sección, los resultados de los exámenes son
entregados según el “Procedimiento de entrega de resultados del laboratorio” a nuestros
usuarios internos y externos.
El tiempo de respuesta para los diferentes exámenes procesados al interior de la unidad se
describen en el anexo 21.
9.
Descripción de la toma de muestras:
A continuación se describen las principales consideraciones para obtener muestras de calidad
analítica. Desde esta perspectiva tanto el paciente como el personal del equipo de salud que
obtiene la muestra deben contar con la información al respecto y es responsabilidad del
laboratorio disponer de ella y darla a conocer, ya sea al paciente para que el realice el
procedimiento o al personal encargado de realizar la toma de muestra.
Es responsabilidad del equipo de salud el manejar la información al respecto e informar
adecuadamente al paciente para garantizar así sus derechos.
El anexo 2 detalla las prestaciones realizadas por el laboratorio según nombre de examen,
sección donde se procesa, tiempo de respuesta y valores de referencia.
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En general, las muestras derivadas hacia el laboratorio son sanguíneas, líquidos biológicos y
fluidos corporales. Dependiendo del tipo de análisis que se le realice a las muestras son las
instrucciones o consideraciones que se deben cumplir.
Para la mayoría de los exámenes es necesario el ayuno estricto, sin embargo, se detallará más
adelante los requerimientos según la determinación que se le realice a la muestra.
En términos generales la extracción de toda muestra sanguínea debe realizarse mediante
punción venosa con técnica aséptica, directo a la vena, extrayendo la sangre de forma fluida sin
producir espuma. Además, debe realizarse luego de haber esperado la evaporación del
antiséptico aplicado en la zona de punción. El torniquete aplicado, no debe ser superior en
tiempo a un (1) minuto. Para la obtención de las muestras se debe considerar además de lo que
este manual propone, lo normado en el Programa de Prevención y Control de infecciones
asociadas a la atención en salud, específicamente lo descrito en Técnica Aséptica, Manejo de
Riesgos Biológicos, Prevención de Infecciones Asociadas a Procedimientos Invasivos,
Precauciones Estándar y Aislamiento disponibles en la biblioteca virtual de
www.hospitaldelosandes.cl
9.1 Unidad Hematología:
a. Sangre c/citrato de sodio (Tubo mediano c/tapa celeste o azul) (SCIT):
Este tubo es utilizado principalmente para la realización de pruebas de coagulación. Se debe
considerar que los análisis de TP, TTPK, Fibrinógeno y Producto de degradación del fibrinógeno
(PDF), Dímero D, pueden verse afectados por diferentes variables pre-analíticas, tales como:
método de extracción de sangre, características de la superficie del tubo en que se colecta la
sangre, tipo de anticoagulante y condiciones de almacenamiento y transporte.
Muestra: Para pacientes adultos, se deben tomar 2,7 ml de sangre para un tubo plástico tapa
celeste, que contiene 0,3 ml de citrato de sodio al 3,2 %. En el caso de los pacientes pediátricos
y/o neonatos se toman 0,9 ml de sangre para un tubo plástico tapa celeste que contiene 0,1 ml
del anticoagulante. Esta relación de sangre/anticoagulante de 9/1 es crítica y debe respetarse ya
que el exceso o defecto de anticoagulante altera significativamente la prueba.
La sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con
una pinza, hasta completar los 2,7 ml o 0,9 ml según la marca (línea) presente en el tubo, tapar,
homogeneizar inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma.
La presencia de cualquier coágulo, por mínimo que éste sea, afecta radicalmente las pruebas de
coagulación, por lo que se aconseja tomar una nueva muestra. Una vez tomada la muestra, debe
ser enviada inmediatamente al laboratorio ya que debe ser centrifugada antes de 1 hora. Debe
ser trasladada a temperatura ambiente en el recipiente de traslado de muestras o a través del
sistema de correo neumático.
b. Sangre c/EDTA (Tubo mediano c/tapa lila) (SEDTA)
Para el óptimo análisis de los exámenes hematológicos como hemograma con VHS,
histogramas, recuento de reticulocitos, hematocrito y hemoglobina, es necesario mezclar
suavemente la sangre con el anticoagulante inmediatamente después de la recolección de la
muestra de sangre, para evitar la formación de coágulos y mantener las condiciones naturales de
la sangre.
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Muestra: En el adulto, se debe tomar 2,5 ml de sangre para un tubo de tapa lila que contiene
gotas de EDTA (puede estar liquido o seco) o 1,0 ml en los pacientes pediátricos o neonatos. La
sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con
una pinza, hasta completar los 2,5 ml o llegar hasta la marca que tiene el tubo, tapar, agitar
inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma. La viabilidad
de los elementos sanguíneos analizados es variable por lo que se recomienda enviar la muestra
antes de las 2 horas desde su recolección. Mantener a temperatura ambiente todo el tiempo.
Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2.
9.2 Unidad Bioquímica:
a. Sangre total (Suero): (Tubo mediano c/tapa color rojo y/o amarilla) (STOT):
Muestra: Para su obtención se debe tomar entre 4 y 5 ml. de sangre, para un tubo plástico sin
anticoagulante. Retirar la aguja y dejar escurrir la sangre por las paredes internas del tubo, sin
producir espuma ni adicionar la que hay en la jeringa, tapar, no agitar y dejar en posición vertical
hasta que coagule. La observación de esta metódica garantiza que se evitará la hemólisis.
Dependiendo del tipo de análisis que se realizará al suero se detallan distintas consideraciones
para la toma de muestra. Así tenemos indicaciones de toma de muestra para determinación de
hormonas (anexo 12), para determinación de triglicéridos (anexo 15) y consideraciones para
toma de muestra para exámenes sin determinación de triglicéridos (anexos 14).
b. Sangre c/ fluoruro (Tubo mediano c/tapa gris o blanca) (SFLO):
Muestra: Se debe tomar 2,5 ml de sangre para un tubo plástico que contiene gotas de fluoruro
de sodio (puede estar liquido o seco).
La sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con
una pinza, hasta completar los 2,5 ml o hasta llegar a la marca que tiene el tubo, tapar, agitar
inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma.
c. Sangre (arterial o venosa) c/ heparina en jeringa c/tapón (SHEP):
Dada la complejidad y riesgo de esta técnica, sólo debe ser ejecutada por un profesional de
enfermería y se utiliza para la determinación de gases arteriales o venosos y para el amonio.
Generalmente se emplea sangre arterial que se extrae en una jeringa que se ha lubricado
previamente con heparina. No es necesario agregar más heparina de la que ha quedado en las
paredes internas de la jeringa y aguja.
Muestra: Tomar 2 ml de sangre, colocar la jeringa en posición vertical, eliminar las burbujas, y
sellarla con un tapón de goma o dispositivo tapón rojo. Comprobar el hermetismo tirando del
embolo. Mezclar rotando la jeringa varias veces entre las manos. Transportar prontamente en
hielo al laboratorio.
d. Sangre c/ heparina en tubo mediano o pequeño tapa verde (SHEP):
Muestra: En el adulto, se debe tomar 2,5 ml de sangre para un tubo de tapa verde que contiene
gotas de Heparina o 1,0 ml en los pacientes pediátricos o neonatos. La sangre se hace escurrir
por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con una pinza, hasta completar
los 2,5 ml o llegar hasta la marca que tiene el tubo, tapar, agitar inmediatamente invirtiendo el
tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma.
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Este tubo puede utilizarse como alternativa para algunas determinaciones que requieren suero.
e. Orina de 24 horas ó 12 horas (OR24) (OR12):
Esta toma de muestra se utiliza para Clearence de creatinina, calciurias y uricosurias y nitrógeno
ureico en 12 o 24 hrs.
Se debe comenzar y terminar la recolección con la vejiga vacía, de preferencia en la mañana
para estandarizar las condiciones del paciente en relación a su actividad, comidas, horas de
sueño etc. Y en caso de realizar un seguimiento de estos parámetros, mantener estas
condiciones para las próximas determinaciones. Tener presente que la hora de término de la
recolección esté dentro del horario de atención del laboratorio.
Se hace orinar al paciente y esa primera muestra se elimina (vejiga vacía), y desde ese momento
se recolecta toda la orina por el periodo de tiempo en estudio (24 ó 12 hrs.). Llegada la hora del
término de la recolección se hace orinar al paciente incluyendo en todo el volumen esta última
muestra (vejiga vacía).
Remitir toda la orina al laboratorio, indicando si se trata de 12 o 24 horas. (Ver anexo 10).
f. Orina aislada (OR):
La orina debe recogerse después de un aseo genital prolijo (agua y jabón), directamente de la
uretra a un envase limpio y seco. No deben transcurrir más de dos (2) horas de tomada la
muestra para su procesamiento en el laboratorio. De no ser posible el envío inmediato, la
muestra deberá guardarse a temperatura de refrigeración (Ver anexo 13). No debe contaminarse
con deposiciones (niños) y en la mujer evitar la contaminación con secreciones vaginales o
vulvares. El volumen de muestra no debe ser menor a 10 ml.
g. Deposición para sangre oculta(DEP):
Para este examen no se requiere de una dieta previa y se utiliza una sola muestra.
Muestra: Con un palito tomar un poco de deposición, de preferencia aquella de aspecto más
negro y depositarla en un frasco pequeño que esté limpio y seco. Sirve cualquier muestra del día.
No contaminar con orina (ver anexo 7).
h. Deposición para pH y Test de Benedit (DEP):
Muestra: Con un palito tomar una porción de la deposición (la de peor aspecto), depositarla en
un frasco pequeño que esté limpio y seco (frasco entregado por el laboratorio). Enviar al
laboratorio lo antes posible. Poner todos los datos del paciente en el frasco.
i. Sangre para el Test de tolerancia a la glucosa:
a.- Adulto o embarazada:
Muestra en ayuno
75 gr. de Glucosa disuelta en aprox. 200 cc de agua
Beber la glucosa en no más de 5 minutos.
Muestra a las dos (2) hrs. después de la Glucosa (Ver anexo 11)
b.- Niños:
Muestra en ayuno
1,75 gr. de Glucosa por kilo de peso, con un máximo de 75 gr. en aprox. 200 cc
de agua
Beber la glucosa en no más de 5 minutos.
Muestra a las dos (2) hrs. después de la Glucosa. (Ver anexo 11)
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j. Sangre para medir Niveles plasmáticos de drogas (STOT):
Para la determinaciones de niveles plasmáticos de Fenobarbital, Carbamazepina, Acido
valproico, Fenitoina y Litio se requiere que la petición de este examen contenga los datos de
fecha y hora de la ultima dosis, hora de la toma de muestra y dosis en mg/día.
Muestra se toma en ayuno, sangre sin anticoagulante en un tubo tapa roja y normalmente antes
de la administración de la dosis de la mañana (cuando la tiene).
Enviar al Laboratorio de inmediato.
k. Estudio de líquido cefalorraquídeo (LCR):
La muestra debe ser obtenida por un médico entrenado en la técnica de punción lumbar.
El LCR se recolecta en un tubo estéril sin anticoagulante, 2 cc mínimo para el estudio
bacteriológico, y otro para estudio citológico-citoquímico. Rotular el tubo con el nombre completo
del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra. Enviar de inmediato la muestra al
laboratorio, solicitando Gram, cultivo, citológico-citoquímico.
l. Estudio de líquido ascítico:
Estas muestras se obtienen generalmente por punción percutánea, por lo tanto, se debe realizar
un riguroso aseo y antisepsia de la zona que se va a puncionar para evitar la contaminación de la
muestra con flora cutánea. Las muestras deben ser obtenidas por un médico experimentado en
la técnica.
Se toman dos muestras en tubos estériles. Una de las muestras en un tubo sin anticoagulante, la
que será usada para el estudio bacteriológico. La otra fracción de muestra en un tubo con
anticoagulante (dos gotas de heparina por cada cc de líquido a extraer) el que será usado para el
examen citológico-citoquímico.
Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. El
rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio citológicocitoquímico (con anticoagulante).
Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente.
m. Estudio de líquido sinovial o articular y pleural:
examen citoquímico.
Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. El
rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio citológicocitoquímico (con anticoagulante).
n. Estudio de líquido amniótico:
Se toman dos muestras, las que en ningún caso deben llevar anticoagulante.
El tubo para el estudio químico de líquido amniótico debe venir protegido de la luz (envuelto en
papel calco).
Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Enviar
de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente.
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9.3 Unidad TBC:
a. Baciloscopía y cultivo de Koch:
El examen debe venir solicitado en un formulario especial (programa de TBC).
Muestra: La muestra debe ser fruto de una tos profunda. No debe ser saliva. Se toman dos
muestras en días consecutivos y en una caja plástica negra que entrega el laboratorio. Enviar
prontamente (Ver anexo 6).
En el formulario se deben consignar todos los datos solicitados, ello permitirá que la muestra se
canalice en forma correcta (ó va a cultivo corriente ó se le hace estudio de sensibilidad ó se
envía al I.S.P. para un estudio más completo).
b. Orina para baciloscopía:
Muestra: Se requieren de 6 muestras de orina de días sucesivos. La muestra debe ser de
segundo chorro y se debe tomar en frascos estériles que entrega el laboratorio. Se toman aprox.
100 ml de orina. Enviar inmediatamente al laboratorio; no pueden transcurrir más de dos (2)
horas para su procesamiento.
La petición del examen debe hacerse en el formulario correspondiente (programa de TBC), y por
ser un examen que se envía a San Felipe la muestra debe estar antes de las 8,30 en recepción
del laboratorio.
Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2
9.4 Unidad Parasitología:
a. Parasitológico seriado:
Muestra: En el frasco de boca ancha, entregado por el laboratorio, al cual se le ha agregado
solución fijadora PAF (25 ml aprox.), depositar con un palito una muestra de deposición del
tamaño de una nuez, de cualquier hora del día, y mezclar con el líquido hasta formar una pasta.
Repetir este procedimiento día por medio hasta completar tres (3) días. Todas las muestras van
en el mismo frasco. Enviar al laboratorio dentro del horario de atención. Guardar el frasco en un
lugar fresco (ver anexo 8).
b. Test de Graham:
Las muestras deben tomarse en las mañanas, al levantarse y antes de hacerse el aseo o
bañarse.
Muestra: Antes de acostarse hacerse un buen aseo rectal. En la mañana siguiente tomar una
lámina, despegar la cinta hasta la mitad y la parte adhesiva de la cinta pasarla por los bordes del
ano, pegar nuevamente la cinta al vidrio. En uno de los extremos colocar el nombre del paciente.
Se requiere de cinco (5) muestras tomadas en días sucesivos. Llevar las cinco muestras al
laboratorio (ver anexo 9).
c. Acarotest :
Solicitar la toma de muestra al Tecnólogo Médico de la sección de Bacteriología. El paciente no
debe bañarse el día de la toma de muestra, tampoco debe estar usando cremas, talco y lociones
en la piel. Observar las zonas afectadas y ubicar las que estén con mayor lesión. Raspar con la
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lanceta hasta obtener trozos de piel en escamas. Pegar el scotch en la zona que ha sido raspada
y ponerlo nuevamente en el porta objeto. Realizar lo mismo en las distintas zonas afectadas
hasta completar las 5 muestras.
Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2
9.5 Unidad Microbiología:
El objetivo fundamental de los estudios de cultivos microbiológicos, ha sido el aislar el o los
agentes etiológicos de una probable infección con el fin de apoyar al médico clínico en la
confirmación diagnóstica y orientar el uso racional de antimicrobianos en el tratamiento del
paciente. El sistema de vigilancia para las infecciones asociadas a la atención en salud (IAAS)
vigente, establece apoyo adicional, en algunos criterios de notificación de la IAAS, cuando la
definición requiere de identificación etiológica.
La calidad del examen no solo depende de un proceso analítico correcto, sino también de una
correcta toma de muestra. En esta etapa se deben considerar factores tales como: preparación
del paciente, horario de la obtención, traslado y conservación de la muestra, identificación
correcta de la muestra, etc. Por ello, una muestra mal tomada, escasa o mal transportada,
determinará un posible fallo en la recuperación de los agentes patógenos, lo que puede inducir a
errores diagnósticos, e incluso a un tratamiento inadecuado del enfermo
a. Consideraciones generales:
1. La viabilidad de los microorganismos disminuye por:
- pH ácido del pus
- la disminución de la temperatura
- la desecación
Para evitar esta pérdida y obtener el máximo rendimiento de los exámenes microbiológicos, se
debe acortar al mínimo el tiempo transcurrido entre la extracción de la muestra y su posterior
siembra en el medio específico del laboratorio.
La desecación es uno de los factores que contribuye a disminuir el rendimiento del cultivo, por
lo tanto, la muestra tomada con tórula seca es la más inadecuada.
2. La utilidad final de una muestra bacteriológica depende en gran parte de la calidad de la
muestra tomada. Con el propósito de disminuir el grado de contaminación, ésta debe ser
realizada con técnica aséptica, usando material estéril.
3. La solicitud del examen y la identificación del envase de la muestra debe aportar datos que
orienten al laboratorio: nombre del paciente, ubicación, tipo de muestra, fecha y hora de su
obtención, diagnóstico clínico, uso de antibióticos, etc.
4. La toma de cultivos seriada está obsoleta por no existir evidencia científica que la avale. El
cultivo se tomará dependiendo de la evolución clínica del paciente.
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5. Indicación de cultivo:
El diagnóstico de infección es clínico y se basa en la presencia de síntomas y signos clínicos
en el sitio de la lesión. El cultivo se solicita sólo:
- Con diagnóstico de infección
- Si se requiere confirmar la etiología con fines epidemiológicos
- Si el clínico decide que el estado del paciente amerita un tratamiento sistémico con
antibiótico.
6. Las muestras deben ser tomadas previo a tratamiento con antibióticos
7. Traslado. Las muestras tomadas deben ser enviadas inmediatamente al laboratorio (en un
lapso no superior a 30 minutos) para su posterior siembra en un medio de cultivo. Si esto no
es posible, conservarlas a temperatura ambiente hasta su envío .No refrigerarlas.
- La toma de muestra es un proceso simple, pero fundamental para el buen rendimiento
del examen bacteriológico solicitado.
- La muestra debe ser tomada en forma correcta, por una persona idónea, empleando
equipo estéril y las mayores precauciones de asepsia.
- La muestra debe ser representativa del proceso infeccioso, debe obtenerse en cantidad
suficiente para permitir el estudio completo y debe enviarse al laboratorio tan pronto como
se tome y debe indicar en forma precisa el sitio de toma de muestra (Ej. herida superior
brazo izquierdo).
- Especial cuidado deberá tenerse frente a muestras en las que se desea investigar
Meningococo, Hemophilus y Pneumococo, por su baja resistencia a las condiciones
ambientales y por su capacidad de síntesis de enzimas autolíticas (las bacterias se
destruyen a sí mismas).
b. Tipo de muestras requeridas:
1. Urocultivo:
- Se tomará muestra de orina para cultivo a todo paciente que esté con catéter urinario
permanente y se sospeche que esté cursando una infección urinaria. No se recomienda
tomar muestras a intervalos regulares si no hay signos de infección
- La muestra de orina se puede obtener por medio de: punción vesical, de segundo chorro (si
se indicó retiro de sonda), o a través de sonda nueva, (si se indicó cambio de sonda).
- Especificar en la etiqueta del tubo, si la muestra fue tomada por punción vesical, segundo
chorro o por sonda.
La muestra debe ser la primera orina de la mañana y en caso de urgencias se puede tomar
la muestra solo si se tiene una retención vesical de tres (3) horas como mínimo.
Las muestras deben ser tomadas en un tubo estéril y enviadas inmediatamente al laboratorio
ya que la permanencia a temperatura ambiente favorece la multiplicación bacteriana, lo que
altera en forma significativa el recuento de gérmenes. Las muestras deben ser sembradas
antes de transcurrida una hora (1) de tomada, por lo tanto si no se puede enviar en forma
inmediata al laboratorio, la muestra debe mantenerse en refrigeración, pero no más de cuatro
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(4) horas. Las muestras con valor informativo (como controles) deben tomarse antes de la
administración de los antibióticos. Si el enfermo ya estuviera en tratamiento, éste deberá ser
suspendido y esperar 48 horas y posteriormente tomar la muestra.
Aun en bajas concentraciones de antibióticos en la muestra a estudiar se puede producir una
inhibición del crecimiento bacteriano en el estudio “in Vitro“.
Todas las muestras deben rotularse en forma adecuada y acompañarse de una orden medica
de examen según indicaciones. Se debe especificar en la etiqueta del tubo si la muestra fue
tomada por punción vesical, segundo chorro o si se utilizó una sonda y si existe tratamiento
previo con antibióticos.
1.1 Orina de 2° chorro:
La utilización de este método depende de la edad, sexo y habilidad del paciente para cooperar
en la toma de muestra. Debe instruirse al paciente, ya sea, en forma verbal o por escrito si es
él mismo quien va a tomar la muestra, o de lo contrario debe ser tomada por personal
adiestrado.
a.En pacientes mujeres:
 Lavarse las manos con agua y jabón, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de
papel desechable.
 Efectuar un prolijo aseo de los genitales externos de la paciente, por arrastre, para lo cual
se deben separar los labios mayores y luego limpiar el orificio uretral con un apósito y
solución jabonosa. Posteriormente enjuagar con abundante agua.
 En lo posible taponar vagina para evitar la contaminación con secreciones vaginales o
sangre proveniente de la menstruación.
 Emitir un primer chorro de orina y eliminarlo, cortar la micción y reiniciarla recibiendo la
orina directamente en un frasco o tubo estéril. La cantidad mínima requerida es de 10 ml.
 Enviar prontamente al laboratorio. (Ver anexo 16).
b.En pacientes hombres:
 Lavarse las manos con agua y jabón, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de
papel desechable.
 Efectuar un prolijo aseo de los genitales externos del paciente, para lo cual se debe
deslizar hacia atrás el prepucio para limpiar el glande con un apósito y solución jabonosa.
Posteriormente enjuagar con abundante agua.
 Emitir un primer chorro de orina y eliminarlo, cortar la micción y reiniciarla recibiendo la
orina directamente en un frasco o tubo estéril. La cantidad mínima requerida es de 10 cc.
 Enviar prontamente al laboratorio. (Ver anexo 17).
1.2 Orina aséptica por técnica de recolector:
No es una buena muestra ya que generalmente se contamina con flora perineal. Es útil solo si
el cultivo resulta ser negativo o si se aísla en recuento significativo una especie uropatógena
única. Para este procedimiento se recomienda el cambio de recolector cada 30 minutos hasta
obtener la muestra de orina.
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Esta técnica se utiliza en lactantes y preescolares y consiste en adosar un dispositivo de
plástico (recolector estéril) a los genitales del lactante previamente aseados tal como se indica
en la técnica de recolección de orina 2° chorro. Esta bolsita se debe fijar a la piel con una cinta
adhesiva y no debe permanecer más de una hora instalada. Se observa a diferentes intervalos
(máximo media hora) si el lactante ha orinado. De ser así, se retira el recolector y se envía de
inmediato al laboratorio
1.3 Cateterización Vesical:
Esta es una técnica riesgosa que puede llevar a una contaminación ascendente y por lo tanto
se debe realizar excepcionalmente. Está indicada en personas que no pueden orinar
libremente por causas tales como: inflamación prostática, estrechez uretral, cálculos, parálisis
vesical, etc.
 Debe ser indicada por el médico, el procedimiento debe cautelar el mantener en todo
momento la asepsia para evitar el arrastre de gérmenes con la sonda hacia la vejiga.
 Colocar al paciente en decúbito dorsal y con las piernas flectadas.
 Realizar un aseo genital externo muy prolijo. Utilizar agua jabonosa, enjuagar con
abundante agua.
 El operador debe usar guantes estériles previo lavado de las manos.
 Aislar la zona genital con un paño estéril que tenga un orificio.
 Colocar en el riñón estéril la sonda vesical estéril a utilizar. Nº 6, 8, 10 ,12 y 14
(excepcionalmente Nº 4 cuando el paciente lo requiere).
 Lubricar la sonda con vaselina estéril.
 Introducir la sonda por la uretra unos 6 a 10 cm. en la mujer y unos 15 cm. en el hombre.
 Recibir la orina de segundo chorro en frasco estéril.
 Rotular para el envío al laboratorio.
 Retirar la sonda cuidadosamente.
 Enviar la muestra al laboratorio.
1.4 Catéter de permanencia prolongada:
La muestras a estos pacientes se toman solo en caso de que esté cursando una infección
urinaria o se haya indicado el cambio o retiro de sonda. (Actuar de acuerdo a la norma del
Programa de IAAS sobre catéter urinario a permanencia). No se recomienda tomar muestras a
intervalos regulares si no hay signos de infección.
Muestra: La muestra de orina se puede obtener por medio de punción vesical, de segundo
chorro si se indicó retiro de sonda, a través de una sonda nueva en el caso de que se haya
indicado cambio de sonda o si el catéter ha sido recientemente instalado (no más de 24 hrs),
obtener la muestra por punción de la sonda. En este último caso se debe limpiar la superficie
externa del catéter con alcohol de 70% y esperar que seque. La punción se efectúa en un
ángulo de 30º en el sitio indicado para ello. No debe pinzarse el catéter antes de obtener la
muestra. Las otras técnicas ya fueron descritas en párrafos anteriores y corresponde proceder
de la forma señalada.
 Se debe realizar aseo genital previo por arrastre con agua y jabón.
 Se debe recolectar un volumen de entre 10 y 15 ml.
 Una vez tomada la muestra se debe enviar al laboratorio lo antes posible.
 Especificar en el tubo de muestra si ésta fue tomada de punción vesical, segundo chorro o
por sonda.
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1.5 Aspirado supra-púbico (Punción vesical):
Es el método más preciso ya que evita la contaminación de la orina con la flora bacteriana de
la uretra, pero como es un método que produce traumatismo de la mucosa vesical se reserva
solo para algunos casos: lactantes, niños de corta edad, adultos con facultades mentales
perturbadas o trastornos motores.
El paciente no debe orinar a lo menos por 2 horas antes del proceso. Se considera preparado
cuando el deseo urgente de orinar permite extraer la muestra por presión supra-púbica.
Muestra: Un área de la piel en la línea media, de aproximadamente 5 cm., arriba de la sínfisis
del pubis se aseptiza con povidona yodada. Puede usarse anestesia local, pero no es
necesario para la mayoría de los pacientes. Utilizar una aguja del Nº 22 estéril de 4 cm. de
largo o aguja especial Nº 22 unida a una jeringa estéril de 20 ml. Introducir a través de la piel,
fascia y pareo de la vejiga con un movimiento rápido.
 Se aspira el contenido de la vejiga y se coloca en un tubo estéril.
 Enviar al laboratorio lo antes posible.
2. Hemocultivo:
- La toma de muestra debe ser realizada por un profesional debidamente capacitado en la
técnica (Enfermera, Matrona o Tecnólogo Medico).
- La toma de muestra debe realizarse en relación con la aparición de síntomas (escalofríos,
fiebre) que es el momento de mayor rendimiento.
- Cuando se indique tomar hemocultivos, los frascos con medio de cultivo y adaptadores para la
toma de muestra, deben retirarse en el laboratorio. Los frascos se rotularán en el lugar
indicado, con el nombre completo del paciente, fecha, hora, servicio clínico y numero de la
muestra (I o II)
- Los frascos deben estar a temperatura ambiente, protegidos de la luz solar y serán devueltos
al laboratorio si no son utilizados.
- La preparación del sitio de punción será con un lavado con agua jabonosa y pincelación con
tórula con alcohol de 70°.
- El profesional que toma la muestra deberá hacer un lavado prolijo de sus manos y antes de
palpar el sitio de punción pincelará sus dedos con alcohol de 70°.
Muestra: La punción debe ser directa a la vena o arteria y se debe extraer la cantidad de
sangre que corresponda, según edad del paciente, llenando el frasco hasta la marca hecha
por el laboratorio:
- Adulto :
: Rangos 3 - 10 ml (Optimo: 8 - 10 ml)
- Pediátrico y recién nacidos : Rangos 0.5 - 3 ml (Optimo: 1 - 3 ml)
-
-
Habitualmente el número de muestras es de dos por episodio séptico, que se deben tomar en
forma simultánea pero con sitios de punción diferentes porque si se contaminan se pierden las
dos muestras. No se recomienda tomar un hemocultivo solitario, se ha observado que su
rendimiento es malo. El tomar más de 2 hemocultivos intermitentes en 24 horas no aumenta la
positividad.
Previo a vaciar la sangre a los frascos, se debe retirar las tapas plásticas de estos y pincelar la
goma con alcohol de 70°.
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-
Si se van a tomar muestras de sangre para varios exámenes, se debe vaciar primero sangre
para el hemocultivo y después para el resto de los exámenes.
Una vez tomadas las 2 muestras deben ser trasladadas de inmediato al Laboratorio.
Es importante indicar en la orden el diagnóstico presuntivo, dado que el periodo de incubación
adecuado de las muestras varía en cada caso. En general el tiempo de cultivo varia de 5 días
para septicemias, 14 días para EBSA y 21 días para Brucelosis.
Para evaluar la calidad de la toma de muestra y rendimiento, el laboratorio llevará registro, por
servicio del número total de muestras tomadas, número de hemocultivos positivos,
contaminados y negativos.
Importante :
Nunca sobrepasar el volumen máximo de llenado,
Siempre llegar al volumen mínimo,
Lo ideal es completar los volúmenes óptimos,
No rayar ni ensuciar el código de barra del frasco.
3. Muestra de Catéter Venoso Central:
Las muestras deben tomarse solo en aquellos pacientes con catéter venoso central que
presenten fiebre mayor a 38ºC (temperatura axilar) sin foco infeccioso aparente que la explique o
que presenten signos de infección a nivel de herida cutánea donde se inserta el catéter, o en el
trayecto subcutáneo y/o la presencia de una flebitis.
Las muestras deben considerarse como potencialmente infecciosas y deben manipularse
siguiendo las precauciones para el manejo de sangre y fluidos corporales.
La toma de muestra debe ser realizada por un profesional debidamente capacitado en la técnica
(Enfermera).
Con el propósito de disminuir el grado de contaminación, la toma de muestra debe ser realizada
con técnica aséptica, usando material estéril.
El laboratorio de microbiología no procesará aquellas muestras cuyas condiciones no sean las
adecuadas, por ejemplo:
- No estén bien rotuladas
- Punta de catéter que vengan en cualquier otro recipiente que no sea una placa Petri estéril
proporcionada por el laboratorio
- Puntas de catéter con más de 5 centímetros de longitud
- Muestras para hemocultivos cuantitativos que sean tomadas en jeringas de distinto volumen
y que contengan menos de 1,5 ml de sangre cada una
- Muestras para hemocultivos cuantitativos que vengan selladas con cualquier otro dispositivo
que no sea tapa estéril.
- Muestras coaguladas
- Muestra para hemocultivos cuantitativos, si inmediatamente luego de tomadas, se retira el
catéter. En este caso el laboratorio sólo procesará la punta del catéter.
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3.1 Toma de muestra con retiro de catéter:
El objetivo es obtener un trozo de catéter (de 3-5 cm desde la punta) en condiciones asépticas
para estudiar la presencia de microorganismos en éste.
Material: Placa Petri estéril, equipo de curación estéril (pinzas, tijeras, gasa), povidona
yodada, guantes estériles, dos frascos para hemocultivos periféricos
Punta del Catéter:
 Limpiar la piel donde se inserta el catéter con suero fisiológico estéril.
 Pincelar con povidona yodada
 Hacer un campo estéril
 Con una pinza y tijeras estériles cortar el punto que fija el catéter a la piel y traccionar
suavemente éste hacia el exterior.
 Cortar con tijeras un trozo de 3 – 5 cm desde la punta del catéter.
 Guardar la punta del catéter en una placa Petri estéril.
 Simultáneamente se deben tomar dos hemocultivos periféricos del paciente (tomados
según norma para hemocultivos)
3.2 Toma de muestra sin retiro del catéter: Hemocultivos cuantitativos
La confirmación de que una bacteremia corresponde a una infección asociada al catéter, se
basa en demostrar la presencia del germen responsable en el catéter. Ello tradicionalmente se
realiza mediante la retirada del catéter y su posterior procesamiento microbiológico (técnica de
Maki).
Actualmente existen métodos alternativos que permiten demostrar que la infección es causada
por el catéter sin que sea obligatoria su retirada (técnica de hemocultivos cuantitativos).
En la técnica de Maki, si el recuento de colonias es < a 15 UFC, se interpreta como una
contaminación del catéter al momento de retirarlo. Si el recuento de colonias es >ó = a 15
UFC, se interpreta como una colonización del catéter, la cual puede ser la causa de la fiebre
del enfermo.
En la técnica de Hemocultivos cuantitativos, se interpreta como infección del torrente
sanguíneo asociado a catéter venoso central, cuando se obtengan cultivos positivos con el
mismo agente etiológico y con un recuento de colonias 5 veces mayor en sangre de catéter
que en vena periférica. Por ejemplo:
- Muestra sangre catéter:
Staphylococus aureus 50 UFC/ml
- Muestra sangre periférica:
Corresponderá al médico tratante interpretar los resultados según la clínica del paciente si se
da por ejemplo el siguiente caso :
- Muestra sangre catéter:
- Muestra sangre periférica:
El objetivo es obtener dos muestras de sangre de 1,5 ml cada una, en forma aséptica, una
proveniente del catéter, y la otra de una vena periférica para estudiar presencia de
microorganismos en ambas y así poder orientar al clínico en el diagnóstico de una bacteremia
asociada a catéter.
Material: Dos jeringas de 3 ml, heparina estéril, tapas estériles (para sellar las jeringas),
tórulas de algodón, solución jabonosa, alcohol de 70º
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Muestra:
Se tomarán dos muestras de sangre simultáneamente, una proveniente del
catéter venoso central y otra de una vena periférica, las que se tomarán en jeringas iguales de
3 ml cada una, de la siguiente manera:
 Con jeringa heparinizada, tomar 1.5 ml de sangre a través del C.V.C. Si el catéter tuviera
más de 1 lumen se deben enviar muestras de cada uno de ellos en jeringas separadas.
Cada jeringa debe venir identificada con el nombre del paciente y el lumen de donde se
tomó la muestra (ejemplo: lumen 1, 2, etc.)
 Con otra jeringa, también heparinizada, tomar 1.5 ml de sangre de una vena periférica,
previo aseo de la piel a puncionar y antisepsia.
 Las jeringas deben enviarse al laboratorio sin aguja y selladas con tapa estéril,
transportándose a temperatura ambiente.
Frente a la presencia de signos de infección local se puede tomar una muestra para cultivo de
cualquier exudado del sitio de salida.
4. Líquido cefalorraquídeo (LCR):
La muestra debe ser obtenida por un medico entrenado en la técnica de punción lumbar.
La punción se debe realizar antes de la administración de antibióticos y con técnica aséptica
estricta
El LCR se recolecta en un tubo estéril sin anticoagulante, 1 a 2 cc para el estudio
bacteriológico. Rotular el tubo con el nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y tipo
de muestra (LCR).
Se deben tomar dos muestras en tubos estériles, una de las cuales es para el estudio
bacteriológico (cultivo y Gram) y la otra es para el estudio citológico-citoquímico.
Enviar de inmediato la muestra al laboratorio, solicitando tipo de cultivo, tinta china, Gram,
directo.
5. Líquido ascítico:
Estas muestras se obtienen generalmente por punción percutánea, por lo tanto, se debe realizar
un riguroso aseo y antisepsia de la zona que se va a puncionar para evitar la contaminación de la
muestra con flora cutánea. Las muestras deben ser obtenidas por un médico experimentado en
la técnica.
examen citológico-citoquímico.
Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra
(Liquido Ascítico). Además el rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál
para el estudio citoquímico (con anticoagulante).
6.-Liquido sinovial, articular o pleural:
Se toman dos muestras. Una de las muestras en un tubo sin anticoagulante, la que será usada
para el estudio bacteriológico. La otra fracción de muestra en un tubo con anticoagulante (dos
gotas de heparina por cada cc de líquido a extraer) el que será usado para el examen
citoquímico.
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Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra.
Además el rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio
citoquímico (con anticoagulante).
7.-Liquido amniótico:
Se toman dos muestras, las que en ningún caso, deben llevar anticoagulante.
El tubo para el estudio químico de líquido amniótico debe venir protegido de la luz (envuelto en
papel calco).
Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Enviar
de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente.
8.-Desgarros y expectoraciones:
Se tomará muestra de expectoración a todo paciente que después de 48 hrs de hospitalización
presente cuadro respiratorios inferior, con tos y expectoración.
Esta muestra puede ser obtenida desde un paciente consciente que comprenda las
instrucciones.
El personal a cargo de la toma de muestra (Enfermera, Técnico Paramédico, Kinesiólogo) debe
asistir al paciente durante la obtención de la muestra. Se debe explicar el procedimiento al
paciente para obtener su colaboración y se recomienda la toma de muestra en la primera
expectoración de la mañana.
Muestra: El paciente se debe lavar los dientes y luego realizar enjuagatorios con suero
fisiológico estéril o simplemente con agua, con el objeto de eliminar los restos de partículas
alimenticias y los gérmenes saprofitos de la cavidad bucal.
 Mediante tos espontánea o provocada, eliminar el esputo (debe estar libre de saliva)
directamente a una placa Petri estéril.
 El volumen de la muestra debe ser entre 1 a 3 ml
 El personal que toma la muestra acompañará al paciente hasta que éste elimine una
expectoración adecuada. Si este procedimiento no da resultado se pedirá ayuda al
Kinesiólogo
 Si el paciente está comprometido de conciencia, la muestra se obtendrá por aspiración de
secreciones.
 Rotular la placa con cinta indicando el nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y
tipo de muestra.
 Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio para ser sembrada.
9. Secreción faríngea:
Cultivo corriente:
El cultivo de secreción faríngea incluye el estudio en cultivo corriente y búsqueda de Neisseria
meningitidis.
- Colocar al paciente frente a una buena fuente de luz.
. Explicarle en que consiste el examen para lograr su cooperación.
- Hacerle pronunciar la letra A
- Simultáneamente usando un baja lengua, frotar una tórula estéril con firmeza contra la pared
posterior de la faringe, detrás de la úvula y las amígdalas tocando cualquier exudado faríngeo.
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- Retirar cuidadosamente la tórula para no tocar la lengua, la úvula y pared de la boca y
contaminar la muestra con saliva.
- La tórula se introduce en un tubo estéril el que debe ser rotulado de inmediato, indicando
nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra.
- La muestra debe ser enviada de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el
máximo de tiempo de viabilidad de los gérmenes a temperatura ambiente es de dos horas.
Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún
medio de transporte, como Stuart (torulines con medio de transporte). La muestra no debe
refrigerarse.
10. Secreción nasal:
Existen dos (2) opciones para la toma de este tipo de muestra:
a.-Cultivo nasal en caso de sinusitis:
- Se realiza utilizando una tórula estéril la cual debe humedecerse en suero fisiológico estéril.
- Ésta se introduce en una fosa nasal, profundamente, sobrepasando el meato medio, en
dirección paralela al piso de la fosa nasal.
- Se frota suave, pero firmemente, dando un giro de tal manera que la tórula se empape con el
pus allí localizado.
- Se retira suavemente sin tocar las aletas de la nariz y se introduce en unos tubos estériles.
- Rotular inmediatamente con el nombre del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra.
- Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo de
resistencia de los gérmenes a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más
largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte,
como Stuart (torulines con medio de transporte).
- La muestra no debe refrigerarse.
- Es preferible que la muestra la tome un otorrino con instrumental adecuado.
b.- Cultivo nasal para el estudio de portadores de Staphylococcus aureus:
- Se realiza utilizando una tórula estéril la cual debe humedecerse en suero fisiológico estéril.
- Ésta se introduce y se hace rotar en el vestíbulo de ambas fosas nasales (tabique y cara
interna de las aletas nasales).
- Introducir la tórula en un tubo estéril.
- Rotular inmediatamente con el nombre del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra.
- Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo de
resistencia de los gérmenes a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más
largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte,
como Stuart (torulines con medio de transporte).
- La muestra no debe refrigerarse.
11. Secreción ocular:
El agente etiológico de enfermedades infecciosas del ojo se aísla con mayor frecuencia en las
primeras etapas de la enfermedad, por ello es fundamental una muestra tomada precozmente,
en la forma más aséptica posible y sobre todo antes de la administración del antibiótico. No debe
tomarse dentro de las cuatro (4) horas de instalado una solución desinfectante u otros
medicamentos que puedan contener antibióticos como preservativos.
 La muestra debe tomarse con la ayuda de otra persona que inmovilice la cabeza del paciente.
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LABORATORIO CLINICO
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 La secreción conjuntival se toma con tórula, y debe ser dirigida hacia el ángulo interno del ojo,
previa separación del párpado inferior del globo ocular con el pulgar de la otra mano.
 La tórula debe retirarse suavemente para que toda la superficie del algodón quede empapada
con la secreción purulenta. El inoculo debe ser abundante.
 Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo a
temperatura ambiente es de dos horas si fuese obtenida en tórula con medio de transporte, de
lo contrario debe ser llevada al laboratorio antes de media hora. La muestra no debe
refrigerarse. Es preferible que la muestra sea tomada por un medico oftalmólogo con
instrumental adecuado.
12. Secreción ótica:
Antes de tomar la muestra proveniente del oído externo debe hacerse un aseo cuidadoso de la
piel para disminuir las posibilidades de arrastrar gérmenes presentes normalmente en la zona.
 Si el pus sale al exterior e inunda el pabellón de la oreja, es preferible eliminarlo previamente
con un algodón estéril e introducir la tórula en el conducto auditivo externo siguiendo una
dirección ligeramente oblicua de atrás-adelante y de abajo-arriba. En caso de perforación del
tímpano, la muestra debe ser tomada por un Otorrino con el material estéril adecuado.
temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera,
la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines con medio
de transporte).
 La muestra no debe refrigerarse.
13. Pus:
La toma de muestra deberá realizarse en las mejores condiciones de asepsia posible.
En un absceso abierto debe tomarse escasa cantidad de material purulento, se pasa la tórula
estéril por las paredes internas del absceso, en la región más alejada de la piel y en ningún caso
del centro mismo del absceso (ahí solo se obtiene gérmenes no viables).
 En un absceso cerrado, al drenarse quirúrgicamente éste, se toma el pus con tórula estéril o
jeringa estéril la que debe taparse con un tapón y quedar bien sellada
 Rotular inmediatamente con el nombre del paciente, procedencia y tipo de muestra.
la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines estériles con
medio de transporte).
14. Heridas y Escaras:
Se tomará muestra para cultivo a todo paciente que ingrese con una lesión de piel en que se
sospeche infección. Si la evolución de la lesión así lo amerita se tomará otra muestra para
cultivo, bajo indicación médica.
La muestra será tomada por el profesional de Enfermería o Técnico Paramédico bajo la
supervisión del primero.
Las lesiones superficiales de la piel son tomadas por remoción de costras y piel que recubre
pústulas o vesículas.
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 Limpiar la herida por arrastre mecánico con suero fisiológico, luego frotar con una tórula estéril
el centro y los bordes internos de la superficie comprometida dentro de la lesión.
 En el caso de lesiones más profundas (escaras, quemaduras) se debe limpiar la superficie
dañada con suero fisiológico estéril removiendo la escara.
 Tomar la muestra con tórula estéril de la parte más profunda de la herida.
 En un absceso abierto debe tomarse escasa cantidad de material purulento, si el contenido
del absceso es muy fluido se extrae con jeringa, asépticamente. Se recomienda tomar de las
paredes internas del absceso, en la región más alejada de la piel, pero no el centro del mismo.
 Rotular la muestra con el nombre completo del paciente, la procedencia y el tipo de muestra.
la muestra deberá tomarse con medio de transporte, como el medio Stuart. (torulines estériles
con medio de transporte).
15. Raspado de Piel ( estudio de hongos de la piel ):
- Para examen directo y cultivo de hongos solicitar la toma de muestra al Tecnólogo Médico
de la sección de Microbiología en horario hábil.
- Lo ideal es que la muestra sea tomada antes de iniciar tratamiento con antibióticos y/o
antimicóticos. Si es un control y el paciente usó tratamiento local (crema), debe dejar pasar
por lo menos 10 días sin aplicar la crema. Si el tratamiento fue oral (tabletas), lo ideal es dejar
pasar por lo menos 30 días sin tomar el medicamento
- Idealmente el paciente no debe bañarse al menos 12 hrs. antes del examen y debe suspender
por 7 días el uso de productos de perfumería (colonia, talco, crema, etc.) si es que la muestra
que se va a tomar es de piel.
- Si la muestra a tomar es de pelo y cuero cabelludo, no se debe lavar el pelo al menos durante
los 4 días previos al examen.
- Si la muestra a tomar es de uñas, el paciente no se debe cortar las uñas ni usar esmalte
durante los 7 días previos al examen.
a.-Raspado de piel para estudio de pitiriasis versicolor:
Se debe raspar superficialmente con bisturí la zona de las lesiones (manchas pequeñas hipopigmentadas o híper-pigmentadas), luego se pega la cinta de scotch en la piel, se presiona con el
dedo esta cinta y luego se retira para aplicarla sobre un portaobjeto (se toman 3 muestras por
paciente).
b.- Raspado de piel para estudio de dermatofitos:
Se obtiene por raspado con bisturí desde los bordes activos de las lesiones (placas). Para esto
se tracciona la piel y se raspa de los bordes rojizos y generalmente solevantados de las placas.
El material recolectado debe depositarse en un frasco o placa estéril.
c.- Pelo y escamas de cuero cabelludo:
Se raspa con bisturí el cuero cabelludo de las lesiones, y el material recolectado se deposita en
un frasco estéril, luego con una pinza depilatoria estéril se extrae el pelo de raíz, se corta una
porción de 2 cm (desde la raíz) y se deposita en el frasco.
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d.- Escamas de uñas:
La muestra se obtiene raspando con bisturí (con el filo hacia arriba) por debajo de la uña. Si la
uña está muy pegada a la piel y no hay detritus que raspar, entonces se raspa por encima de la
uña hasta llegar al lecho ungueal.
Nota: cuando a un paciente se le extrae una uña, se debe mandar la uña al laboratorio en un
frasco estéril y además se debe pasar una tórula por el lecho ungueal y también mandar ésta
para cultivo.
e.- Lesiones de mucosas, heridas sin secreción y otras lesiones que no permiten raspar:
Impregnar tórulas con suero fisiológico estéril y luego tomar la muestra de las superficies
comprometidas.
16.-Micosis pulmonar:
Es preferible tomar la muestra por aspiración o escobillaje endo-bronquial. En caso de no ser
posible se usarán muestras de expectoración, la que será recogida en envases estériles, en
ayuna y después que el paciente se haya efectuado un cuidadoso lavado bucal.
17.-Meningitis micótica:
 Se debe obtener de 2 a 3 ml de líquido cefalorraquídeo en condiciones de asepsia.
18.-Enteritis candidiácica:
 Se debe tomar una muestra de deposición la que debe ser recolectada en un frasco estéril.
19.-Otras muestras:
Líquidos tisulares provenientes de cavidades, secreción vaginal, orina, etc., deben aspirarse y
colocarse en tubos estériles. También se pueden tomar utilizando tórulas impregnadas en la
secreción.
20.-Coprocultivo corriente:
La muestra de deposición debe recolectarse antes de iniciar el tratamiento con antibióticos y lo
más precozmente en la etapa aguda de la enfermedad.
Las entero-bacterias patógenas disminuyen rápidamente su viabilidad al salir del intestino debido
al cambio de temperatura y pH. Para evitar la pérdida de las bacterias por este problema, las
muestras deben ser colocadas inmediatamente en un medio de transporte, siendo el elegido en
este caso el medio Cary y Blair.
Se deben tomar dos (2) muestras por paciente provenientes de evacuaciones diferentes (ver
anexo 4). Las muestras de deposición pueden obtenerse de dos formas distintas :
a.- Deposición recién emitida:
El paciente debe emitir la deposición en un recipiente muy limpio, sin que se contamine con
orina, desde el cual se recolecta, con la misma tórula del tubo para coprocultivo una fracción de
deposición que muestre mayor alteración (sangre, pus, mucosidad). Si la deposición es sólida,
tomar una cantidad de 1 a 2 gr. y si es liquida 3 a 4 cc, los que se introducen con la tórula en el
tubo, sumergiéndolas en el gel de transporte.
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b.- Tórula rectal:
Esta técnica es para ser utilizada especialmente en el niño menor. Si se va a obtener la muestra
por este procedimiento, la tórula debe humedecerse previamente con el medio de transporte
Cary y Blair (gel) y luego introducirla por el ano aproximadamente 2 cm. y simultáneamente
hacerla girar suavemente. Luego la tórula con la muestra así tomada se introduce en el tubo y se
sumerge en el gel de transporte.
En las muestras deben incluirse los trozos de epitelio o mucus con sangre.
 Una vez tomada la muestra y puesta en el gel de transporte, se deben rotular con el nombre
completo del paciente, la procedencia y numero de la muestra (I ó II) y enviar al laboratorio lo
antes posible. De no ser posible lo anterior, la muestra se puede mantener a temperatura
ambiente y sin sembrar por lo menos 24 horas.
 Es importante que se consigne en la orden del examen el diagnostico presuntivo del enfermo.
 La muestra no debe refrigerase.
c.- Coprocultivo para búsqueda de Vibrio:
En caso de sospecha de cólera, lo fundamental es indicar en la orden del examen el diagnóstico
presuntivo o de lo contrario avisar directamente al Tecnólogo Médico de la sección de
Bacteriología para que la muestra sea sembrada en los medios especiales para tal efecto.
La muestra en este caso se debe tomar igual que en el caso del coprocultivo corriente, pero solo
una muestra. También es posible recolectar la muestra de deposición en un frasco limpio si el
traslado al laboratorio no demora más de dos (2) horas.
21.- Secreción vaginal:
La paciente no debe haber tomado antibióticos o utilizado medicación vaginal en los 14 días
previos a la toma de muestra. Se debe dejar constancia en la orden, si la paciente estaba
menstruando cuando se tomó la muestra, porque ésta puede producir un olor desagradable al
adicionar el reactivo de KOH (test falso positivo).
 La iluminación debe ser adecuada, de tal forma de tener buena visión del cuello uterino.
 La muestra se toma con una tórula estéril previo uso de especulo vaginal sin lubricante, pero
si se requiere efecto lubricante, el especulo solo puede ser humedecido con suero fisiológico
tibio, ya que la mayoría de los lubricantes usuales son tóxicos para las bacterias.
 Luego se introduce la tórula en el canal endo-cervical y se rota en todos sentidos. Se aconseja
mantener la tórula en el endocervix por algunos segundos a objeto de favorecer la absorción
de microorganismos.
 A continuación, (solo si está pedida la investigación de trichomonas) con una sonda y jeringa
se introduce en la vagina suero fisiológico estéril (el que es entregado por el laboratorio) y
después de unos segundos se extrae y se vacía en el mismo tubo del suero fisiológico.
 Rotular cada tubo con el nombre completo de la paciente, procedencia y tipo de muestra.
 En la orden del examen especificar el tipo de cultivo que se requiere, como por ejemplo:
cultivo corriente, hongos, gonococo, etc. La muestra no debe refrigerarse y debe ser enviada
al laboratorio antes de los 30 minutos.
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NOTA: Si la toma de muestra está orientada a la investigación de gonococo, la muestra debe ser
enviada inmediatamente al laboratorio para ser sembrada en un medio especial, ya que esta
bacteria es muy lábil al medio ambiente. La misma precaución debe tenerse cuando se trata del
estudio de trichomonas.
22.- Secreción uretral:
 La muestra uretral debe tomarse no antes de una hora desde la última micción de orina.
 En la mujer se debe presionar la uretra hacia el orificio para extraer el exudado (el operador
debe usar guantes estériles).
 Se usa una tórula estéril con medio de transporte Stuart para la obtención de las muestras.
 En el hombre se recoge directamente la secreción purulenta con una tórula estéril (fina). Si no
hay descarga uretral aparente, se retrae el prepucio, se limpia el meato urinario con gasa
estéril y se presiona el conducto uretral con un movimiento desde atrás hacia el glande, luego
se procede a recoger con una tórula estéril la secreción. Si no hubiera secreción, se debe
introducir una tórula muy fina unos 2 cm. aproximadamente por la uretra y rotar en forma
suave.
 Rotular la muestra con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Y en
la orden del examen especificar el tipo de cultivo que se requiere, como por ejemplo: cultivo
corriente, hongos, gonococo, etc.
 La muestra no debe refrigerarse y debe ser enviada al laboratorio antes de 30 min.
NOTA: Si la toma de muestra está orientada a la investigación de gonococo, la muestra debe ser
enviada inmediatamente al laboratorio para ser sembrada en un medio especial, ya que esta
bacteria es muy lábil al medio ambiente.
Si la intención es el investigar trichomonas (en el hombre), se debe tomar una orina de 1er chorro
en un tubo estéril y debe ser enviado inmediatamente al laboratorio.
23.- Muestra ano rectal:
Este tipo de muestra debe tomarse en todos los pacientes en que se sospeche diseminación
hematógena gonocócica, en homosexuales y en mujeres. Se ha comprobado que alrededor del
10 % de los casos de gonorrea en mujeres, se pesquisan solamente en la muestra de este
origen, sobre todo cuando ha habido tratamiento antibiótico previo.
 Para tomar esta muestra, se introduce la tórula en el canal anal aproximadamente 2 cm. y se
rota.- Si la tórula sale contaminada con deposición, se descarta y se toma una nueva muestra.
 Rotular la muestra con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra
 También se debe especificar el tipo de cultivo que se está solicitando, por ejemplo: cultivo de
gonococo
 La muestra no debe refrigerarse y debe ser enviada al laboratorio antes de 30 min.
24.- Espermiograma:
Para este examen se debe solicitar la fecha de toma de muestra y las indicaciones directamente
al tecnólogo médico de la sección de Bacteriología (ver anexo 5)
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25.- Leucocitos fecales:
Muestra: Con un palito tomar una porción de la deposición (la de peor aspecto), depositarla en
un frasco pequeño que esté limpio y seco (frasco entregado por el laboratorio).
Enviar al laboratorio lo antes posible.
Colocar todos los datos del paciente en el frasco.
26.- Rotavirus y Adenovirus:
Muestra: La muestra de deposición debe ser colectada desde el pañal o desde el recipiente en
que se evacuó la deposición y debe ser colocada en un frasco limpio y seco (frasco entregado
por el laboratorio). No se deben agregar preservantes ni detergentes.
Enviar al laboratorio lo antes posible.
Se recomienda mantener y transportar las muestras refrigeradas (2º C a 8 º C).
27.- Eosinófilos nasales:
Muestra: La toma de muestra se realiza utilizando 2 tórulas estériles y 2 portaobjetos.
Se introduce una tórula en una fosa nasal, en dirección paralela al piso de ésta, se frota suave
dando un giro para que la tórula se empape con la secreción nasal. Luego se retira y se frota
sobre un portaobjeto de manera de hacer un extendido.
 Con la otra tórula se debe realizar el mismo procedimiento pero en la otra fosa nasal.
 Rotular los portaobjetos con el nombre del paciente e identificando la muestra que
corresponde a la fosa izquierda y derecha.
28.- Sangre Total (Suero) para V.D.R.L. :(Tubo mediano c/tapa color rojo y/o amarillo)
Muestra: Para su obtención se debe tomar entre 4 y 5 ml. de sangre, para un tubo plástico sin
anticoagulante.
Retirar la aguja y dejar escurrir la sangre por las paredes internas del tubo, sin producir espuma
ni adicionar la que hay en la jeringa, tapar, no agitar y dejar en posición vertical hasta que
coagule. La observación de esta metódica garantiza que se evitará la hemólisis.
La lipemia interfiere en el test.
29.- Exámenes derivados para estudio Bacteriológico:
Para este tipo de prestaciones se debe solicitar instrucciones y en algunos casos formularios
especiales en la secretaria del laboratorio.
30.- Hisopado Nasofaríngeo - Aspirado Nasofaríngeo:
Este tipo de muestra se utiliza para realizar estudios de inmunofluorescencia para la detección
de virus respiratorios y Bordetella pertussis.
La muestra debe ser tomada por profesionales entrenados (Enfermera o Matrona).
Todo el material a utilizar en el procedimiento debe estar estéril de un solo uso.
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a.- Hisopado Nasofaríngeo para virus respiratorios:
 Se rechazarán todas aquellas muestras con leche, medicamentos oleosos o pigmentados por
interferir en la técnica de inmunofluorescencia (IF).
 Por ser la IF una técnica cara y laboriosa, esta muestra debe tomarse solo en aquellos
pacientes adultos o niños, hospitalizados, con diagnóstico clínico de IRA cuya evolución no
supere los 5 días del inicio del cuadro clínico (no se puede tomar en pacientes crónicos).






Es necesario que la Enfermera encargada de la toma de muestra se coordine con el área de
recepción del laboratorio para la entrega de la solución de buffer y el hisopo nasofaríngeo.
Procedimiento:
Abrir el sobre que contiene el hisopo.
Medir la cantidad de hisopo que se va a introducir en la fosa nasal, midiendo desde la aleta
nasal hasta el lóbulo de la oreja.
Insertar el hisopo hasta el punto calculado anteriormente y rotar.
Introducir el hisopo en el tubo con buffer y quebrar la varilla, cerrar.
Rotular el tubo con el nombre completo del paciente y procedencia. Enviar rápidamente al
laboratorio en baño de hielo o envuelto en una unidad refrigerante.
En caso de IRA Grave, la muestra se debe acompañar del formulario especial “Notificación de
IRA Grave”.
Las muestras deben ser tomadas antes de las 9:00 a.m., de tal manera que lleguen temprano
al laboratorio para ser procesadas durante el día.
Durante la campaña de invierno el laboratorio evaluará la posibilidad de realizar la técnica de
inmunofluorescencia durante los fines de semana.
b.- Aspirado Nasofaríngeo para Bordetella pertussis:
El paciente debe estar con un ayuno mínimo de 6 horas antes de la toma de muestra. A la
muestra de aspirado nasofaríngeo, no se le debe agregar buffer y debe ser transportada
inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente.
Nota: Lo ideal es que la muestra sea tomada temprano en la mañana
10. Registros:
- Sistema Informático Hospital de Los Andes
- Sistema Informático Laboratorio Clínico Hospital de los Andes
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11. Indicadores de medición definidos en su aplicación:
Título
Descripción
Racionalidad
FICHA INDICADORES CLINICOS
APL1.2 Manual de Toma de Muestra : Laboratorio Clínico
Muestras coaguladas control TACO.
y La activación de la cascada de coagulación durante la toma de muestra, la
inhabilita para su procesamiento. Este indicador refleja la calidad del proceso
de toma de muestra para este examen. Solo muestras tomadas en el Cae.
Numerador
Número de muestras coaguladas de exámenes para control de TACO
recibidas desde CAE.
Denominador
Número total de muestras recibidas
Fuente de datos
Registro manual de procesamiento las muestras.
Periodicidad
Mensual
Umbrales
/ Umbral de cumplimiento:
Criterios
de Optimo: 0.00 – 3.00 %
interpretación de Aceptable: 3.10 – 5.00 %
resultados
Crítico. 5.10 – 100.00 %
Áreas
de Toma de Muestra Consultorio de Especialidades (CAE)
aplicación
Responsables
Jefe de Laboratorio Clínico.
Referencias
GUIA CLINICA DE TRATAMIENTO ANTICOAGULANTE ORAL
Bibliográficas
200.72.142.194/chp/.../GuíaClínicaTratamientoAnticoagulanteOral.p..
Título
Descripción
Racionalidad
Hemocultivos contaminados Pediatría
y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a
un problema en la técnica de toma de muestra del examen.
Fuente de datos: registro manual de procesamiento las muestras.
Numerador
Denominador
Fuente de datos
Periodicidad
Umbrales
/
Criterios
de
interpretación de
resultados
Numero de muestras contaminadas
Numero total de muestras
Trimestral
Umbral de cumplimiento:
Optimo: 0 – 3.00 %
Aceptable: 3.10 – 4.00 %
Crítico: 4.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio Clínico: Pediatría.
aplicación
Responsables
Referencias
PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA
Bibliográficas
www.seimc.org/documentos/protocolos/.../cap3a.htm - España
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Título
Descripción
Racionalidad
Errores pre-analíticos Servicio de Urgencia
y Este indicador mide el conjunto de errores pre-analíticos detectados a las
muestras provenientes del servicio de urgencia, recibidas en todas las
secciones del laboratorio, que incluyen principalmente errores de rotulación,
muestras coaguladas, escasas o sobre nivel.
Numerador
Número de muestras con errores pre-analíticos
Denominador
Número total de muestras
Fuente de datos
Registro en Formulario de rechazo de muestras.
Periodicidad
Mensual
Umbrales
/ Umbral de cumplimiento:
Criterios
de Optimo: 0.00 – 3.00 %
interpretación de Aceptable: 3.10 – 5.00 %
resultados
Crítico. 5.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio de Urgencia.
aplicación
Responsables
Referencias
Evaluación de incidencias pre-analíticas en un laboratorio
Bibliográficas
www.sediglac.org/congresos/14congreso-10/.../MoralElicheA_art.pdf
Título
Descripción
Racionalidad
Hemocultivos contaminados UPC
Numerador
Denominador
Fuente de datos
Periodicidad
Umbrales
/
Criterios
de
interpretación de
resultados
Número de muestras contaminadas
Trimestral
Optimo: 0.00 – 3.00 %
Aceptable: 3.10 – 4.00 %
Crítico. 4.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio Clínico: Unidad de pacientes críticos (UPC)
aplicación
Responsables
Referencias
Bibliográficas
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Título
Descripción
Racionalidad
Hemocultivos contaminados Medicina
Numerador
Denominador
Fuente de datos
Periodicidad
Umbrales
/
Criterios
de
interpretación de
resultados
Número de muestras contaminadas en el servicio de medicina
Número total de muestras tomadas en el servicio de medicina
Trimestral
Optimo: 0.00 – 3.00 %
Aceptable: 3.10 – 4.00 %
Crítico. 4.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio Clínico: Medicina
aplicación
Responsables
Referencias
Bibliográficas
Título
Descripción
Racionalidad
Urocultivos contaminados UPC
Numerador
Denominador
Fuente de datos
Periodicidad
Umbrales
/
Criterios
de
interpretación de
resultados
Trimestral
Optimo: 0.00 – 3.00 %
Aceptable: 3.10 – 4.00 %
Crítico. 4.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio Clínico: Unidad de Pacientes Críticos (UPC)
aplicación
Responsables
Anexos
Formulario de registro de avisos de resultados críticos de exámenes.
Referencias
Rol del Laboratorio de Microbiología en el Control de infecciones.
Bibliográficas
www.sochinf.cl/...microbiologia.../Rol_del_Laboratorio_de_microbi...
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Título
Descripción
Racionalidad
Urocultivos contaminados Medicina
Numerador
Denominador
Fuente de datos
Periodicidad
Umbrales
/
Criterios
de
interpretación de
resultados
Registro manual de procesamiento las muestras
Trimestral
Optimo: 0.00 – 3.00 %
Aceptable: 3.10 – 4.00 %
Crítico. 4.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio Clínico: Medicina
aplicación
Responsables
Referencias
Bibliográficas
www.sochinf.cl/...microbiologia.../Rol_del_Laboratorio_de_microbi..
Título
Descripción
Racionalidad
Urocultivos contaminados Pediatría
Numerador
Denominador
Fuente de datos
Periodicidad
Umbrales
/
Criterios
de
interpretación de
resultados
Trimestral
Optimo: 0.00 – 3.00 %
Aceptable: 3.10 – 4.00 %
Crítico. 4.10 – 100.00 %
Áreas
de Servicio Clínico: Pediatría.
aplicación
Responsables
Referencias
Bibliográficas
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12. Referencias bibliográficas:
1. Manual de Toma de Muestra, Edición 01, 10 enero 2006.
2. Obtención de muestras sanguíneas de calidad analítica, mejoría continua de la etapa preanalítica, Luis Morán Villatoro, 2001.
3. Pre-analítica, María Dolores Vivancos Sanz Licenciada en Ciencias Químicas, especialidad
Bioquímica. 1996.
4. Apuntes curso de “Infecciones Intrahospitalarias para profesionales de Laboratorio Clínico”, U
de Valparaíso, Octubre 2002.
5. Reglamento de Laboratorios, Decreto Nº 20, Ministerio de Salud, Subsecretaria de Salud
Pública, 28 Abril del 2012. Chile.
13. Responsable de calidad:
El profesional encargado de la toma de muestras será el responsable de la difusión de esta
norma y de velar por su cumplimiento, así como de proponer las actualizaciones y modificaciones
pertinentes.
14. Distribución:






Servicios Clínicos
Servicio de Urgencia
Toma de Muestra CAE
Toma de muestra Consultorios
Enfermera IAAS
Oficina de Calidad y Seguridad del Paciente
15. Anexos
Anexo 1: Listado de Exámenes de Urgencia ......................................................................................
Anexo 2: Listado de Exámenes de Laboratorio: .................................................................................
Anexo 3: Observaciones de los Valores de referencia .......................................................................
Anexo 4: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Coprocultivo. ............................
Anexo 5: Instructivo de preparación y toma de muestra del examen Espermiograma ........................
Anexo 6: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Baciloscopia de expectoración .
Anexo 7: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen de sangre oculta en deposición
(test de weber) ...................................................................................................................................
Anexo 8: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen parasitológico seriado de
deposiciones. ..................................................................................................................................56
Anexo 9: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen test de Graham .....................57
Anexo 10: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Clearence de Creatinina
(orina 24 horas) ...............................................................................................................................58
Anexo 11: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Test de Tolerancia a la
Glucosa 59
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LABORATORIO CLINICO
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Fecha : 05.MAY.2014
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Anexo 12: Instructivo de Preparación y toma de muestra del Análisis de Hormonas Reproductivas60
Anexo 13: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen orina completa ...................61
Anexo 14: Instructivo de Preparación y Toma de muestra de análisis de sangre sin Triglicéridos ...62
Anexo 15: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra de análisis de sangre con Triglicéridos..63
Anexo 16: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en mujeres: .......64
Anexo 17: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en hombres: ......65
Anexo 18: Exámenes derivados: .....................................................................................................66
Anexo 19: Código de barras: ...........................................................................................................68
Anexo 20: Solicitud de examen de paciente hospitalizado ..............................................................69
Anexo 21: Almacenamiento transporte y observaciones para toma de muestra: .............................70
Anexo 22: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen de Rotavirus y
adenovirus……………………………………………………………………………………………………72
Anexo 23: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen de Leucocitos
fecales……………………………………………………………………………………………………...…73
Anexo 24: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen Clostridium
Difficile……………………………………………………………………………………………………..…74
Anexo 25: Instructivo de Preparación y Toma de muestra de Baciloscopías en orina…75
MARIA ALEJANDRA CARVALLO GONZALEZ
DIRECTORA
HOSPITAL“SAN JUAN DE DIOS” DE LOS ANDES
MANUAL
LABORATORIO CLINICO
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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Revisión
Registro de Modificaciones
Nº
Detalle
Creación
01
Memorando que
dispone (si
corresponde)
Nº
Fecha
10. Enero.
2006
Revisión y actualización
24. Febrero
2010
28. Julio.
2010
02
03
04.Enero 2012
05 Mayo 2014
04
05
MANUAL
LABORATORIO CLINICO
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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ANEXO 1: Listado de Exámenes de Urgencia
Amilasa
Orina Completa y Urocultivo
Lipasa
(para pacientes con sonda)
LCR: Químico, cultivo y citológico
Flujo vaginal (solo en agresión sexual –
urgencia mater)
Test de Clamidia (solo en agresión
sexual – urgencia mater)
Cultivo de secreciones y coprocultivos
Proteína C Reactiva
Perfil hepático: GOT, GPT, Bilirrubina y
Fosfatasas alcalinas.
Enzimas cardíacas: LDH Total, CK –total,
CK- MB, Troponina.
Citológico y Citoquímico de Líquidos
biológicos
pH y Gases en sangre arterial y venosa
Electrolitos plasmáticos
Creatinina
Calcio
Hematocrito
Recuento glóbulos blancos
Histograma y se guarda frotis para
hemograma (PED-MED-PENSIO)
Tiempo de Protrombina
Glucosa
TTPK
Bilirrubina de Recién nacidos
Urea
Cuerpos Cetónicos y Amonio
Colinesterasa plasmática
Dímero D
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
ANEXO 2: Listado de Exámenes de Laboratorio:
Código Examen
Sección
0305008 Antiestreptolisina O
Valor de Unidad
referencia
Hombres
Mujeres
Tipo de
muestra
Tiempo
de
respuesta
hábil
Tiempo
de
respuesta
Urgencia
48 hrs
---
Química
Hasta 200
UI/ml
STOT
Química
0.0 - 4.0
ng/ml
STOT
(Látex)
0305070 Antígeno prostático
---
especifico
0306056
Acarotest
Parasito
Negativo
---
Raspado
72 hrs
---
0302005
Acido úrico
Química
3.5 - 7.2
mg/dl
STOT
48 hrs
---
48 hrs
2.6 - 6.0
0309004
Acido Úrico,
Química
150 - 990
mg/24 hrs
OR24
Química
50 - 100
ug/ml
STOT
uricosuria
0302035V Acido
valproico
---
plasmático
0302008
Amilasa
Química
69 - 110
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
0309006
Amilasuria
Química
10 - 481
U/L
ORIN
48 hrs
3 hrs
0302010
Amonio
Química
11 - 32
ug/dl
SHEP en
48 hrs
3 hrs
Niños 15 -56
hielo
Química
Negativo
SEDT
48 hrs
3 hrs
Química
3.8 - 5.0
g/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
0309028 Albuminuria 24 hrs
Química
10 - 100
mg/24 hrs
OR24
48 hrs
3 hrs
0309028
Química
Negativo
mg/dl
ORIN
48 hrs
3 hrs
Química
Ver
UI/ml
STOT
72 hrs
---
---
Anticuerpos
anti
VIH
0302060A Albúmina
Albuminuria
aislada
0305003 Alfa fetopoteinas
observacio
nes (1)
0306002
Baciloscopia
TBC
Negativo
---
DESG
72 hrs
---
Química
Negativo
---
ORIN
48 hrs
---
Bilirrubina total
Química
0.3 - 1.0
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
Bilirrubina directa
Química
Hasta 0.3
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
Bilirrubina indirecta
Química
0.3 - 0.8
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
0308001 Benedict
cuerpos
reductores
0302012
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
Página 40 de 77
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
0302012
Bilirrubina RN
Química
Varia con
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
las horas
de nacido
0302015
Calcio
Química
8.4 - 10.1
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
0309008
Calciuria
Química
42 - 353
mg/24 hrs
OR24
48 hrs
---
Química
8.0 - 12.0
ug/ml
STOT
Química
250 - 450
ug/dl
STOT
48 hrs
---
150 - 300
ug/dl
25 - 55
%
Química
Negativo
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
UMT
Negativo
---
STOT
48 hrs
---
0302032C Cloro
Química
95 - 105
mEq/l
STOT
48 hrs
3 hrs
0309012C Cloro orina
Química
55 - 125
mEq/L
ORIN
48 hrs
---
Química
110 - 250
mEq/24
OR24
48 hrs
---
0302035C Carbamazepina
---
plasmática
Capacidad
de
fijación del Fierro
0301029 T.I.B.C.
U.I.B.C.
% saturación
0302001
Cetonemia
0306061
Chagas,
anticuerpos anti
aislada
0309012C Cloro urinario
hrs
8006060
Coeficiente
Química
Hasta 30
mg/g
ORIN
48 hrs
---
Microalbuminuria/
creatininuria
0302067
Colesterol Total
Química
Hasta 200
mg/dl
STOT
48 hrs
---
0302068
Colesterol HDL
Química
45 - 65
mg/dl
STOT
48 hrs
---
35 - 55
---
Colesterol LDL
Química
Hasta 150
mg/dl
STOT
48 hrs
---
0302021
Colinesterasa
Química
4620–1500
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
---
DEPO/Cary
72 – 96 hrs
---
DEPO/Cary
48 - 72
---
Blair
hrs
3930-0800
0306007
Coprocultivo
+
Bacterio
Negativo
antibiograma
0306007
Coprocultivo para
Vibrio
Blair
Bacterio
Negativo
---
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
0302001 Cuerpos cetónicos,
Química
Negativo
STOT
48 hrs
3 hrs
Química
Negativo
ORIN
48 hrs
---
Química
0.8 - 1.3
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
g/24 hrs
OR24
48 hrs
---
ml/min.
STOT y
48 hrs
---
cetonemia
0309011 Cuerpos cetónicos,
cetonuria
0302023
Creatinina
0.6 - 1.0
0309010
Creatininuria
Química
0.6 - 2.5
0.6 - 1.5
0302024
Clearence
de
Química
61 - 166
creatinina
OR24
0301014
Coombs directo
UMT
Negativo
---
STOT
48 hrs
0301050
Coombs indirecto
UMT
Negativo
---
STOT
0302026
CK-Total
Química
< 190
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
48 hrs
---
72 - 96 hrs
---
< 167
0302025
CK-MB
Química
Hasta 25 o
6% del CK
Total
---
Cristales
en
Química
Negativo
---
Cultivo corriente +
Bacterio
Negativo
---
liquido articular
0306008
antibiograma
0306008+
Fluido
biológico
Cultivo LCR
Bacterio
Negativo
---
LCR
72 - 96 hrs
---
0306017
Cultivo de Hongos
Bacterio
Negativo
---
Raspado
30 días
---
0306021
Cultivo de
Bacterio
Negativo
---
LCR
72 - 96 hrs
---
3 hrs
0306021
meningococo
0301027
Dímero D
Hemato
Corte 500
ug/ml
SCIT
48 hrs
0306004
Directo de
Bacterio
Negativo
---
Raspado
72 hrs
Hongos
0302032
Electrolitos
plasmáticos
---
de piel
Química
Ver Sodio,
Potasio y
Cloro
mEq/L
STOT
48 hrs
3 hrs
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
0309012
Electrolitos
Química
urinarios
Ver Sodio,
mEq/24
Potasio y
hrs
OR24
48 hrs
---
Liquido
3 días
---
Cloro
0308029
Espermiograma
Bacterio
Ver
---
observacio
seminal
nes (2)
0303030
Estradiol
Química
Ver
pg./ml
STOT
72 hrs
---
---
Sec.
48 hrs
---
observacio
nes (3)
0306005
Eosinofilos
Bacterio
Negativo
nasales
0302035F
Fenitoína
Nasal
Química
10 - 20
ug./ml
STOT
72 hrs
---
Química
15 - 40
ug./ml
STOT
72 hrs
---
Química
Hasta 20
UI/ml
STOT
48 hrs
---
plasmática
0302035P Fenobarbital
plasmático
0305019
Factor
reumatoideo
0301028
Fierro Sérico
Química
60 - 160
ug/dl
STOT
48 hrs
---
0301021
Fibrinógeno
Hemato
200 - 400
mg/dl
SCIT
48 hrs
---
0301026
Ferritina
Química
Ver
ng/ml
STOT
48 hrs
---
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
mg/dl
STOT
48 hrs
---
observacio
nes (4)
0302040
Fosfatasas
Química
alcalinas
0302042
Fósforo
50 - 136
Niños 35-300
Química
2.7 - 4.5
Niños 4.5-5.5
0309015
Fosforo urinario
Química
0.4 - 1.3
g/24 hrs
OR24
48 hrs
---
0303015
FSH (hormona
Química
Ver
mUI/ml
STOT
72 hrs
---
U/L
STOT
48 hrs
---
---
SHEP en
48 hrs
3 hrs
folículo
observacio
estimulante)
0302045
Gama-GT
nes (5)
Química
8 - 61
5 - 36
0302046
Gases en sangre
Química
Ver
observacio
nes (6)
hielo
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
---
Globulinas
Química
1.9 - 3.5
g/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
0302047
Glucosa
Química
55 - 105
mg/dl
SFLO
48 hrs
3 hrs
0302047
Glucosa RN
Química
40 - 60
mg/dl
SHEP
48 hrs
3 hrs
0302048
Glucosa, test de
Química
Ver
mg/dl
SFLO
48 hrs
---
tolerancia
observacio
nes (7)
0302048
Glucosa
post
Química
90 - 120
mg/dl
SFLO
48 hrs
---
0309016
Glucosuria 24 hrs
Química
0.1 - 0.5
g/24 hrs
OR24
48 hrs
---
0303014
Gonadotrofina
Química
mUI/ml
STOT
48 hrs
---
prandial
corionica
Ver
observacion
es (8)
0301034
Grupo y Rh
8006101
Hemocultivo
+
UMT
---
---
STOT
48 hrs
3 hrs
Bacterio
Negativo
---
Sangre
6 días
---
Hemato
40 - 52
%
SEDT
48 hrs
3 hrs
g/dl
SEDT
48 hrs
3 hrs
---
SEDT
48 hrs
---
DEPO
48 hrs
---
%
SHEP
72 hrs
---
antibiograma
0301036
Hematocrito
37 - 47
0301038
Hemoglobina
Hemato
13.5 - 18.0
12.0 - 16.0
0301045
Hemograma-VHS
Hemato
Ver
observacio
nes (9)
0308004
Hemorragias
Química
Negativo
Química
4.8 - 6.0
ocultas (Weber)
0301041
Hemoglobina
glicosilada
8006117
Histograma
0303017
Insulina ayunas
0303017
Insulina
post
carga
Isoinmunizacion
0301050
Hemato
Ver recuento
de eritrocitos,
recuento de
leucocitos,
recuento de
plaquetas,
hematocrito y
hemoglobina
Química
1.9 a 23.0
---
SEDT
48 hrs
3 hrs
uU/ml
STOT
72 hrs
---
Química
Hasta 60.0
uU/ml
STOT
72 hrs
UMT
Negativo
---
STOT
---
3 hrs
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
0302030
LDH
(deshidrogenasa
láctica)
Química
105 - 235
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
mUI/ml
STOT
72 hrs
---
U/l
STOT
48 hrs
3 hrs
mEq/L
STOT
5 días
---
Liquido
amniótico
48 hrs
---
LCR
48 hrs
3 hrs
Liquido
pleural
24 hrs
3 hrs
Liquido
sinovial
48 hrs
3 hrs
---
DEPO
48 hrs
---
105 - 230
Niños135-395
0303016
LH (hormona
luteinizante)
0302053
Lipasa
0302055
Litio, nivel
plasmático
Liquido amniótico
8006113
RN 125 - 765
Ver
observacio
nes (10)
Química 0 - 60
Química
Química
0.6 - 1.2
Química
8006112
LCR Citológico y Química
citoquímico
8006112
0308005
Liquido
pleural Química
Citológico
y
citoquímico
Liquido sinovial o Química
articular Citológico
y Citoquímico
Leucocitos fecales Bacterio
Ver
observacio
nes (11)
Ver
observacio
nes (12)
Ver
observacio
nes (13)
Ver
observacio
nes (14)
Negativo
0309013
Microalbuminuria
Química
Hasta 30
Mg/24 hs
OR24
48 hrs
---
0306036
Monotest
Hemato
Negativo
mg/dl
STOT
48 hrs
---
0302057
Nitrógeno ureico
Química
7 - 18
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
0309020
Nitrógeno
ureico Química
urinario
pH deposición
Química
7.0 - 20.0
g/24 hrs
OR24
48 hrs
---
DEPO
48 hrs
---
0306059
Parasitológico
Seriado
Parasito
---
DEPO/PAF
7 días
---
0302034
Perfil Lipídico
Química
---
STOT
48 hrs
------
0305031
Proteína C reactiva Química
No se
observa
elementos
parasitarios
Ver
Colesterol
total,
colesterol
HDL,
colesterol
LDL y
triglicéridos
0.00 - 9.00
mg/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
g/dl
STOT
48 hrs
---
8006112
0308006
Variable
Niños0.0-9.0
0302060P Proteínas totales
Química
RN 0. -15.0
6.0 - 8.0
Edición :05
Fecha : 05.MAY.2014
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MANUAL
LABORATORIO CLINICO
0309028
Proteinuria 24 hrs
Química
10 - 100
mg/24 hrs
OR24
48 hrs
3 hrs
0309029
Proteína de Bence
Jones
Perfil Hepático
Química
Negativa
---
OR24
48 hrs
---
Química
Ver
Bilirrubina
completa,
GOT, GPT
fosfatasas
alcalinas
3.5 - 5.0
---
STOT
48 hrs
3 hrs
mEq/L
STOT
48 hrs
3 hrs
8006115
0302032P Potasio
Química
Niños 3.2-5.5
0309012P Potasio orina
aislada
0309012P Potasio urinario
Química
12 - 62
mEq/L
ORIN
48 hrs
---
Química
40 - 80
mEq/24
OR24
48 hrs
---
hrs
0301027
0303020
Producto de
degradación del
fibrinógeno FDP
Prolactina
Hemato
Hasta 0.25
Ug/ml
SCIT
48 hrs
---
Química
H 2.2 - 25.0
ng./ml
STOT
72 hrs
---
Ver
observacio
nes (15)
Negativo
ng./ml
STOT
72 hrs
---
---
STOT
---
3 hrs
---
STOT
48 hrs
---
Hemato
Negativo
Ver
observacio
nes (16)
0 - 100
mm3
SEDT
48 hrs
---
Hemato
100 - 400
mm3
SEDT
48 hrs
---
Hemato
4.6 - 6.2
mm3
SEDT
48 hrs
3 hrs
mm3
SEDT
48 hrs
3 hrs
mm3
SEDT
48 hrs
3 hrs
M1.9 - 35.0
0303019
Progesterona
---
Prueba de
compatibilidad
Unidad de Sangre
Reacciones de
aglutinación,
pruebas tíficas,
Widal
Recuento de
basófilos
Recuento de
eosinófilos
Recuento de
eritrocitos
8006116
0301062
0301063
0301064
0301065
0301067
0301068
0302059
Química
UMT
Bacterio
4.2 - 5.4
Recuento de
leucocitos
Hemato
4.000 -
Recuento de
plaquetas
Hemato
Recuento de
reticulocitos
Relación
Albúmina/Globulin
as
Hemato
0.5 - 1.5
%
SEDT
48 hrs
---
Química
1.9 - 3.5
---
STOT
48 hrs
---
10.000
140.000 450.000
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Fecha : 05.MAY.2014
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0306070
Rotavirus
Bacterio
Negativo
---
DEPO
48 hrs
---
8006100
Screening
metabólico en
orina
Química
Ver test
cloruro
férrico, test
2,4
dinitrofenilh
idrazina
135 - 145
---
ORIN
48hrs
---
mEq/L
STOT
48 hrs
3 hrs
0309012S Sodio orina aislada Química
20 - 110
mEq/L
ORIN
48 hrs
---
0309012S Sodio urinario
80 - 180
mEq/24
OR24
48 hrs
---
0302032S Sodio
Química
Química
hrs
Química
30 - 65
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
Química
15 - 37
U/L
STOT
48 hrs
3 hrs
0302027
Transaminasa
pirúvica (GPT,
ALAT)
Transaminasa
oxalacética (GOT,
ASAT)
Troponina
Química
Hasta 0.01
ug/dl
STOT
48 hrs
3 hrs
0306051
Test de Graham
Parasito
Negativo
---
7 días
---
---
Tinción para
Cryptosporidium
Triglicéridos
Parasito
Negativo
---
Cinta
scotch
DEPO/PAF
10 días
---
Química
Hasta 150
mg/dl
STOT
48 hrs
---
Negativo
---
48 hrs
---
87 - 178
ng/dl
ORIN o
FLUJO
STOT
72 hrs
---
0302063
0302063
0302064
0306004
0303028
Trichomonas
Bacterio
directo al fresco
T3 (triyodotironina) Química
0303027 T4
(tetrayodotironina)
0303026 T4 L
(tetrayodotironina
libre)
0303024 TSH (hormona
tiroestimulante)
0308001 Test de Benedict
Química
6.09 -12.23
ug/dl
STOT
72 hrs
---
Química
0.61 - 1.12
ng/dl
STOT
72 hrs
---
Química
0.34 - 5.60
uU/ml
STOT
72 hrs
---
Química
Negativo
---
DEPO/ORIN
48 hrs
---
8006100 Test 2,4
dinitrofenilhidrazina
0309018 Test cloruro férrico
Química
Negativo
---
ORIN
48 hrs
---
Química
Negativo
---
ORIN
48 hrs
---
0301059 Tiempo de
protrombina
0301072 Tiempo de Sangría
Hemato
80 - 100
%
SCIT
48 hrs
3 hrs
Min
Corte
antebrazo
48 hrs
---
Seg
SCIT
48 hrs
3 hrs
---
Fluido
biológico
48 hrs
---
UMT
Método:
IVY : 2 - 9
0301085 Tiempo parcial de
Tromboplastina
TTPK
0306005 Tinción de Gram
Hemato
22.0 - 32.0
Bacterio
Negativo
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0306005 Tinción de Gram en
LCR
0306005 Tinción para
Campylobacter
0302057 Urea
0306011 Urocultivo
Bacterio
Negativo
---
Bacterio
Negativo
---
Química
15 - 39
mg/dl
Bacterio
Negativo
---
LCR
3 hrs
DEPO/Cary 72 - 96 hrs
Blair
STOT
48 hrs
ORIN
48 - 72
3 hrs
--3 hrs
---
hrs
0306042 V.D.R.L.
Bacterio
No
---
STOT
Reactivo
Hasta
---
8 días
0302023ª Velocidad de
Filtración
Glomerular
0301086 Velocidad de
sedimentación VHS
Química
> 60
ml/min
STOT
48 hrs
---
Hemato
Menor de 10
mm/hr.
SEDT
48 hrs
---
0309022 Orina completa
ORIN
48 hrs
3 hrs
Densidad
Química Ver densidad,
nitritos,
leucócitos,
pH,
proteinuria
aislada,
glucosuria
aislada,
cuerpos
cetonicos,
urobilinógeno,
bilirrubina,
hematies.
Química 1.001- 1.035
ORIN
48 hrs
3 hrs
Nitritos
Química
Negativo
ORIN
48 hrs
3 hrs
Leucocitos
Química
0 - 10
ORIN
48 hrs
3 hrs
pH
Química
4.6 - 8.0
ORIN
48 hrs
3 hrs
Proteinuria aislada
Química
Negativa
mg/dl
ORIN
48 hrs
3 hrs
Glucosuria aislada
Química
Negativo
mg/dl
ORIN
48 hrs
3 hrs
Cuerpos cetonicos
Química
Negativo
ORIN
48 hrs
3 hrs
Urobilinogeno
Química
0.2 - 1.0
mg/dl
ORIN
48 hrs
3 hrs
Bilirrubina
Química
Negativo
mg/dl
ORIN
48 hrs
3 hrs
Hematíes
Química
0 - 5
cel/ul
ORIN
48 hrs
3 hrs
Menor de 30
Cel/ul
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ANEXO 3: Observaciones de los Valores de referencia
1.- Alfa fetoproteinas:
Varón
0 - 4.0
UI/ml
Mujer no embarazada 0 - 4.0
UI/ml
Mujer embarazada
varía según semana de gestación
2.- Espermiograma (líquido seminal) (OMS):
Volumen
≥ 2.0
pH
7.2 - 8.0
Concentración
≥ 20
Concentración Total
≥ 40
Motilidad A
≥ 25
Motilidad A+B
≥ 50
Células redondas
≤5
Vitalidad (vivos)
≥ 75
Normalidad Morfología OMS
≥ 30
Normalidad Morfología Estricta (Kruger) ≥ 14
3.- Estradiol:
Varón:
Mujer :
Pick preovulatorio
Fase lutea
Fase folicular
Menopausia
4.- Ferritina:
Hombre 18 a 30 años
Hombre 31 a 60 años
Mujer pre menopáusica
Mujer postmenopáusica
5.- FSH:
Varón:
Mujer:
Pick ovulatorio
1era mitad ciclo folicular
2da mitad ciclo folicular
Fase lútea
Menopausia
ml
millones/ml
millones
%
%
millones/ml
%
% formas normales
% formas normales
menor de 62 pg/ml
93 - 575
43 - 241
18 - 147
menor de 58
18.7 - 323
16.4 - 194
6.9 - 283
14.0 - 233
pg/ml
pg/ml
pg/ml
pg/ml
ng/ml
ng/ml
ng/ml
ng/ml
1.7 - 12.0
mUI/ml
6.3 - 24.0
3.9 - 12.0
2.9 - 9.0
1.5 - 7.0
17.0 - 95.0
mUI/ml
mUI/ml
mUI/ml
mUI/ml
mUI/ml
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6.- Gases en sangre:
pH
pCO2
pO2
Saturación de oxigeno
[ H+ ]
Base buffer
Bicarbonato estándar
Bicarbonato actual
CO2 total
Exceso de base
Venoso
7,31 - 7,42
39 - 55
30 - 50
60 - 85
40
44 - 48
21 - 25
22 - 30
23 - 29
+/-
2,0
Arterial
7,34 - 7,45
32 - 45
mm Hg
75 - 100
mm Hg
95 - 98
%
nmol/l
mmol/l
mmol/l
mmol/l
20 - 24
mmol/l
mmol/l
7.- Glucosa, curva de tolerancia a la glucosa
Basal
55 - 105
A las 2 horas post carga (75 g de glucosa)
90 - 140
mg/dl
mg/dl
8.- Gonadotrofina corionica :
Varón:
menos de 3.0
mUI/ml
Mujeres cíclicas
menor de 4.0
mUI/ml
Mujeres menopáusicas menos de 13.0
mUI/ml
Mujeres embarazadas varía según edad gestacional
mUI/ml
9.- Hemograma y fórmula leucocitaria:
Glóbulos rojos
H : 4,6 - 6,2 M : 4,2 - 5,4 millones/mm3
Volumen corpuscular medio ( VCM )
82 - 98
u3
Hemoglobina corpuscular media ( CHM)
27 - 31
pg
Concentración de hemoglobina corpuscular media ( CHCM ) 32 - 36
%
Hematocrito
H: 40-52
M:37-47
%
Hemoglobina
H: 13.5-18
M:12-16
g/dl
Globulosa blancos
4.000– 10.000
leuc/mm3
Recuento de plaquetas
140.000-440.000
plaq/mm3
%
Basófilos
Eosinófilos
Baciliformes
Segmentados
Linfócitos
Monocitos
0 2 2 50 20 4 -
número absoluto
1
4
5
70
35
8
%
%
%
%
%
%
0 - 100 /mm3
100 - 400 /mm3
100 - 500 /mm3
2.500 - 7.000/mm3
1.000 - 3.500/mm3
200 - 800 /mm3
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10.- LH:
Varón
Mujer:
Pick ovulatorio
1era mitad ciclo folicular
2da mitad ciclo folicular:
Fase lútea
Menopáusica
1.1 - 7.0
mUI/ml
9.6
1.5
2.0
0.2
8.0
mUI/ml
mUI/ml
mUI/ml
mUI/ml
mUI/ml
-
80.0
8.0
8.0
6.5
33.0
11.- Líquido amniótico:
Aspecto
Ácido úrico
Creatinina
pH
Proteínas totales
Sodio
Células anaranjadas
Urea
< 28 semanas
Claro
3,7 +/- 0,96
0,8 - 1,1
7,12 - 7,38
0,6 +/- 0,24
sodio del suero
0
18 +/- 5,9
parto
Ligeramente opalescente
9,9 +/- 2,23 mg/dl
1,8 - 4,0
mg/dl
6,91 - 7,13
0,26 +/- 0,19 g/dl
7 - 10 meq/l inferior al del suero
> 20 %
30,3 +/- 11,4 mg/dl
12.- Líquido cefalorraquídeo:
Aspecto
Claro
Pandy
Negativo
Proteínas totales
15 - 45
mg/dl
Glucosa
45 - 75
mg/dl
Cloruros
120 - 130
meq/l
Recuento de células
0 - 8 células/ mm3 ; todas Mononucleares (100 %)
13.- Líquido pleural:
Aspecto
Color
Coágulo de fibrina
Recuento de células
Neutrófilos
Proteínas
Glucosa
14.- Líquido sinovial:
Aspecto
Coágulo de fibrina
Viscosidad
Recuento de leucocitos
Neutrófilos
Glucosa
Cristales
Ligeramente opalescente
Amarillo, ligeramente xantocrómico
Ausente
60
células/mm3
< 25 %
1 - 2 g/dl
10 mg menos que el valor sanguíneo
Claro, transparente
Ausente
Elevada
< 200 células/mm3
< 25 %
10 mg menos que el valor sanguíneo
Ausentes
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15.- Progesterona:
Varón:
Mujer:
Pick ovulatorio
Fase folicular
Fase lútea
Menopáusica
0.11 - 0.56
ng/ml
0.12 - 6.22
0.10 - 0.54
1.5 - 20.0
menos de 0.41
ng/ml
ng/ml
ng/ml
ng/ml
16.- Reacciones de aglutinación:
Eberth H ( typhi H)
< 1 : 80
Eberth O ( typhi O)
< 1 : 80
Paratyphi A
< 1 : 80
Paratyphi B
< 1 : 80
Brucelosis
< 1 : 80
Weil- Félix
Diferencia de 4 títulos entre el período agudo y convaleciente
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ANEXO 4: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Coprocultivo.
1. Se deben tomar dos muestras de deposición en tiempos diferentes.
2. En adultos y niños mayores:
El paciente debe emitir la deposición en un recipiente muy limpio desde el cual se recolecta la
fracción de la deposición que muestre mayor alteración (sangre pus y mucosidad). Esto se
debe realizar con la tórula de algodón que se le entregó, tomando una pequeña porción de la
muestra y luego la tórula debe ser enterrada en el gel del tubo.
3. En niños menores: la muestra puede ser recolectada desde el pañal o también se puede
humedecer la tórula en el gel e introducirla cuidadosamente en el ano aproximadamente dos
centímetros, haciéndola girar suavemente. Una vez obtenida la muestra ésta debe ser
colocada en el tubo enterrando la tórula con la muestra en el gel.
4. Conservación y Traslado de muestras: Mantener las muestras a temperatura ambiente y al
juntar las dos, traerlas al laboratorio.
5. Plazo de entrega del examen: 72 a 96 horas.
NOTA: SIGA BIEN LAS INSTRUCCIONES Y EVITE ENSUCIAR LAS PAREDES DEL TUBO
CON LA MUESTRA.
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ANEXO 5: Instructivo de preparación y toma de muestra del examen Espermiograma
1. Se requiere de una muestra de semen y el paciente debe tener entre 3-5 días de abstinencia
sexual.
2. El paciente se debe tomar la muestra en su casa. La muestra se semen se obtiene por
masturbación, se deposita toda la muestra en el frasco y se tapa bien; no debe usar condones
ni otros recipientes para recolectar la muestra.
3. Conservación y traslado de muestra: El frasco y la orden del examen deben llegar al
laboratorio antes de transcurrida 1 hora desde que se tomó la muestra. Transportar la
muestra a temperatura del cuerpo (envolverlo en un pañuelo o un calcetín y ponerlo en un
bolsillo cerca del cuerpo).
4. En la orden del examen se debe anotar la hora en que se tomó la muestra y si la muestra es
completa o perdió parte de la misma. También debe anotar los días de abstinencia que tiene.
5. Si tiene dudas o no entiende estas instrucciones consulte en el laboratorio.
6. Plazo de entrega del examen: 3 días.
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ANEXO 6: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Baciloscopia de
expectoración
Este examen se realiza para investigar la presencia de la bacteria que causa la tuberculosis, por
lo que se busca en muestras de desgarro (expectoración o flema) que provengan de la zona
interna de la vía respiratoria cercana al pulmón, por lo que se debe evitar la saliva y el moco
nasofaríngeo. La muestra adecuada es MUCOPURULENTA.
Ud. dispone de 2 CAJAS NEGRAS para depositar sus muestras, cada una de ellas tiene
adherido a su pared un rotulo con sus datos personales.
- Se requieren 2 MUESTRAS.
- La cantidad óptima es 2 ml aproximadamente.
- La primera muestra puede obtenerse en forma espontánea luego de un episodio de tos en
cualquier momento del día.
- La segunda muestra se obtiene al día siguiente, al despertar.
- Las muestras se toman de la siguiente forma:
1. Enjuague la boca con agua. Abra la caja negra y acérquela a su boca.
2. Tome aire profundamente y reténgalo por unos momentos, luego expúlselo con fuerza para
forzar la tos productiva.
3. Escupa la muestra al interior del envase cuidando de no ensuciar el envase por fuera.
4. Tape la caja cuidadosamente y limpie con toalla de papel la parte de afuera si fuese
necesario. Lave sus manos con agua y jabón.
5. Conservación y traslado de muestra: Guarde las muestras hasta el momento de ser
llevadas al laboratorio.
6. Déjelas en lugar fresco donde no les llegue luz, de preferencia refrigeradas sobretodo en
época de verano.
7. Transporte las muestras CAJAS NEGRAS, dentro de la bolsa de plástico, sin envolverlas,
para que pueda verse la posición de la caja que no debe voltearse para evitar derrames.
8. Lleve las muestras al laboratorio antes de las 10:00 hrs del día de la segunda toma de
muestra.
9. Entregue las muestras en el mesón de recepción de muestras junto a la orden médica
“formulario de investigación bacteriológica” con todos los datos.
10. Plazo de entrega del examen: El resultado de la Baciloscopía está dentro de las próximas 72
hrs. hábiles, se retira en secretaría para pacientes ambulatorios o es enviada a su lugar de
procedencia vía estafeta.
11. Toda muestra de Baciloscopía es enviada para Cultivo y el informe bacteriológico final o
resultado de este cultivo se obtiene a los 60 días.
-
Si Ud. no entiende o tiene dudas para tomar la muestra, consulte al personal del
laboratorio.
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ANEXO 7: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen de sangre oculta en
deposición (test de weber)
1. El paciente no debe realizar régimen alimenticio antes de la toma de muestra.
2. El examen no se puede realizar: sufriendo un cuadro diarreico, y tampoco si se trata de una
mujer en periodo menstrual.
3. Se le entregará el material de toma de muestra que consiste en un frasco limpio y seco.
4. Con una paleta de madera tomar una pequeña parte de la deposición (del tamaño de una
uva), y ponerla dentro del frasco.
5. Tapar bien el frasco.
6. Conservación y traslado de muestra: Se deben entregar la muestra en el laboratorio con su
respectiva orden médica y trasportada a temperatura ambiente, las muestras se reciben de
lunes a viernes en horario hábil.
7. Si tiene dudas o no entiende las instrucciones, consulte en el laboratorio.
8. Plazo de entrega del examen: 48 horas.
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ANEXO 8: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen parasitológico
seriado de deposiciones.
1. Se deben tomar en total tres (3) muestras de deposiciones día por medio (un día sí, un día
no).
2. Defecar en bacinica limpia y seca, sin mezclar con orina (orinar antes), sirven las
deposiciones de cualquier hora del día.
3. En niños que usan pañal tomar la muestra desde ahí.
4. Con una paleta de madera tome una pequeña parte de la deposición (como el tamaño de una
NUEZ PEQUEÑA), ponerlo dentro del frasco que se le entregó y mezclarlo bien con el líquido
que contiene hasta que quede homogéneo.
5. Tapar bien el frasco y al completar las tres muestras, traerlo al laboratorio junto a la orden del
examen.
6. El volumen máximo de las 3 deposiciones no debe sobrepasar el líquido fijador.
7. Si observa gusanos en las deposiciones póngalos cuidadosamente en otro frasco limpio con
agua de la llave y llévelos al laboratorio.
9. Conservación y traslado de muestra: Transportar a temperatura ambiente evitando
derrames.
10. Plazo de entrega del examen: 7 días.
NOTA: NO INGERIR EL CONTENIDO DEL FRASCO
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ANEXO 9: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen test de Graham
1.
2.
3.
4.
5.
Usted recibirá un paquete con cinco placas para realizar el examen.
Deberá tomar una muestra diaria, en días seguidos, hasta completar las cinco (5)
Cada día se debe utilizar una paca nueva.
Tomar la muestra en la mañana al levantarse, antes de realizar cualquier actividad.
No se debe aplicar pomadas, talcos ni otras sustancias en la región perianal durante los días
en que se tomen las muestras.
6. Idealmente otra persona debe tomar la muestra (si el examen se solicitó para un adulto).
7. Despegar la cinta de la placa y con el lado adhesivo realizar varias aplicaciones alrededor del
ano, en forma radiada.
8. Adherir la cinta nuevamente a la placa, alisándola con suavidad y cuidando que quede
paralela al borde del portaobjetos.
9. Lavarse las manos cuidadosamente con agua jabón y utilizar escobilla para uñas.
10. Conservación y traslado de muestra: Depositar las 5 placas dentro de una envoltura de
papel protegiéndola de la exposición de la luz y llevar al laboratorio a temperatura ambiente.
11. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 7 días.
NOTA: SERAN
DEPOSICIONES.
RECHAZADAS
TODAS
LAS
MUESTRAS
QUE
CONTENGAN
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ANEXO 10: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Clearence de
Creatinina (orina 24 horas)
1. Se recolecta orina de 24 horas; y conjuntamente se toma una muestra de sangre en ayunas.
2. Se recomienda no ingerir diuréticos, te café u otros alimentos que estimulen la diuresis,
mientras dure la recolección de la orina de 24 horas. Tampoco se debe beber más agua de la
que consume ya que provocará que se alteren sus resultados.
3. El paciente debe vaciar completamente la vejiga a una hora determinada (por ejemplo a las
7:45) luego esta orina se elimina para que así la recolección de la orina de 24 horas sea la
indicada.
4. Se debe recolectar la totalidad de orina que presente durante las 24 horas (en el ejemplo: a
partir de las 7:45 a.m. hasta las 7:45 a.m. del día siguiente, incluyendo la orina obtenida en
ese momento).
5. La recolección se hace en un recipiente limpio que se debe dejar en un lugar fresco ya que la
orina a temperatura ambiente cambia el pH; provocando que la muestra se contamine con
bacterias.
6. Al terminar la recolección, se toma una muestra de sangre para creatinina.
7. En la orden del examen se debe incluir: peso, talla y edad.
8. El recipiente que se utilice debe venir rotulado desde su hogar.
9. Conservación y traslado de muestra: Una vez recolectada la orina llevarla inmediatamente
al laboratorio a temperatura ambiente.
10. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48
horas.
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ANEXO 11: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Test de Tolerancia a
la Glucosa
1. Tener un ayuno mínimo de 12 horas.
2. Retirar la solución de glucosa en la farmacia del hospital antes de llegar al laboratorio al
momento de la toma de muestra.
3. Después de tomar la muestra de SANGRE en ayunas, se administrará una solución de
glucosa oral, usualmente la dosis en adultos es de 75 g
4. Entre la PRIMERA Y SEGUNDA MUESTRA el paciente debe permanecer en REPOSO (se
recomienda sentado) por un periodo de 2 horas entre dichas muestras. Además de no debe
consumir nada después de la administración de la solución de glucosa.
5. VENIR ACOMPAÑADO ya que pueden presentarse vomito o diarrea después del test.
6. TRAER UN LIMON desde su hogar.
horas.
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ANEXO 12: Instructivo de Preparación y toma de muestra del Análisis de Hormonas
Reproductivas
Si se le solicitaron cualquiera de los siguientes análisis: ESTRADIOL, FSH, LH, PROLACTINA
BASAL, usted deberá:
1. Concurrir al laboratorio en ayunas de 10 horas (solo podrá tomar agua y lavarse los dientes).
2. No deberá tener relaciones sexuales 24 horas antes de la extracción
3. No deberá bañarse la mañana del análisis para evitar cualquier estimulación mamaria por
agua caliente o masaje.
4. Evitar cualquier situación de stress.
5. Su médico le indicará en que día de su ciclo menstrual debe tomarse la muestra.
horas.
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ANEXO 13: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen orina completa
1. Seleccionar un envase apropiado, este debe ser limpio y seco, lo ideal es un frasco plástico
que puede solicitar en el laboratorio.
2. Es recomendable la primera orina de la mañana ya que se encuentra más concentrada; previo
a ello es necesario un aseo prolijo ya que un mal aseo arroja resultados erróneos.
3. Conservación y traslado de muestra: No deben transcurrir más de dos horas de tomada la
muestra para su procesamiento. De no ser posible el envío inmediato, refrigerar la muestra
hasta el momento del envío de la misma. Las muestras dejadas a temperatura ambiente
comienzan a descomponerse con rapidez.
horas.
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ANEXO 14: Instructivo de Preparación y Toma de muestra de análisis de sangre sin
Triglicéridos
1. Concurrir al Laboratorio, manteniendo un período de ayuno de 8 a 10 horas. Cenar de
manera habitual y contar las horas a partir de finalizada la cena.
2. No se recomiendan ayunos mayores a 14 horas.
3. No fumar, ni beber café, té o mate durante el período del ayuno.
4. Si lo desea puede beber agua
horas.
Por favor, cumpla con estas instrucciones. LA CALIDAD es nuestro objetivo.
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ANEXO 15: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra de análisis de sangre con
Triglicéridos
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
Concurrir al laboratorio, manteniendo un período de ayuno de 12 a 14 horas.
Cenar de manera habitual y contar las horas a partir de finalizada la cena.
Abstenerse de beber alcohol 3 días antes del examen.
No se recomiendan ayunos mayores a 14 horas.
No fumar, ni beber café, té o mate durante el período del ayuno
Si lo desea puede beber agua.
Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas
Por favor, cumpla con estas instrucciones. LA CALIDAD es nuestro objetivo.
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ANEXO 16: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en
mujeres:
1. Debe ser la primera orina de la mañana.
2. Previo a tomar la muestra debe hacerse un lavado prolijo de la zona genital, por lo tanto debe
tener a la mano lo siguiente: a) jabón; b) agua hervida a temperatura ambiente; c) gasa estéril
o un paño recién lavado; y d) el frasco o tubo estéril para tomar la muestra.
3. Proceda primero a lavarse las manos y luego siéntese en el inodoro, lo más hacia atrás que
pueda. Separe los labios genitales con una mano y mantenga los pliegues separados y
proceda a asearse toda la zona genital con el jabón. Enjuague con abundante agua y luego
seque bien con gasa estéril o con una toalla de papel.
4. Proceda a recoger la orina, destapando previamente el frasco SÓLO EN EL MOMENTO DE
LA MICCIÓN y sin tocar con los dedos su interior, coloque la tapa con el lado plano hacia
abajo. No toque el interior del recipiente o de la tapa; en caso de que este sea un frasco o de
lo contario al ser un tubo estéril con algodón este debe permanecer en la mano ya
desinfectada. Empiece a orinar en el recipiente estéril y recoja en el frasco o tubo sólo la
muestra del chorro del medio es decir, NO DEBE RECOGER NI LA PRIMERA, NI LA ÚLTIMA
PARTE DEL CHORRO DE ORINA.
5. Conservación y traslado de muestra: Tape muy bien el frasco o tubo y rotúlelo con su
nombre. Tráigalo al laboratorio lo más pronto posible, en un recipiente con hielo, cuidando de
que no se derrame el contenido.
6. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta de 48 a 72 horas.
NOTA: Éste es un método común utilizado para la recolección de orina. Se puede presentar un
resultado erróneo en el cultivo de orina como consecuencia del uso reciente de
antibióticos.
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ANEXO 17: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en
hombres:
1. Debe ser la primera orina de la mañana.
2. Previo a tomar la muestra debe hacerse un lavado prolijo de la zona genital, por lo tanto debe
tener a la mano lo siguiente: a) jabón; b) agua hervida a temperatura ambiente; c) gasa estéril
o un paño recién lavado; y d) el frasco o tubo estéril para tomar la muestra.
3. Lavarse con jabón primero las manos y luego la cabeza del pene empezando por la abertura
uretral y continúe en dirección a usted, previa retracción del prepucio, si no está circuncidado.
Luego enjuagar bien con agua previamente hervida (a temperatura ambiente) y secar con
gasa estéril o con un paño recién lavado.
4. Destape el frasco o el tubo de vidrio estéril sólo en el momento de la micción y sin tocar con
los dedos su parte interna, coloque la tapa con el lado plano hacia abajo y en caso de ser la
tapa un algodón sostenerlo en la mano ya desinfectada. Comience a orinar en el recipiente y
recoja en el frasco sólo la muestra del chorro del medio, es decir, NO DEBE RECOGER NI LA
PRIMERA NI LA ÚLTIMA PARTE DEL CHORRO DE ORINA.
5. Conservación y traslado de muestra: Tapar bien el frasco, rotularlo con su nombre y traerlo
al laboratorio lo más pronto posible, en un recipiente con hielo y cuidando de que no se
derrame el contenido.
6. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta de 48 a 72
horas.
NOTA: Éste es un método común utilizado para la recolección de orina. Se puede presentar un
resultado erróneo en el cultivo de orina como consecuencia del uso reciente de
antibióticos.
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ANEXO 18: Exámenes derivados:
BARNAFI Y KRAUSE DIAGNOSTICA
Tipo de Muestra
Testosterona Libre y Total
STOT
D.H.E.A
STOT
Cortisol urinario
OR24
Hormona del crecimiento
STOT
Cortisol plasmático, ciclo circadiano (8.00 y 18.00 hrs.)
STOT
17 Hidroxicorticoesteroides en orina
OR24
Anticuerpos anti CMV ( tipo Ig G )
STOT
Anticuerpos contra antígenos extractables del núcleo ( ENA)
STOT
Anticuerpos anti musculo liso
STOT
Anticuerpos anti mitocondriales
STOT
Electroforesis de proteínas
STOT
Serología para Toxoplasmosis
STOT
Serología para Hidatidosis
STOT
Determinación de complemento CH 50
STOT
Epstein Barr, anticuerpos anti
STOT
INSTITUTO DE SALUD PUBLICA DE CHILE
Inmunofluorescencia directa para Chlamydia
Tipo de Muestra
Secreción
Serología para Amebiasis
STOT
Serología para Triquinosis
STOT
Serología para Cisticercosis
STOT
Serología para Toxocariosis
STOT
Serología para Fasciolasis
STOT
F.T.A. A.B.S. ( Inmunofluorescencia para sífilis)
STOT
Determinación de adenosin-deaminasa
Suero/Liquido
biológico
M.H.A. - T.P.
STOT
Anticuerpos para:
STOT
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Polio
Echo
Coxsackie
Rubéola
Varicela Zoster
Herpes Simplex
Parotiditis
Mycoplasma pneumoniae
T.O.R.C.H.
STOT
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ANEXO 19: Código de barras:
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ANEXO 20: Solicitud de examen de paciente hospitalizado
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ANEXO 21: Almacenamiento transporte y observaciones para toma de muestra:
Exámenes Bioquímicos
Examen
Ácido úrico, Albúmina
Bili. Directa,Bili.
Indirecta, Bili. Total
Calcio, Creatinina
Electrolitos,Fosfatasa
alcalina, Fosforo, GPT,
GOT, GGT, LDH
Proteínas totales,
Transferrina,
Ferremia, Urea
Colesterol Total
Triglicéridos
pH y Gases
sanguíneos
Amonio
Glicemia
Condiciones
del paciente
Ayuno
relativo para
evitar lipemia
Colesterol HDL
Colesterol LDL
Tipo de tubo
Sangre
venosa
Tapa roja
STOT
Conservación, traslado
y Observaciones
Almacenar a Tº ambiente
hasta su procesamiento.
Trasladar
calor
Ayuno
estricto de 8
a 12 horas.
Ninguna
1era muestra
en ayuno
Curva de tolerancia estricto de 8
a la glucosa de 2 a 12 horas.
puntos.
2da muestra
a los 120
Curva de insulina de minutos
2 puntos
después de
una carga de
75 grs. de
glucosa por
vía oral.
Amilasa, Calcio, CK,
CKMB, Troponina
Muestra
aisladas
del
Sangre
venosa
Tapa roja
STOT
Mantener a Tº ambiente
Sangre
arterial o
venosa
según sea
el caso
Jeringa con
baño de
heparina y
tapa.
Sangre
Venosa
Tapa gris
SFLO
La
jeringa
DEBE
transportarse con tapa y
en hielo.
Traslado inmediato al
Laboratorio.
La muestra NO debe tener
burbujas
hasta su procesamiento
Ayuno
Sangre
relativo de 2 venosa
a 4 horas
Ayuno
Sangre
estricto de 8 venosa
a 12 horas
Tapa roja
STOT
Tapa roja
STOT
Tapa roja
STOT
Mantener la muestra a Tº
ambiente
hasta
su
procesamiento.
ambiente
hasta
su
procesamiento.
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Hemoglobina
glicosilada
Cetonemia
Ayuno
Sangre
a 4 horas
Ninguna
Sangre
venosa
Tapa lila
SEDTA
Tapa roja
STOT
ambiente
hasta
su
procesamiento.
ambiente
hasta
su
procesamiento.
Exámenes Endocrinológicos
TSH, T3, T4 libre,
T4, estradiol.
Prolactina,
progesterona, FSH,
LH, insulina.
Ayuno
Sangre
relativo de 2 a venosa
4 horas
Exámenes Inmunológicos
Proteína C Reactiva Ayuno
Sangre
Factor Reumatoídeo relativo de 2 a venosa
4 horas
Niveles Plasmáticos
Niveles Plasmáticos
de:
Ácido Valproico
Carbamazepina
Fenitoína
Fenobarbital
Ayuno
Sangre
relativo de 2 a Venosa
4 horas
No tomar la
dosis
de
medicamento
previa a la
toma
de
muestra.
Exámenes Hematológicos
Hemograma
Ayuno
Sangre
Hemoglobina
Hematocrito
a 4 horas.
Rec. Eritrocitos
Rec. Leucócitos
Rec. Plaquetas.
Rec. Neutrófilos.
Rec. Eosinófilos.
Rec. Reticulocitos.
Velocidad de
Ayuno
Sangre
sedimentación
estricto de 8 venosa
(VHS)
a 12 horas.
Exámenes de Coagulación
Tiempo de
Ayuno relativo
Sangre
Tapa roja
STOT
ambiente
hasta
su
procesamiento.
Tapa roja
STOT
ambiente
hasta
su
procesamiento.
Tubo tapa roja.
STOT
ambiente
hasta
su
procesamiento.
Anotar en la Orden de
Examen la dosis y horario
de
ingesta
del
medicamento.
Tapa lila
SEDTA
Tapa lila
SEDTA
Tapa celeste
Mantener tapado a Tº
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protrombina.
de 2 a 4 horas
TTPK (tiempo parcial
de protrombina
activada)
Fibrinógeno
Dímero D
Tiempo de sangría
No ingerir Ác,
Acetilsalicílico
(aspirina) u
otro fármaco
que contenga
antiagregantes
plaquetarios al
menos 5 días
antes del
examen.
venosa
Sangre
venosa
Exámenes de Marcadores Tumorales
Alfa feto proteínas
Ninguna
Sangre
B-HCG
venosa.
PSA total
Exámenes en Secreciones
Citoquímicos en:
Ninguna
Líquido Pleural
Líquido Ascítico
Líquido Articular
Liquido
Ninguna
Cefalorraquídeo
Exámenes Serológicos en Sangre
VDRL
Ayuno relativo
de 2 a 4 horas
SCIT
ambiente hasta su
procesamiento. (No más
de 2 horas)
Procedimiento realizado
directamente al paciente
por el Tecnólogo Médico o
Técnico paramédico de
Laboratorio.
Tapa roja.
STOT
ambiente hasta su
procesamiento.
Líquido
que
correspo
nda.
Liquido
cefaloraquideo
Tubos de vidrio
estéril con
heparina.
ambiente hasta su
procesamiento.
Tubo de vidrio
estéril sin
anticoagulante
ambiente hasta su
procesamiento.
Sangre
venosa
Tapa roja
STOT
ambiente hasta su
procesamiento.
Exámenes Químicos en Orina
Amilasuria
Microalbuminuria
Uricosuria
Albuminuria de 24
horas.
Ingesta de
líquidos
normal, NO
requiere ayuno
Orina de
24 horas.
Envase
de Mantener la muestra en
2000 cc, limpio lugar fresco.
y seco
Medir diuresis y
especificarla en la Orden
de Examen.
Cetonuria
Albuminuria simple
Glucosuria
Ninguna
Orina
recién
emitida
Envase
de Mantener la muestra en
orina
plástico refrigeración hasta su
con tapa rosca procesamiento
roja
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Exámenes de Orina
Orina Completa
Aseo Genital
previo a la
recolección de
la muestra.
1era
orina de
la
mañana,
2do
chorro.
Envase
de Mantener
la
muestra
orina
plástico refrigerada
hasta
su
con tapa rosca procesamiento.
roja.
Glucosuria de 24
hrs.
Calciuria, N. Uréico
Electrólitos
Clearence de
Creatinina
Ingerir líquidos
en forma
normal.
Orina 24
horas
Botellas o
envases de
2000 cc de
capacidad.
No requiere
ayuno
Medir diuresis y anotar
estos datos en la Orden
de
Examen.
Para
clearence agregar peso y
talla. Mantener la muestra
en lugar fresco.
Exámenes en muestras de Deposición
Hemorragias
Ocultas
Toxinas A y B de
Clostridium Difficile
Sin
preparación
previa especial
Sin
preparación
previa especial
Deposición Frasco plástico,
limpio, seco y
con tapa.
Deposición Frasco plástico
liquida
o estéril.
alterada
Mantener en lugar fresco
Enviar inmediatamente al
Laboratorio a temperatura
ambiente.
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ANEXO 22 INSTRUCTIVO DE PREPARACIÓN Y TOMA DE MUESTRA DEL EXAMEN DE
ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS
1. Las muestras se deben recolectar apenas aparezcan los primeros síntomas (el peak viral se
produce a los 3-5 días)
2. Evitar tomar muestras después de 8 días aparecidos los síntomas, ya que pueden conducir a
falsos negativos
3. Se le entregara el material de toma de muestra que consiste en un frasco limpio y seco.
4. Con una paleta de madera tomar una pequeña parte de la deposición (del tamaño de una
uva), y ponerla dentro del frasco.
5. Tapar bien el frasco.
6. Conservación y traslado de muestra: Se deben entregar la muestra en el laboratorio con su
respectiva orden médica y trasportada a temperatura ambiente, las muestras se reciben de
lunes a viernes en horario hábil para consultorios y las 24 horas para servicios clínicos.
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LEUCOCITOS FECALES
1. Obtener la muestra de Deposición por eliminación espontánea.
2. Depositar la muestra en un frasco limpio.
3. La muestra debe ser trasladada al laboratorio, antes de dos horas de su obtención.
4. Cantidad mínima requerida, ½ cucharadita de té.
Recolección de muestra de deposición de pañal (Sacar con espátula de madera, la deposición
más superficial y abundante que contenga el pañal.
5. Se debe obtener la muestra, es deseable que sea recién emitida para evitar que ésta sea
absorbida por el pañal.
6. Conservación y traslado de muestra: Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en
frasco entregado por el laboratorio.
7. Taparlo con sus dos tapas y meterlo en una bolsa plástica, agregar en ésta cubos de hielo.
8. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio de antes de dos horas de su obtención.
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CLOSTRIDIUM DIFFICILE
1. El paciente debe estar hospitalizado y presentar uno o más de los siguientes factores de
riesgo:
- Uso de antibióticos previo (hasta 2 meses atrás) especialmente betalactámicos,
clindamicina o quinolonas.
- Hospitalización en los dos últimos 2 meses.
- Edad mayor de 65 años.
- Contacto previo con pacientes CD (+)
- Antecedente de infección por CD.
2. Sólo se debe solicitar análisis de toxina en deposiciones a pacientes sintomáticos y sin otra
causa evidente que explique el cuadro diarreico. Deposiciones diarreicas de Pacientes con
al menos 2 deposiciones diarias en las últimas 48 hrs.
3. La orden médica debe ser hecha en formulario especial, “Formulario Clínico/Epidemiológico
para estudio de toxinas A y B de Clostridium difficile”.
No solicitar estudio de deposiciones como control post tratamiento.
4. Conservación y traslado de muestra: La muestra será una deposición fresca en frasco
estéril, proporcionado por laboratorio.
_ La muestra debe ser enviada de forma inmediata al Laboratorio, etiquetada y en doble
envase. Si no es posible procesar de inmediato se puede conservar: 4-8ºC, durante 2
Horas, -20º C, hasta 48 hrs, -70ºC, por periodos prolongados
5. Si el resultado de este examen es positivo, el Laboratorio informara de inmediato al servicio
clínico.
6. Se puede tomar una segunda muestra en caso de resultado negativo y fuerte sospecha
Clínica.
7. La muestra debe ser tomada antes del inicio del tratamiento antibiótico.
8. Plazo de entrega del examen: 2 horas
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BACILOSCOPIA EN ORINA
1. Retirar el material necesario desde la Recepción del Laboratorio Clínico, para ello
presentar la orden médica respectiva.
2. Indicaciones:
3. Realizar aseo genital prolijo.
4. Utilizar la primera orina de la mañana.
5. Conservación y traslado de muestra: El primer día: eliminar el primer chorro y recibir en
frasco estéril, el segundo chorro. Refrigerar la muestra y trasladar antes de 2 horas al
Laboratorio Clínico.
6. Repetir este procedimiento los días 2, 3, 4, 5 y 6, en forma sucesiva.
7. Cada muestra debe tomarse en un frasco diferente y ser llevada DIARIAMENTE al
Laboratorio Clínico.
8. La cantidad de muestra debe ser de aproximadamente 100 a 200 ml no se recomienda un
volumen inferior a éste.
9. Plazo de entrega del examen: Baciloscopías: 72 horas hábiles y Cultivo: 60 días.
10. NO OLVIDE ROTULAR CADA FRASCO CON SU NOMBRE Y FECHA DE LA
MUESTRA

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