Accès à la ressource - Université Bordeaux I
Transcription
Accès à la ressource - Université Bordeaux I
Thèse n° 3759 THÈSE PRÉSENTÉE A L’UNIVERSITÉ BORDEAUX 1 ÉCOLE DOCTORALE DES SCIENCES DE LA VIE ET DE LA SANTE Par Anne-Laure DINEL POUR OBTENIR LE GRADE DE DOCTEUR EN NUTRITION Impact de l'inflammation à bas bruit associée à l'obésité sur l'établissement des troubles de l'humeur et de la cognition Soutenue le 19 décembre 2008 Devant la commission d’examen formée de : Pr. Marc LANDRY, Professeur à l’Université Bordeaux 2 Dr. Rémy BURCELIN, Directeur de recherche à l’INSERM, Université de Toulouse Dr. Muriel DARNAUDERY, Maître de Conférence à l’Université de Lille Dr. Dragan MILENKOVIC, Chargé de recherche à l’INRA, Clermont-Ferrand Pr. Paul HIGUERET, Professeur à l’Université Bordeaux 1 Dr. Nathalie CASTANON, Chargée de recherche à l’INRA, Université Bordeaux 2 Président Rapporteur Rapporteur Examinateur Directeur de thèse Directeur de thèse Université Bordeaux 1 – Les Sciences et les Technologies au service de l'Homme et de l'environnement 1 2 3 4 Remerciements Remerciements Je tiens à remercier le Professeur Marc Landry pour m’avoir fait l’honneur d’accepter de présider ce jury de thèse. Je remercie sincèrement le Docteur Muriel Darnaudery et le Docteur Remy Burcelin d’avoir accepté d’être les rapporteurs de cette thèse. Je remercie également le Docteur Dragan Milenkovic d’avoir accepté de faire partie du jury de cette thèse en tant qu’examinateur. Je tiens à remercier le Professeur Paul Higueret d’avoir accepté d’être le Directeur officiel de cette thèse. Je remercie également Robert Dantzer et Francoise Moos qui m’ont accueillie successivement au sein de leur laboratoire. Et surtout je tiens à remercier Nathalie pour avoir « examiné » ce travail pendant 3 ans ! Merci pour ton optimisme, ton ouverture d’esprit, tes conseils et pour avoir toujours été présente quelques soient les évènements. Merci aussi de m’avoir soutenu dans ce début de thèse un peu original entre Sup de Co et le labo et d’avoir eu confiance en moi !! Finalement je n’aurais pas eu besoin de 6 ans pour la faire cette thèse, même si la dernière ligne droite a été un peu sportive !! Je tiens aussi à remercier tous les Psynugens qui m’ont aidé et en particulier : Agnès, Jérôme, Philippe, Jean-Luc, Claudine, Véro et tous les autres pour leur aide, Caro, ma « binôme » de thèse, sans qui je n’aurais pas connu le stress de la souris sauteuse et la joie de la préparation de la boulette chips-lardons-chocolat ! Sophie, pour tes inoubliables « mais quelle est ta question ? » mais aussi pour ta disponibilité, ta bonne humeur et tes coups de gueule, ton aide et ton soutien à chaque fois que j’en ai eu besoin, Julie, grâce à qui je ne pourrais plus jamais écouté « tout le bonheur du monde »!! Merci pour ton foutu caractère mais surtout pour ta joie de vivre! Mais surtout un grand merci à mes sœurs de thèse : Virginie, Linette, Lélé, Vanessa (presque une sœur de thèse…) et Aurélie, grâce à qui la vie dans notre bureau rose ou dans l’aquarium a quand même été bien sympa !! Nos discussions, nos râleries et nos fous rires vont bien me manquer mais je connais un endroit sympa à Cestas pour continuer tout ça ! Bien évidemment, je remercie aussi tous ceux qui sont présents dans ma vie et qui m’ont soutenu pendant cette sympathique période qu’est la thèse, Alors merci à toute la clique des copains et à nos soirées cartes et vieux souvenirs 100 fois racontés… aux Corinettes et à leurs délires souvent incontrôlables….. aux BBFI (les membres permanents mais aussi les pièces rapportées) sans qui , bien sûr, je ne serai rien ou presque…. 5 à mon cousin, mon prof de gratte préféré qui m’a permis de bien décompresser ces derniers mois, à Mister Lacrampe, merci pour les vagues…. à Florent dit Oreste la Loutre, et Suzanne pour leur amitié à Lolo et Virginie (et Aymeric et Titou aussi bien sûr), pas besoin d’en dire plus, à Dam’s et à ma ‘tite sœur, merci ma loute ! à mes parents qui m’ont toujours soutenue dans mes choix et m’ont fait partager leur passion, à Olivier, merci de supporter mon caractère « tendre et facile » surtout ces derniers mois, et d’accepter mes décisions parfois un peu égoïstes,… 6 Résumé 7 8 Résumé De nombreuses études menées chez l’homme ont montré que l’obésité est associée à un état inflammatoire chronique caractérisé par une augmentation de la sécrétion de nombreuses molécules dont la leptine et des cytokines inflammatoires comme le TNF-α et l’IL-6 (Clement et al., 2004). Des données récentes suggèrent que cette inflammation périphérique pourrait également présenter une composante au niveau cérébral se caractérisant notamment par une augmentation de l’expression de différentes cytokines inflammatoires (IL-6, TNF-α, IL-1β…) et de l’activation de leurs voies de signalisation intracellulaire (augmentation de l’activité c-Jun-N-terminal kinase et de NFkB)(De Souza et al., 2005). De plus, l’intensité de la situation inflammatoire semble être liée au degré d’obésité. Ainsi, il est possible de distinguer différentes situations d’obésité : une obésité modérée qui ne s’accompagne pas forcément de pathologies comorbides et une obésité morbide associée à différents types de complications comme des maladies cardio-vasculaires, de l’hypertension artérielle ou un diabète de type 2. L’obésité s’accompagne également d’une forte prévalence de troubles de l’humeur (anxiété, dépression) et de la cognition. Notre laboratoire a été un des pionniers dans l’étude de l’expression et de l’action des cytokines au niveau central et de leurs conséquences, tant comportementales que neurobiologiques. Cette relation entre système de l'immunité innée et cerveau a particulièrement été étudiée dans le cadre du comportement de maladie regroupant un ensemble de symptômes non spécifiques (fièvre, activations neuroendocriniennes, anorexie, anhédonie, repli sur soi, perte d’intérêt pour l’environnement…) observés chez les individus malades et pouvant être reproduits chez l’animal en réponse à l’injection d’un inducteur de cytokines tel que le lipopolysaccharide (LPS)(Dantzer, 2001). Dans le cas d’une exposition prolongée ou non régulée de l’activation du réseau de cytokines, le comportement de maladie peut laisser place à de véritables troubles de l’humeur et de la cognition associés à une chute des taux circulants de tryptophane, un acide aminé essentiel servant de précurseur et de facteur limitant à la synthèse de sérotonine. Il a été montré que l'indoléamine 2,3-dioxygénase (IDO), une enzyme dégradant le tryptophane en réponse aux cytokines (Lestage et al., 2002; Moreau et al., 2005) est impliquée dans l’induction des symptômes de type dépressif observés notamment suite à production soutenue de cytokines et que cette action serait dépendante du catabolisme du tryptophane via la voie de la kynurenine (O'Connor et al., 2008). L’activation de l’IDO en situation inflammatoire aboutit à la production de dérivés neurotoxiques (3-OH-kynurénine, acide quinolinique) se comportant comme des agonistes des récepteurs glutamatergiques de type NMDA (Taylor and Feng, 1991), au dépend de la production de sérotonine. Ainsi, l’activation de l’IDO par les cytokines pourrait jouer un rôle dans l’apparition de troubles cognitifs associés aux états inflammatoires via l’altération de la neurotransmission sérotoninergique et/ou glutamatergique. Ces mêmes mécanismes pourraient 9 également sous-tendre le développement des troubles de l’humeur et de la cognition couramment observés chez les personnes obèses. L’ensemble des études réalisées dans ce travail de thèse a donc eu pour objectif général de déterminer chez la souris si l’inflammation chronique à bas bruit qui est associée à un état d’obésité entraînait le développement de troubles de l’humeur et de la cognition. De plus, afin d’identifier au mieux les bases neurobiologiques potentielles à l’origine de ces troubles, nous avons choisi de nous placer dans deux situations différentes : un état d’obésité modérée induite par l’administration d’un régime enrichi mais n’entraînant pas le développement de pathologies co-morbides graves, et un état d’obésité morbide d’origine génétique associée à d’autres pathologies notamment un diabète de type 2. Dans les deux cas, les conséquences de cette obésité sur l’état d’activation inflammatoire et les altérations neurochimiques et comportementales qui en découlent ont été étudiées en détail. Nos résultats montrent que : 1) l’intensité de la perturbation du système immunitaire est corrélée au degré d’obésité puisqu’une obésité modérée est associée à une altération de la capacité du système immunitaire à répondre à une infection, tandis qu’une obésité morbide entraine la mise en place d’un état inflammatoire même en conditions non stimulées. 2) les modifications physiopathologiques induites par le développement d’un état d’obésité altèrent le système immunitaire, comme en témoignent l’activation accrue de la production de cytokines périphériques et cérébrales, en particulier l’IL-6, l’exacerbation des réponses neurochimiques (stimulation de l’IDO pulmonaire et cérébrale) et neuroendocriniennes (sur-activation de l’axe HPA) et de leurs conséquences sur la réactivité comportementale. 3) les souris obèses présentent des altérations de leurs capacités cognitives, des troubles de type anxieux, ainsi qu’une modulation de leur réponse émotionnelle dont la mise en place dans le temps semble se faire de façon indépendante, selon des modalités qui restent à préciser. En conclusion, ces résultats originaux permettent de mettre en évidence le rôle clé de l’inflammation associée à l’obésité dans le développement des troubles de l’humeur et de la cognition. Ce travail pourrait ainsi contribuer à l’identification de cibles moléculaires potentielles pour le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques ou nutritionnelles visant à améliorer la qualité de vie des patients obèses. Mots clés : Obésité, inflammation, cytokines, IDO, troubles de l’humeur, cognition 10 Abstract Severe obesity is associated with a low grade inflammation characterized by an increased release of inflammatory markers like cytokines and leptin. It has been suggested that some of these mediators of inflammation could also be found in the brain, as manifested by the increased hypothalamic expression of inflammatory cytokines (IL-6, TNF-α, IL-1) and the activation of their intracellular pathways. Moreover, the intensity of the inflammation state seems to increase with the degree of obesity. Morbid obesity, which is accompanied by different comorbid pathologies like cardiovascular disease, hypertension, type 2 diabetes and a high prevalence of mood (anxiety, depression) and cognitive disorders, is clearly associated with peripheral inflammation. Such an association is less clear in the case of a moderate obesity which is not systematically associated with comorbid pathologies. It is clearly established that during an infection brain actions of cytokines that are released as a result of the innate immune system activation induce development of sickness behaviour. In the case of a prolonged and/or unregulated activation of the cytokine network, sickness behaviour that includes non-specific symptoms such as behavioral alterations, fever and neuroendocrine activation can lead to the development of mood and cognitive disorders. Moreover, such a development is associated with a drastic drop of circulating levels of tryptophan, the essential amino acid acting as limiting factor of the serotonin synthesis. It has been proposed that these alterations could be at least partially explained by cytokine-induced peripheral and/or central activation of the indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO), a tryptophan-catabolizing enzyme that is potently induced in monocytes, macrophages and brain microglia by cytokines. IDO activation can result in the lowering of the bioavailability of tryptophan for 5-HT synthesis and the increase of neurotoxic derivates (3-OH-kynurenine, quinolinic acid). Both consequences of cytokine-induced IDO activation may play a role in the development of the cognitive and mood disorders associated with obesity. The present study aimed therefore at studying in mice the relationship between inflammation and development of mood and cognitive disorders associated with obesity. This study was performed in two different but complementary experimental conditions reproducing 1) a moderate obesity devoid of marked pathological complications (a model of diet induced obesity) and 2) a morbid obesity associated with comorbid pathologies like type 2 diabetes (db/db mice). Our results showed that: 1) The degree of obesity is correlated with the intensity of the alterations affecting innate immune system activation. 11 2) Obesity exacerbates the innate immune system activation as manifested by the increase of peripheral and central cytokine production, and related neurochemical, neuroendocrine and behavioral alterations. 3) The inflammation-related alterations induced by obesity are associated with impairment of cognitive abilities and emotional reactivity, as well as development of anxiety-like symptoms, although differences in their respective time-course of appearance seem to exist. Taken together, these findings showed the key role of the inflammation associated with obesity in its related mood and cognitive disorders. This work provides therefore a first important step towards the identification of new pharmacological and/or nutritional strategies aimed at ameliorating life quality of obese subjects and preventing development of related comorbidities. Key words : Obesity, inflammation, cytokines, IDO, mood disorders, cognition 12 Table des matières 13 14 Table des matières matières Remerciements ................................................................................................................................ 1 Résumé ............................................................................................................................................ 7 Abstract ......................................................................................................................................... 11 Table des matières ......................................................................................................................... 13 Introduction générale..................................................................................................................... 21 A. Cytokines et réaction inflammatoire ............................................................................. 23 1. L’immunité innée ................................................................................................... 23 2. La réaction de phase aiguë ....................................................................................... 23 3. Les cytokines............................................................................................................ 24 4. La réaction inflammatoire locale.............................................................................. 26 5. La réaction inflammatoire systémique ..................................................................... 27 6. La composante centrale de la réaction de phase aiguë............................................. 28 a) Voies d’accès des cytokines au système nerveux central .................................... 29 b) L’état de maladie.................................................................................................. 31 B. Cytokines et Troubles de l’humeur et de la cognition .................................................. 35 1. Cytokines et troubles de l’humeur .......................................................................... 36 a) Troubles anxieux .................................................................................................. 36 b) Troubles dépressifs............................................................................................... 38 2. Cytokines et troubles cognitifs................................................................................. 40 a) La mémoire .......................................................................................................... 40 b) Les troubles .......................................................................................................... 42 3. Mécanismes potentiellement impliqués ................................................................... 45 a) Implication de l’IDO ............................................................................................ 45 b) Implication de l’axe HPA..................................................................................... 49 C. L’obésité........................................................................................................................ 51 1. Définition et caractérisation ..................................................................................... 51 2. Prévalence et cause................................................................................................... 54 3. Rappel sur la régulation alimentaire et les molécules mises en jeu ......................... 56 4. Les conséquences de l’obésité.................................................................................. 62 a) Une pathologie inflammatoire chronique à bas bruit ........................................... 62 b) Les troubles de l’humeur et du comportement..................................................... 69 Objectifs ........................................................................................................................................ 77 Démarche expérimentale............................................................................................................... 81 A. Le choix des modèles utilisés........................................................................................ 83 B. Objectifs et expériences mises en œuvre....................................................................... 85 1. Objectif 1 :................................................................................................................ 85 a) Régime enrichi entraînant l’obésité: un modèle physiopathologique d’inflammation chronique. ........................................................................................... 85 b) Démarche expérimentale...................................................................................... 86 2. Objectif 2 :................................................................................................................ 86 15 a) b) Le LPS : un modèle d’activation aiguë du système immunitaire......................... 87 Démarche expérimentale...................................................................................... 88 3. Objectif 3 :................................................................................................................ 88 a) Obésité d’origine génétique: une situation d’inflammation chronique exacerbée88 b) Démarche expérimentale...................................................................................... 89 Resultats ........................................................................................................................................ 91 Chapitre 1 ...................................................................................................................................... 93 Chapitre 2 .................................................................................................................................... 125 Chapitre 3 .................................................................................................................................... 155 C hapitre 4 ................................................................................................................................... 169 Discussion générale..................................................................................................................... 203 Synthèse des principaux résultats................................................................................................ 205 Choix des modèles expérimentaux.............................................................................................. 207 Conséquence de l’obésité sur la réaction inflammatoire............................................................. 209 Obésité et vulnérabilité à une infection....................................................................................... 212 Obésité et troubles du comportement et de la cognition ............................................................. 216 Les acteurs biologiques mis en jeu.............................................................................................. 221 Conclusion et perspectives .......................................................................................................... 229 Bibliographie............................................................................................................................... 237 Publications et communications.................................................................................................. 279 Abréviations ................................................................................................................................ 283 Index des figures ......................................................................................................................... 287 16 AvantAvant-propos 17 18 AvantAvant-propos Le cerveau a longtemps était considéré comme un organe privilégié du point de vue immun, puisque la barrière hématoencéphalique (BHE), grâce à ses jonctions serrées, limitent la transmigration des cellules de l’immunité spécifique au sein du parenchyme cérébral. Toutefois, le cerveau possède un système de défense qui, en plus de s’activer en réponse aux stimuli immuns, communique avec le système immunitaire (Ader et al., 1995). La réponse immunitaire est la stratégie de défense mise en jeu par l’organisme lorsque l’agression de l’individu prend la forme d’un agent pathogène. Elle est coordonnée par des médiateurs moléculaires appelés cytokines qui assurent la communication entre le système immunitaire et le système nerveux. Par leur action sur le cerveau, les cytokines sont à l’origine d’un cortège de modifications physiologiques et comportementales telles que la fièvre, la fatigue, la diminution de la prise alimentaire et le repli sur soi. Ces symptômes non spécifiques développés par l’individu en réponse aux cytokines sont regroupés sous le terme d’ « état de maladie » et représentent une stratégie adaptative permettant à l’individu de retrouver son état d’équilibre, de bien-être initial (Dantzer, 2001). Une caractéristique essentielle de l’état de maladie est donc son aspect transitoire, ce qui dépend de façon essentielle des multiples mécanismes mis en jeu pour réguler l’expression et l’action des cytokines dans le cerveau (Dantzer et al., 2008). Mais dans certains cas liés à une inflammation chronique, le comportement de maladie peut laisser place à une situation de dysfonctionnement neuronal et au développement de troubles de l’humeur et de la cognition. Dans ce contexte, l’obésité, en tant que situation inflammatoire à bas bruit, pourrait permettre l’étude des implications physiopathologiques de l’altération de la régulation des cytokines. L’obésité est devenue la première maladie non infectieuse de l’histoire. C’est une véritable épidémie qui frappe aussi bien les pays industrialisés que les pays en voie de développement. L’Organisation Mondiale de la Santé (OMS) définit « le surpoids et l'obésité comme une accumulation anormale ou excessive de graisse corporelle qui peut nuire à la santé ». L’obésité est associée à un état inflammatoire chronique caractérisé par une augmentation de la sécrétion de nombreuses molécules inflammatoires comme le TNF-α et l’IL-6 (Clement et al., 2004) en périphérie mais également en central (De Souza et al., 2005). 19 De plus, l’intensité de la situation inflammatoire semble être liée au degré d’obésité. Ainsi, il est possible de distinguer différentes situations d’obésité : une obésité modérée qui ne s’accompagne pas forcément de pathologies comorbides et une obésité morbide associée à différents types de complications comme des maladies cardio-vasculaires, de l’hypertension artérielle ou un diabète de type 2. L’obésité s’accompagne également d’une forte prévalence de troubles de l’humeur (anxiété, dépression) et de la cognition. De plus, il a pu être observé une réduction des taux circulants de Trp chez les sujets obèses (Brandacher et al., 2006; Breum et al., 2003). Au sein de l’organisme, le Trp, qui participe à la synthèse protéique comme tous les autres acides aminés, est aussi utilisé soit comme précurseur de la synthèse de sérotonine (5-HT), soit catabolisé via la voie de la kynurénine, favorisant alors la formation de composés neurotoxiques agissant sur les récepteurs au glutamate (Wirleitner et al., 2003). Il est désormais connu que les troubles de l’humeur et de la cognition sont entre autre, fortement associés à une altération des systèmes sérotoninergiques et glutamatergiques (Muller and Schwarz, 2007). De la même façon, la production de composés neurotoxiques issus de la voie de la kynurénine pourrait être impliqués dans la mise en place de troubles de l’humeur et dans l’altération de la mémoire, de l’apprentissage et de la cognition (Baran et al., 1999; Heyes et al., 1989). Ainsi, ces données suggèrent qu’en conditions inflammatoires, la dérégulation du métabolisme du Trp pourrait jouer un rôle causal dans l’apparition des troubles de l’humeur et de la cognition. Différentes données expérimentales obtenues dans notre laboratoire et complétant celles décrites dans la littérature notamment chez l’homme, nous ont amené à proposer qu’une des interactions entre le SI et le métabolisme du Trp passe par l’activation de l’enzyme initiant le catabolisme du Trp en conditions inflammatoires, l’indoléamine 2,3-dioxygénase (IDO). En effet, il a été montré au laboratoire que l’activité enzymatique de l’IDO est fortement induite en périphérie ainsi qu’au niveau cérébral après une stimulation aiguë ou chronique du SI chez la souris (Lestage et al., 2002; Moreau et al., 2005) et que cette activation est associée à l’apparition de changements comportementaux (Frenois et al., 2007; Moreau et al., 2008b) Dans ce contexte, ce travail de thèse a visé à identifier les mécanismes sous-tendant les interactions entre obésité, inflammation chronique, activation neuroendocrinienne et troubles de l’humeur et de la cognition. 20 Introduction générale 21 22 Introduction générale A. Cytokines et réaction inflammatoire 1. L’immunité innée Le système immunitaire est un système extrêmement complexe dont le but est de maintenir l’intégrité de l’individu, en discriminant le « soi » du « non soi ». Le système immunitaire a donc la tâche de reconnaître et de tolérer d’une part les cellules appartenant à l’organisme constituant le soi et d’éliminer d’autre part les molécules du non soi, encore dénommées antigènes. L’immunité innée est considérée comme la première ligne de défense de l’organisme contre les agents pathogènes et elle est toujours activée lors de l’infiltration d’un agent pathogène dans le corps. Elle met en jeu principalement les cellules phagocytaires mononucléaires (monocytes et macrophages) ou polynucléaires (neutrophiles) qui sont capables de capturer et de détruire les éléments du non soi par phagocytose. 2. La réaction de phase aiguë Durant de nombreuses années la caractérisation de l’inflammation se faisait sur des critères visuels : rubor (rougeur), tumor (tuméfaction), calor (chaleur), dolor (douleur). Ces critères furent décrits pour la première fois par Cornélius Celsus dès le premier siècle avant J.C. Puis ce fut Claude Galien (130-200 après J.C) qui décrivit le cinquième signe cardinal : functio laesa ou perte de fonction. De nos jours, l’inflammation est décrite comme la succession de modifications se produisant dans un tissu vivant lorsque celui-ci est lésé (Punchard et al., 2004). La réponse inflammatoire correspond à la composante locale d’un ensemble de mécanismes de défense de l’hôte regroupé sous le nom de réaction de phase aiguë (Figure 1). Ce terme désigne les modifications physiologiques adaptatives qui ont pour objectifs de stopper la progression des lésions tissulaires, d’isoler et d’éliminer les agents infectieux et d’activer les processus de réparation nécessaires au rétablissement de l’état initial de l’organisme (Baumann and Gauldie, 1994). Cette réaction se décline en trois niveaux : la composante locale ou réaction inflammatoire, la composante systémique et la composante centrale et met en jeu des médiateurs de l’inflammation appelés cytokines. 23 Composante centrale Fièvre Activation de l’axe corticotrope Fatigue Repli sur soi Prise alimentaire Composante locale Composante systémique Vasodilatation des capillaires sanguins Exsudation des protéines plasmatiques Migration des cellules de l’immunité innée Phagocytose Protéine de phase aiguë Activation de l’hématopoïèse Modifications métaboliques Nutriments et minéraux Cytokines Inflammatoires : IL-1β, TNFα, Agents Phagocyte Figure 1 : La réponse inflammatoire 3. Les cytokines Les cytokines sont des médiateurs protéiques solubles qui contrôlent le déroulement de la phase aiguë. Lors de la détection d’un agent pathogène, les cellules de l’immunité innée reconnaissent des motifs moléculaires à la surface des micro-organismes infectieux, appelés PAMPs (pathogen-associated molecular patterns) (Medzhitov, 2001). La fixation des PAMPS à leurs récepteurs spécifiques PRR (pattern-recognition receptors), tels que ceux appartenant à la famille des TLR (toll-like receptors) active des voies de signalisation intracellulaires contrôlant la transcription de gènes impliqués dans la réponse inflammatoire. Ceci aboutit rapidement à la libération par les phagocytes de nombreuses molécules dans le milieu extracellulaire dont les cytokines. Ces cytokines sont des polypeptides de masse 24 moléculaire en général inférieure à 60 kDa, produits par différents types cellulaires. Les interleukines (IL) tiennent leur nom de leur rôle d’agent de communication entre les leucocytes, mais elles agissent en réalité sur de nombreux autres types cellulaires. Trente cinq cytokines portent aujourd’hui le nom d’interleukines (Chen et al., 2006; Collison et al., 2007). Les chémokines ou chimiokines sont responsables de la migration des cellules du système immunitaire sur le site de l’infection ou de la lésion par leur pouvoir chemioattractant (Matsukawa et al., 2000). Les interférons (IFN) sont entre autre impliqués dans la lutte contre les virus dont ils inhibent la réplication (Stetson and Medzhitov, 2006). Les tumor necrosis factors (TNF), capables d’induire une nécrose tumorale, et les transforming growth factors (TGF), qui peuvent induire la croissance des fibroblastes, sont également impliqués dans la régulation du système immunitaire (Fiers, 1991; Wahl, 1992). Les cytokines sont impliquées dans la communication intercellulaire du système immunitaire. Ce sont des médiateurs à court rayon d’action ayant une fonction autocrine (sur la cellule productrice) ou paracrine (sur les cellules voisines) ou agissant plus rarement à distance comme de véritables hormones (fonction endocrine). Elles forment un réseau de molécules interdépendantes qui influencent leur propre synthèse et la synthèse des autres cytokines du réseau par des boucles de rétroaction positives et négatives (Cavaillon, 1993; Cavaillon and Haeffner-Cavaillon, 1993). Au cours de la réaction de phase aiguë, les cytokines exercent des activités biologiques multiples et souvent redondantes. Les principales cytokines inflammatoires impliquées dans la réaction de phase aiguë sont l’interleukine-1β (IL-1β), le facteur de nécrose tumorale TNFα et l’interleukine-6 (IL-6). En plus de leur propre synthèse, l’IL-1β et le TNFα peuvent chacun induire la production de l’autre ainsi que la synthèse d’IL-6 (Brouckaert et al., 1993; Dinarello et al., 1987; Libert et al., 1990). Ces trois cytokines sont parfois appelées « triade inflammatoire » car elles exercent leur effet de façon synergique et souvent redondante. Cette réaction inflammatoire est régulée par la production de cytokines antiinflammatoires. Parmi elles, l’IL-4 inhibe la synthèse d’IL-1β et augmente celle de l’antagoniste du récepteur de l’IL-1 (IL-1ra) (Jenkins and Arend, 1993; Vannier et al., 1992). L’IL-10 inhibe la synthèse de l’IL-1, de l’IL-6 et du TNFα par les macrophages activés (Fiorentino et al., 1991). Le TGFβ (transforming growth factor β) inhibe la production d’IL-1 et de TNFα par les macrophages activés par du lipopolysaccharide (LPS), un fragment de paroi de bactéries à Gram négatif, qui est couramment utilisé pour induire une réponse inflammatoire de façon expérimentale (Chantry et al., 1989). L’IL-6 est elle aussi parfois 25 considérée comme une cytokine anti-inflammatoire car elle réduit notamment la production de TNFα induite par le LPS (Aderka et al., 1989; Benveniste et al., 1995). L’action biologique du TNFα est inhibée par la forme soluble du récepteur du TNFα (Higuchi and Aggarwal, 1993). Lors d’une infection aiguë, l’immunité innée activée met donc en jeu une réponse inflammatoire non spécifique et induit une production massive mais transitoire de cytokines, ne dépassant pas 24 à 48 h. Cependant, cette réponse inflammatoire peut devenir chronique lorsque le système immunitaire ne parvient pas à éliminer le pathogène. La réponse immunitaire spécifique ou réponse adaptative alors mise en place met en jeu les macrophages qui libèrent l’IL-12, recrutant les lymphocytes T de type helper et les cellules natural killer (NK) (Brunda, 1994). Ces dernières activées sécrètent l’IFNγ provoquant la différenciation des lymphocytes T vers un phénotype Th1. La sous-population Th1 induit une réponse immune à médiation cellulaire (phagocytose) en agissant comme activateur des macrophages au travers d’une forte production d’IFNγ (Janeway et al., 1997). La réponse de type Th2, à médiation humorale (anticorps), permet d’induire la production d’IL-4 et d’IL-10 agissant notamment comme régulateur de la réponse Th1 (Mosmann et al., 1986; Tada et al., 1978). L’inflammation chronique peut alors durer plusieurs semaines et dans certains cas des années (tuberculose, polyarthrite rhumatoïde…). Résumé : Les cytokines coordonnent la réponse inflammatoire afin d’éliminer l’agent pathogène. Une infection aiguë ou chronique entraîne une production massive de cytokines dont l’IL-1β, le TNFα, l’IL-6 ou encore l’IFNγ. 4. La réaction inflammatoire locale L’inflammation locale s’effectue en grande partie par des échanges entre le sang et le tissu lésé. Les cellules endothéliales qui régissent ces échanges jouent un rôle majeur dans la réaction inflammatoire. Ces cellules activées par les cytokines sont capables de développer une activité coagulante conduisant à une coagulation intravasculaire (Shimizu et al., 1992). 26 Les cellules endothéliales jouent aussi une rôle actif dans les phénomènes d’adhésion puisqu’elles expriment des molécules d’adhésion complémentaires à celles des leucocytes (Makgoba et al., 1992). L’IL-1β et le TNFα régulent la synthèse de ces molécules par les cellules endothéliales ce qui permet la diapédèse des leucocytes vers le site de la réaction inflammatoire (May and Ager, 1992). Ces cytokines induisent également la production de prostaglandines par les fibroblastes et les macrophages. Ces médiateurs exercent un rôle clé dès les premiers stades de l’inflammation en augmentant la perméabilité vasculaire. Les prostaglandines régulent en retour la synthèse des cytokines inflammatoires (Dendorfer et al., 1994). Localement, l’IL-1β et le TNFα induisent la production de radicaux libres dérivés de l’oxygène notamment par les macrophages et les cellules endothéliales. Ces molécules participent à la destruction des pathogènes de par leur toxicité mais peuvent aussi provoquer des lésions des tissus de l’hôte (Klebanoff, 1980). D’autres activités locales des cytokines inflammatoires comme la libération d’enzymes par les ostéoclastes, les cellules synoviales et les fibroblastes permettent le développement de l’inflammation au niveau du site d’infection. Le TNFα induit également une protéolyse musculaire à l’origine de la libération d’acides aminés qui servent à une synthèse protéique (Moldawer et al., 1988). La douleur associée à l’inflammation est le résultat de l’action des kinines sur les terminaisons des neurones afférents. La synthèse de ces composés est induite à la fois par les cytokines, les autres médiateurs de l’inflammation et le complément (Dray and Perkins, 1993). 5. La réaction inflammatoire systémique Une fois synthétisées et libérées localement au site de l’inflammation, les cytokines peuvent être distribuées dans tout l’organisme par l’intermédiaire de la circulation sanguine et entraînent alors des modifications systémiques. Les cytokines activent l’hématopoïèse permettant le remplacement continu des phagocytes. Le taux de certaines protéines plasmatiques normalement présentes dans le sang augmente rapidement. Ces « protéines de la phase aiguë » dont la protéine C réactive (CRP), la protéine amyloïde A sérique et l’haptoglobine, contribuent à la régulation négative de l’inflammation (Berczi et al., 2000). La CRP est une des principales protéines de la phase aiguë dont la production est induite par l’IL-6 au niveau du foie et elle joue un rôle capital dans la réaction inflammatoire systémique puisqu’elle participe à l’activation de la cascade du complément (Mold et al., 1999), stimule la phagocytose (Schultz and Arnold, 1990) et peut induire la production d’IL-6, d’IL-1β et de 27 TNFα par les monocytes (Ballou and Lozanski, 1992; Li and Chen, 2003). Enfin la CRP stimule également la production de cytokines anti-inflammatoires telles que l’IL-1ra et l’IL10 (Mold et al., 2002; Pue et al., 1996; Tilg et al., 1993). D’autre part, il y a diminution de la concentration plasmatique d’un certain nombre de nutriments et minéraux (zinc, fer, sélénium), ainsi que l’altération des principaux métabolismes, en particulier l’induction d’une hypertriglycéridémie (Grunfeld and Feingold, 1992), une néoglucogénèse et un catabolisme protéique accrus (Lennie et al., 1995; Moldawer et al., 1988). Ces régulations métaboliques, ainsi que la perte de poids associée, seraient une adaptation de l’individu afin de diminuer l’énergie nécessaire à la recherche de nourriture, et non une complication due à l’inflammation (Cuthbertson, 1982). Cette théorie de la réponse adaptative est confortée par les travaux montrant que la diminution de la prise alimentaire de souris infectées par la bactérie Listéria augmente la survie des animaux, alors que leur gavage la diminue (Murray and Murray, 1979). Ainsi l’organisme met en place pendant les premières heures suivant l’infection un système de défense périphérique de l’organisme via la production de cytokines. Mais cette réponse inflammatoire présente également une composante centrale. 6. La composante centrale de la réaction de phase phase aiguë Lors d’une infection, l’individu malade a de la fièvre et présente une augmentation de la fatigue et du sommeil. Il se sent faible, présente une modification de son comportement qui se traduit entre autres par une perte d’intérêt pour les activités sociales et une diminution de sa prise alimentaire. De plus, il éprouve des difficultés à se concentrer (Dantzer, 2001). Ces modifications, ou symptômes non spécifiques, sont régulées au niveau du système nerveux central (SNC) et sont primordiales dans le maintien de l’homéostasie (Hopkins and Rothwell, 1995). Pourtant le cerveau a longtemps été considéré comme un organe privilégié du point de vue immunologique puisque la barrière hématoencéphalique (BHE) et ses jonctions serrées empêchent la transmigration des cellules du système immunitaire spécifique. Toutefois le cerveau possède son propre système de défense qui peut se mettre rapidement en alerte à la moindre infection systémique. Les récepteurs TLR des PAMP, ainsi que les récepteurs des cytokines, sont présents au niveau des cellules endothéliales et des organes 28 circumventriculaires (OCV) où les vaisseaux sanguins n’ont pas de jonctions serrées semblables à celles qui caractérisent la BHE du tissu nerveux. A la suite d’une infection périphérique par un agent pathogène, les cellules endothéliales et les structures dépourvues de BHE sont les premières à réagir (Lacroix and Rivest, 1998). La réaction inflammatoire s’étend ensuite progressivement dans tout le tissu cérébral, mettant en jeu principalement les cellules microgliales qui sont les macrophages résidents du cerveau, et les astrocytes (Aloisi, 2001; Dong and Benveniste, 2001). Comme à la périphérie, la réponse cérébrale se fait via des molécules de type protéique telles que les cytokines, des molécules lipidiques comme les prostaglandines et les radicaux libres (Brochu et al., 1999; Nadeau and Rivest, 2000, 2001). Les cytokines, agissant comme des agents de communication entre le système immunitaire et le système nerveux central, ont une action au niveau cérébral et induisent l’apparition d’un véritable état de maladie (Dantzer et al., 2008; Kelley et al., 2003; Konsman et al., 2002). a) Voies Voies d’accès des cytokines au système nerveux central Plusieurs mécanismes ont été proposés pour expliquer la relation qui existe entre les cytokines inflammatoires périphériques et leur production dans le système nerveux central, impliquant d’une part une voie d’accès humorale et d’autre part une voie d’accès nerveuse. (1) La voie humorale Plusieurs études montrent que l’IL-1β, le TNFα et l’IL-6 pourraient entrer dans le cerveau par des systèmes de transport actif saturables au niveau des cellules endothéliales de la BHE, même si les transporteurs responsables restent à identifier (Banks et al., 1994; Banks et al., 1991; Pan et al., 1997). De cette façon, il est possible que les cytokines circulantes induisent la synthèse des cytokines cérébrales par les cellules microgliales ou les macrophages périvasculaires situés à proximité de la BHE. Les cytokines peuvent aussi atteindre le cerveau au niveau des OCV. Ces capillaires sanguins présentent de larges espaces périvasculaires qui facilitent la diffusion des molécules. (Gross, 1992). A ce niveau, les cytokines pourraient quitter la circulation sanguine, entrer dans ces espaces périvasculaires puis diffuser dans le parenchyme adjacent pour atteindre les cellules microgliales et les macrophages périvasculaires (Konsman et al., 2002; Konsman et al., 2000). Il a en effet été démontré que l’induction d’IL-1β par le LPS est rapide dans les OCV et les vaisseaux sanguins situés à l’interface périphérie/cerveau, alors qu’elle apparaît plus tardivement dans le parenchyme cérébral (Konsman et al., 1999). 29 Il a aussi été proposé que les cytokines induisent la synthèse de molécules intermédiaires comme les prostaglandines en agissant sur les récepteurs au niveau des cellules endothéliales. Les cytokines cérébrales induisent l’expression par les cellules microgliales et les macrophages périvasculaires de l’enzyme COX-2 qui catalyse la synthèse des prostaglandines E2 (PGE2) à partir de l’acide arachidonique (Elmquist et al., 1997; Lacroix and Rivest, 1998; Rivest, 1999). (2) La voie nerveuse Puisque deux des points cardinaux de l’inflammation (chaleur et douleur) correspondent à des modalités sensorielles, il a été proposé que les cytokines puissent activer des neurones sensoriels qui transmettent le message de la périphérie vers le SNC (Dantzer, 1994). Lorsque le LPS ou les cytokines sont injectés dans la cavité abdominale, ils provoquent une inflammation locale au niveau du péritoine. Or les branches afférentes du nerf vague qui assurent l’innervation de la cavité péritonéale contiennent au sein de leur gaine périneurale, une gaine de tissu conjonctif qui entoure le nerf, des macrophages qui expriment les TLR et qui sont capables de produire de l’IL-1β en réponse à une injection intrapéritonéale de LPS (Goehler et al., 1999). Les neurones sensoriels du nerf vague expriment les récepteurs de l’IL-1 et leur activité électrique peut être stimulée par l’IL-1β circulante (Ek et al., 1998). Les afférences vagales projettent vers le noyau du tractus solitaire et l’injection de LPS ou d’IL-1β en périphérie active dans cette structure des neurones qui émettent des projections vers de nombreuses structures du SNC, dont le noyau paraventriculaire de l’hypothalamus contenant les neurones à CRH de l’axe corticotrope (Elmquist and Saper, 1996; Ericsson et al., 1994; Sagar et al., 1995). L’implication de cette voie nerveuse dans la production et l’action des cytokines cérébrales a été montrée par des expériences de transsection du nerf vague. Des animaux vagatomisés présentent une atténuation des modifications comportementales normalement observées après l’injection de LPS confirmant ainsi l’implication du nerf vague dans la réponse centrale à l’inflammation (Bluthe et al., 1996a, b; Bluthe et al., 1994). 30 b) L’état de maladie (1) La fièvre Une des premières réponses adaptées de l’organisme est la fièvre. Elle est un des signes majeurs de l’inflammation systémique. Cette élévation de la température corporelle résultant d’une élévation du point de consigne thermique (Kluger, 1991) est régulée par les neurones thermosensibles de l’aire préoptique de l’hypothalamus (Boulant, 2000). La fièvre participe à la lutte contre l’infection notamment car elle stimule la prolifération des cellules de l’immunité tout en inhibant la prolifération de nombreux organismes pathogènes (Kluger, 1991; Romanovsky and Szekely, 1998). C’est au 20ème siècle que Kluger démontre, en étudiant les effets antipyrétiques chez le lézard, que la prévention de la fièvre augmente le taux de mortalité des animaux (Kluger et al., 1975). La fièvre est le premier effet attribué à une action centrale des cytokines inflammatoires alors connues sous le terme de pyrogènes endogènes (Atkins, 1960). L’IL-1β est un de ces pyrogènes endogènes puisque son administration par voie intraveineuse (iv) chez l’homme et par voie intracérébroventriculaire (icv) chez le rongeur induit une réponse fébrile (Avitsur et al., 1997; Nemunaitis et al., 1994). De plus, l’IL-1ra injectée par voie intrapéritonéale (ip) inhibe la fièvre induite par le LPS (Luheshi et al., 1996). Mais l’IL-6 parait tout aussi indispensable à la mise en place de la fièvre que l’IL-1β puisque chez des souris dont le gène de l’IL-6 a été inactivé (IL6-KO), l’injection de LPS ou d’IL-1β n’induit pas de réponse fébrile (Chai et al., 1996). L’IL-1β et l’IL-6 affecteraient l’activité neuronale de l’aire préoptique responsable de la régulation du point de consigne via l’action des prostaglandines (Xin and Blatteis, 1992). (2) Regulation de l’axe corticotrope Les cytokines inflammatoires activent l’axe hypothalamo-hypophyso- corticosurrénalien (axe HPA) ou axe corticotrope (Turnbull and Rivier, 1995). Cet axe est constitué par une partie centrale, le noyau paraventriculaire (PVH) de l’hypothalamus contenant des neurones à CRH (corticotropin releasing hormone), les cellules corticotropes à ACTH (adrenocorticotropin hormone) de l’antéhypophyse, et la partie corticale de la glande surrénale qui sécrète les glucocorticoïdes (GC) impliqués dans la réponse au stress (Figure 2). Suite à une activation par les centres nerveux supérieurs, les peptides hypothalamiques : la CRH et l’arginine vasopressine (AVP) libérées par l’hypothalamus, stimulent la libération dans la circulation sanguine de l’ACTH par l’antéhypophyse. L’ACTH stimule alors la 31 synthèse et la libération des glucocorticoïdes par le cortex surrénalien. Les glucocorticoïdes exercent un rétrocontrôle négatif sur l’activité de l’axe corticotrope au niveau de l’hypophyse, de l’hypothalamus et des centres nerveux supérieurs. L’axe corticotrope est entre autres activé par les cytokines inflammatoires IL-1, IL-6 et le TNFα (Besedovsky et al., 1991; Tilders et al., 1994). L’IL1-β, le TNFα et l’IL-6 augmentent l’expression et la sécrétion de CRH (Berkenbosch et al., 1987; Suda et al., 1990; Watanobe and Takebe, 1992), ainsi que la sécrétion d’ACTH et corticostérone plasmatique (van der Meer et al., 1996). Les glucocorticoïdes agissent en retour sur les cellules productrices de cytokines pour en inhiber la synthèse (Akira et al., 1990; Baybutt and Holsboer, 1990). Cet effet immunosuppresseur des glucocorticoïdes apparaît alors comme un phénomène de protection de l’organisme contre l’infection au cours des processus inflammatoires (Yeager et al., 2004). Hypothalamus antérieur CR Hypophyse ACT Glande surrénale Glucocorticoïdes Catécholamines Minéralocorticoïdes Figure 2 : L’axe hypothalamohypothalamo-hypophysohypophyso-corticosurrénalien 32 (3) Réponse neurochimique Les cytokines ont également des effets sur la neurotransmission monoaminergique et en particulier sur la sérotonine (5-HT), la noradrénaline (NA) et la dopamine (DA). En effet, l’administration d’IL-1β induit une augmentation du turnover des systèmes 5-HT, NA et DA dans l’hypothalamus, l’hippocampe, ainsi que le noyau accumbens (Dunn, 1988b; Kabiersch et al., 1988; Linthorst et al., 1995; Lacosta et al., 1994). De plus, ces mêmes effets sont également observés après l’injection de LPS et peuvent être atténués par l’administration d’IL-1ra (Dunn, 2000; Linthorst et al., 1995). Outre l’IL-1β, d’autres cytokines telles que l’IL-6, le TNFα et l’IL-2 sont également capables d’affecter l’activité de la 5-HT, NA et DA dans différentes régions cérébrales dont le cortex préfrontal, l’hypothalamus et l’hippocampe (Pauli et al., 1998; Zalcman et al., 1994). Enfin, l’IFNγ active l’expression d’une enzyme l’indoléamine 2,3-dioxygénase (IDO) qui en induisant la dégradation du tryptophane va entraîner la diminution du pool de 5-HT (Wirleitner et al., 2003). (4) L’anorexie inflammatoire On constate chez les individus malades une perte d’appétit qui peut sembler a priori paradoxale. En effet l’activité pyrogène des cytokines laisse à penser que pour compenser ce coût énergétique, l’organisme va avoir besoin d’un apport alimentaire conséquent. Pourtant cette anorexie inflammatoire est une stratégie de lutte contre l’agent pathogène puisqu’elle réduit la disponibilité des nutriments (dont le fer et le zinc) essentiels à la prolifération des micro-organismes pathogènes. Ainsi l’augmentation de la température corporelle associée à la faible teneur en nutriments du milieu freine la multiplication bactérienne (Weinberg, 1984). Une injection centrale d’IL-1β (McCarthy, 2000; Plata-Salaman et al., 1988; Uehara et al., 1989), d’IL-6 (McCarthy, 2000; Plata-Salaman et al., 1996) ou de TNFα (McCarthy, 2000; Plata-Salaman et al., 1988) entraîne une diminution de la prise alimentaire. De plus, l’injection centrale d’IL1-ra atténue l’anorexie induite par une injection périphérique d’IL-1β ou de LPS (Kent et al., 1996; Laye et al., 2000), même si elle ne la bloque pas complètement. Par contre, une injection de LPS chez des souris knock-out pour le récepteur fonctionnel de l’IL-1 (IL-1RI KO) induit tout de même une anorexie. L’absence d’action de l’IL-1β est donc probablement compensée par une autre cytokine comme le TNFα (Bluthe et al., 2000a). En effet, l’immuno-neutralisation du TNFα périphérique chez le rat atténue l’anorexie due au LPS (Sharma et al., 1992). Le rôle de l’IL-6 est plus difficile à mettre en évidence. L’injection 33 de LPS à des souris knock-out pour le gène de l’IL-6 (IL-6 KO) entraîne tout de même une anorexie, donc l’IL-6 ne semble pas indispensable à l’apparition de l’anorexie inflammatoire (Fattori et al., 1994). (5) Effets comportementaux : le le comportement de maladie Lors d’épisodes infectieux, un malaise s’installe chez l’individu malade, accompagné de difficultés de concentration, d’une grande faiblesse et d’un manque d’intérêt pour son entourage (Dantzer, 2001). C’est ce que l’on nomme comportement de maladie et qui ne regroupe que les altérations comportementales de l’état de maladie (Hart, 1988). Ces changements comportementaux apparaissent être l’expression d’un état motivationnel qui réorganise les priorités de l’individu malade dans le but de lutter contre l’infection (Dantzer et al., 1999). Comme les réponses neurendocriniennes et neurochimiques, les réponses comportementales observées au cours de l’infection apparaissent également suite à l’administration systémique ou centrale de cytokines comme l’IL-1β (Dantzer, 2001; Kent et al., 1992; Larson and Dunn, 2001; Valentine et al., 1998). Le désintérêt du sujet malade pour son environnement peut être modélisé chez le rongeur par une diminution du comportement d’exploration sociale. L’IL-1β est la cytokine la plus impliquée dans la diminution des interactions sociales lors de l’épisode infectieux. Injectée à la périphérie ou dans les ventricules cérébraux, elle induit une diminution du temps d’exploration sociale (Bluthe et al., 1997). L’injection d’IL-1ra bloque la diminution de l’exploration sociale induite par l’IL-1β, que ces deux cytokines soient injectées par la même voie (centrale/centrale ou périphérique/périphérique) ou par des voies différentes (IL-1ra centrale/ IL-1β périphérique) (Bluthe et al., 1995; Kent et al., 1992). L’IL-1ra injecté par voie intrapéritonéale (ip) bloque les effets du LPS sur l’exploration sociale. Mais ce blocage n’a pas lieu lorsque l’IL-1ra est injecté par voie icv (Bluthe et al., 1992). Les souris IL-1RI KO présentent néanmoins une diminution du temps d’exploration sociale suite à la stimulation périphérique par le LPS, grâce à un phénomène de compensation par le TNFα (Bluthe et al., 2000a). En effet, la diminution d’interaction sociale induite par le LPS chez la souris IL-1RI KO est inhibée par l’administration centrale d’un fragment du récepteur soluble du TNFα, ce qui démontre qu’en l’absence d’IL-1 fonctionnelle, l’action centrale du TNFα est responsable de la diminution du temps d’exploration sociale (Bluthe et al., 2000a). L’administration centrale ou périphérique de TNFα entraîne également une diminution du temps d’exploration sociale (Bluthe et al., 1994). Cependant, celle-ci est bloquée par l’injection d’IL-1ra, ce qui suggère que l’effet du TNFα sur l’interaction sociale est indirect (Bluthe et al., 1994). L’IL-6 est elle aussi impliquée 34 dans la diminution d’exploration sociale consécutive à l’administration ip de LPS ou d’IL-1β, puisqu’elle est atténuée chez les souris déficientes pour le gène de l’IL-6 (Bluthe et al., 2000b) Résumé En plus de leur action locale, les cytokines sont capables grâce à leur propriété endocrine d’agir sur le SNC pour réguler la composante centrale de la réaction inflammatoire. Les cytokines agissent en central par l’intermédiaire des voies humorale et nerveuse et entraînent entre autre, une hyperactivité de l’axe HPA, une altération de la neurotransmission monoaminergique ainsi que des changements comportementaux regroupés sous le terme de comportement de maladie. B. Cytokines et Troubles Troubles de l’humeur et de la cognition cognition Comme nous l’avons vu précédemment, l’action cérébrale des cytokines inflammatoires est responsable des modifications comportementales observées chez l’individu et l’animal malades, telles qu’un repli sur soi et la diminution de la prise alimentaire. Le comportement de maladie est normalement réversible en raison de la capacité du système immunitaire à éliminer l’agent pathogène et à mettre en place des mécanismes qui s’opposent à la production et à l’action des cytokines pro-inflammatoires périphériques et centrales. Mais la dérégulation des mécanismes qui contrôlent le comportement de maladie peut avoir lieu chez des patients vulnérables. Leur réponse immunitaire est plus intense du fait de la dérégulation de la balance entre cytokines pro et anti-inflammatoires au profit de l’inflammation. Cette dérégulation peut aussi avoir lieu chez des patients dont l’inflammation devient chronique. C’est le cas de sujets recevant des immunothérapies. On assiste alors à la mise en place de troubles de l’humeur, définition qui regroupent à la fois les symptômes de type dépressif et anxieux, et de troubles cognitifs (Bonaccorso et al., 2001). Nous allons maintenant nous intéresser à la relation entre cytokines et troubles de l’humeur et de la cognition dans le cas d’une situation inflammatoire chronique. Ces situations inflammatoires peuvent être diverses puisqu’elles peuvent être la conséquence de pathologies telles que des polyarthrites, de traitement comme des immunothérapies, mais 35 également des situations d’inflammation chronique à bas bruit telles que décrites dans le vieillissement ou l’obésité. 1. Cytokines et troubles de l’humeur a) Troubles anxieux Le stress est aujourd’hui un mot utilisé aussi bien dans le langage quotidien que dans le domaine médical. Le stress correspond à l’action de l’environnement sur l’organisme et aux réponses de ce même organisme pour s’adapter à son environnement. Les ajustements comportementaux permettent à l’organisme d’agir directement sur l’environnement et l’activation neuroendocrinienne, qui met en jeu principalement l’axe corticotrope et le système nerveux autonome, adapte le milieu intérieur aux besoins de l’action comportementale. Ce fonctionnement général est fortement modulé par les caractéristiques individuelles de réactivité qui définissent la personnalité psychobiologique, conditionnée par des facteurs génétiques, des influences précoces et l’expérience préalable du sujet (Ramos and Mormede, 1998). Les troubles anxieux constituent un ensemble de troubles psychologiques et psychiatriques très divers qui ont en commun d'avoir une anxiété pathologique comme symptôme principal. L'anxiété n'est pas en soi pathologique. On parle de trouble anxieux lorsque cette émotion devient envahissante et qu'elle entraîne de manière permanente ou discontinue une souffrance significative ou une gêne au fonctionnement individuel. Une anxiété intense peut-être présente au cours d'autres troubles que les troubles anxieux, dans la schizophrénie par exemple, ou bien dans la dépression , elle est alors associée à d'autres symptômes (Vaccarino et al., 2008). Chez l’homme, le lien entre troubles anxieux et état cytokinergique reste encore peu exploré mais des études réalisées sur des étudiants ont montré que les plus anxieux présentent une production de cytokines pro-inflammatoires (TNFα, IFNγ, IL-6) plus élevée et une production de cytokines anti-inflammatoires (IL-4, IL-10) plus faible (Maes et al., 1998). De plus, il a été montré que des traitements d’immunothérapie à l’IFNα chez des patients atteints d’un cancer entraînent des modifications du comportement dont des troubles anxieux (Raison et al., 2005). Afin d’étudier cette relation, plusieurs tests comportementaux permettant de modéliser les troubles de type anxieux chez l’animal ont été mis au point. Le labyrinthe en croix surélevé (Elevated Plus Maze ou EPM) est un test comportemental largement utilisé pour 36 mesurer les troubles de type anxieux chez les rongeurs de laboratoire (Handley and Mithani, 1984). Le labyrinthe est habituellement construit en forme de croix avec 2 bras ouverts et 2 bras fermés par des parois latérales, le tout surélevé au dessus du sol. L'expérience exploite le conflit, chez les rongeurs, entre la peur des espaces ouverts et le désir d'explorer un nouvel environnement. Un animal anxieux aura naturellement tendance à préférer les espaces clos et sombres aux espaces ouverts et éclairés. Partant de ce principe, l'anxiété comportementale est mesurée par le degré d'évitement des espaces ouverts du labyrinthe (Belzung and Griebel, 2001). Le test d’open-field (OF) consiste à placer l’animal dans un grand espace pourvue de parois empêchant sa fuite. Les déplacements libres de l’animal sont observés, mais aussi son niveau d’anxiété selon qu’il explore préférentiellement la périphérie de l’OF ou le centre qui est plus anxiogène (Prut and Belzung, 2003). Chez la souris, l’injection de LPS à une dose permettant d’induire la synthèse de cytokines cérébrales (Laye et al., 2000) entraîne une diminution d’exploration des bras ouverts de l’EPM sans modification de l’exploration des bras fermés 2 h après l’injection (Lacosta et al., 1999). L’endotoxine aurait donc une action anxiogénique indépendante de l’effet inhibiteur du LPS sur l’activité locomotrice. L’injection ip de LPS ou d’IL-1β entraîne, 2 h après l’injection, une diminution similaire du nombre d’entrées dans les bras ouverts de l’EPM, ainsi qu’une diminution de l’exploration du centre de l’OF (Swiergiel and Dunn, 2007). L’injection d’IL-1β ou de TNFα directement dans le cerveau de rats par voie icv induit 45 minutes plus tard une diminution de l’exploration des bras ouverts de l’EPM, tandis que l’injection d’IL-6 n’a pas d’effet dans ces conditions (Connor et al., 1998). D’autre part, les souris surexprimant l’IL-1ra présentent une augmentation du temps d’exploration des bras ouverts de l’EPM, ainsi que des taux plus faibles de dopamine et de sérotonine suggérant une action régulatrice de l’IL-1 dans les troubles anxieux qui pourrait s’exercer au niveau des systèmes de neurotransmetteurs monoaminergiques (Oprica et al., 2005). L’IL-6 endogène pourrait être impliquée dans la régulation de l’anxiété puisque les souris IL-6 KO présentent une diminution de l’exploration des bras ouverts de l’EPM (Armario et al., 1998). Ainsi la présence de cytokines, lors d’une infection ou encore d’une immunothérapie, semble participer à la mise en place rapide d’épisodes de type anxieux. Mais peu d’études ont été réalisées pour évaluer l’impact des cytokines dans le cadre de patholgies inflammatoires chroniques, ou d’inflammation à bas bruit. 37 b) Troubles dépressifs La dépression est une pathologie dont les signes cliniques sont multiples et se manifestent à différents niveaux : comportemental, psychologique et physiologique. La dépression est difficile à caractériser car elle englobe un ensemble de manifestations cliniques qui peuvent être diagnostiquées en utilisant le DSM (Diagnostic and statistical manual of mental disorders), un manuel qui décrit les différents critères de diagnostic d’un épisode dépressif majeur. Ainsi, le diagnostic d’une dépression majeure est effectif quand cinq des neuf symptômes définis par le DSM IV (comme la diminution de l’intérêt et du plaisir, une humeur dépressive, l’insomnie, la fatigue, la dévalorisation de soi, les troubles de la concentration,…) sont présents presque quotidiennement, pendant au moins 15 jours et dont au moins un des symptômes est soit une humeur dépressive, soit une perte d’intérêt ou de plaisir (DSM Fourth Edition, 1994) Les patients atteints de dépression présentent des caractéristiques biologiques particulières. Ainsi la dépression est associée chez 50 à 70 % des patients à une activation de l’axe HPA (Strohle and Holsboer, 2003). Il a également été constaté des dérégulations des systèmes de neurotransmission sérotoninergiques (5-HT), noradrénergiques (NA) et dopaminergiques (DA) cérébraux (Dursun et al., 2001; Ressler and Nemeroff, 1999, 2000; Schildkraut, 1995). La dépression est aussi associée à des variations d’expression des différents sous-types de récepteurs, dont les récepteurs 5-HT et en particulier 5HT1A, 5HT1D, 5HT2A, 5HT2C, 5HT6 et 5HT7 (Arango et al., 1995; Escriba et al., 2004; Mann et al., 1999; Pauwels, 2000). D’importantes modifications de la fonction immunitaire ont également été mises en évidence chez des patients atteints de dépression majeure. On observe une augmentation des concentrations plasmatiques des cytokines inflammatoires : IL-1β, IL-2, TNFα et IL-6 libérées par les macrophages activés et l’IFNγ par les lymphocytes T (Frommberger et al., 1997; Levine et al., 1999; Maes, 1995; Seidel et al., 1995) et cette augmentation est également observée dans le liquide céphalorachidien des patients souffrant de troubles dépressifs (Levine et al., 1999). De plus, cette augmentation de la libération de cytokines est corrélée avec la sévérité des symptômes psychiatriques dont, entre autres, l’humeur dépressive (Maes et al., 1999). Toutes ces données permettent donc de formuler une hypothèse cytokinergique de la dépression. L’hétérogénéité des symptômes de la dépression rend difficile la réalisation de modèles reproduisant ces désordres chez l’animal et aucun modèle simple ne peut mimer tous 38 les aspects de cette pathologie chez le rongeur. Toutefois plusieurs comportements et symptômes caractérisant la dépression humaine, telles que l’anhédonie ou la résignation ont pu être reproduits chez le rongeur (Cryan and Mombereau, 2004). Dans le test de nage forcée mis au point par Porsolt (FST pour forced swim test), l’utilisation d’antidepresseurs sur des souris a permis d’inhiber le comportement de résignation des animaux, faisant alors de ce test un bon modèle d’évaluation des troubles de type dépressif. Le FST consiste à placer le rongeur dans un cylindre rempli d’eau d’où il ne peut s’échapper et où l’on distingue le temps passé par l’animal à nager et se débattre du temps où il reste immobile (Porsolt et al., 1977). Il existe également un autre paradigme expérimental où l’animal est suspendu par la queue TST (pour tail suspension test) et où l’on discrimine le temps passé par l’animal à essayer de se retourner du temps où il reste immobile (Steru et al., 1985). Dans ces deux tests, le temps que les animaux passent immobiles peut être interprété comme un comportement de résignation. De plus l’utilisation d’antidépresseurs reverse cette immobilité aussi bien dans le FST (Porsolt et al., 1977) que dans le TST (Steru et al., 1985). L’administration périphérique de LPS ainsi que d’IL-1β induit une augmentation du temps d’immobilité des souris dans le TST et le FST (Dunn and Swiergiel, 2005). Cependant il est important de noter que, lors de ces expériences, les tests comportementaux ont été réalisés dans les deux heures suivant la stimulation immune, ne permettant pas de dissocier l’effet du LPS sur le comportement de résignation de son impact global sur l’activité locomotrice. Au laboratoire, Frenois et collaborateurs ont récemment montré que 24 h après l’administration ip de LPS, les souris qui ont retrouvé leur activité locomotrice de base, présentent des troubles de type dépressif se traduisant par une augmentation du temps d’immobilité dans le FST et le TST (Frenois et al., 2007). De plus le blocage de l’activation microgliale par l’administration de minocycline inhibe les troubles de type dépressif induit par le LPS dans ces deux tests (O'Connor et al., 2008). L’IL-6 pourrait jouer un rôle dans la survenue des troubles de l’humeur. Il a été montré que des souris IL-6 KO présentent moins de symptômes dépressifs dans le FST et le TST (Chourbaji et al., 2006). Cependant, une autre étude ne montre aucune différence de comportement entre les souris IL-6 KO et les témoins dans le FST et le TST. Mais un FST réalisé une heure après l’injection d’IL-6 recombinant démontre la mise en place de troubles de type dépressif associée à l’augmentation de l’expression hypothalamique d’IL-6 endogène (Matsumoto et al., 2006). Enfin, l’inactivation du gène du TNFα chez des souris 39 transgéniques diminue le temps d’immobilité dans le FST, indiquant une possible action dépressogène du TNFα endogène (Yamada et al., 2000). Ainsi là encore, la présence de cytokines dans le cadre d’une immunothérapie ou d’une pathologie à composante inflammatoire pourrait être un facteur favorisant le developpement de troubles de l’humeur. 2. Cytokines et troubles cognitifs a) La mémoire L'apprentissage est un processus permettant de conserver des informations acquises, des états affectifs et des impressions capables d'influencer le comportement. L'apprentissage est la principale activité du cerveau, c'est-à-dire modifier constamment sa structure pour mieux refléter les expériences rencontrées. On peut dire aussi que l'apprentissage correspond à l'encodage, première étape du processus de mémorisation. Son résultat, la mémoire, est la persistance de données autobiographiques aussi bien que de connaissances générales. Stimulus Organes sensoriels perception Mémoire sensorielle (msec. -1 sec.) attention répétition Mémoire à court terme (<1 min.) Oubli Mémoire à long terme (jours, mois, anné années) Figure 3 : Les diffé différents types de mé mémoire 40 La mémoire n'est toutefois pas entièrement fidèle et subit des transformations suite aux reconstructions tributaires du traitement en parallèle de l'information dans le cortex. La mémoire sensorielle est la mémoire automatique, fruit de nos capacités perceptives, s'évanouissant généralement en moins d'une seconde (Haenschel et al., 2005). La mémoire à court terme dépend de l'attention portée aux éléments de la mémoire sensorielle. Elle permet de garder en mémoire une information pendant moins d'une minute environ et de pouvoir la restituer pendant ce délai (Cowan, 2008). La mémoire de travail est un système de mémoire active qui s'occupe à la fois du traitement et du maintien des informations à court terme. Elle serait donc plus largement impliquée dans des processus faisant appel à un raisonnement, comme lire, écrire ou calculer par exemple (Baddeley, 2000). La mémoire de travail serait constituée de plusieurs systèmes indépendants, ce qui impliquerait que nous ne sommes pas conscients de toute l'information qui y est stockée à un instant donné. Le cortex préfrontal joue un rôle primordial dans la mémoire de travail. Il permet de maintenir disponibles certaines données nécessaires au raisonnement en cours. Pour ce faire, il doit coopérer avec plusieurs autres aires corticales desquelles il récupère de l'information pour de brèves périodes. Le destin de cette information, autrement dit son passage vers une mémoire à plus long terme dépend probablement de la mise en jeu du système limbique (Cowan, 2008). La mémoire à long terme comprend la mémoire des faits récents, où les souvenirs sont encore fragiles, et la mémoire des faits anciens, où les souvenirs ont été consolidés. Elle peut être schématisée comme la succession dans le temps de 3 grands processus de base : l'encodage, le stockage et la restitution (ou récupération) des informations (Cowan, 2008). L'encodage vise à donner un sens à la chose à remémorer. De la profondeur de l'encodage, donc de l'organisation des données, dépendra l'efficacité de la récupération. Une information, même bien encodée, est toujours sujette à l'oubli. Le stockage peut être considéré comme le processus actif de consolidation rendant les souvenirs moins vulnérables à l'oubli. C'est cette consolidation qui différencie le souvenir des faits récents du souvenir des faits anciens qui, eux, sont associés à un plus grand nombre de connaissances déjà établies (Miller and Matzel, 2000). Finalement, la restitution des souvenirs, volontaires ou non, fait appel à des mécanismes actifs qui vont utiliser les indices de l'encodage. L'information est alors copiée temporairement de la mémoire à long terme dans la mémoire de travail pour être utilisée. Plus un souvenir sera codé, élaboré, organisé, structuré, plus il sera facile à retrouver. Si la mémoire à long terme peut être subdivisée en mémoire explicite et implicite, et même si cette dernière peut être subdivisée à son tour en différents types de mémoire, il ne faut pas perdre 41 de vue que la mémoire humaine constitue une association de différents sous-systèmes en constante interaction (Figure 3). Les recherches récentes apportent une image complexe et très intriquée des fonctions mnésiques et de leur localisation. L'hippocampe, les lobes temporaux, de même que les structures du système limbique qui leur sont reliées, sont essentiels à la consolidation de la mémoire à long terme (Gluck et al., 2003). Aucun neurone isolé ne contient en lui-même l'information nécessaire à la restitution d'un souvenir. La trace mnésique est plutôt latente, ou encore virtuelle, dans la mesure où son existence ne peut être mise en évidence que lorsqu'un réseau de plusieurs neurones interconnectés est activé. L'association des ces groupes de neurones corticaux répartis dans différentes aires cérébrales est rendue possible par certains réseaux de neurones pré-câblés pour accomplir cette tâche. Parmi eux, les circuits de la formation hippocampique, impliqués dans l'établissement de la mémoire explicite à long terme, sont certainement les mieux connus de tous (Wirth et al., 2003). L'information en provenance des cortex associatifs visuels, auditifs ou somatiques parvient d'abord à la région parahippocampique du cortex, puis passe au cortex enthorinal et finalement à l'hippocampe. À travers celui-ci, l'information va passer successivement à travers trois régions distinctes. En effet, l'hippocampe proprement dit est fait des régions pourvues de neurones pyramidaux étroitement groupées, principalement les aires CA1, CA2 et CA3. C'est ce que l'on appelle le circuit ou la boucle trisynaptique de l'hippocampe. C'est dans ces synapses que la mémoire spatiale associée à l'hippocampe semble être encodée (Winters et al., 2008). Cette région démontre aussi une forte propension à la potentialisation à long terme (PLT), bien que l'on observe ce phénomène à plusieurs autres endroits dans l'hippocampe ainsi que dans le cortex (Abraham and Williams, 2008). b) Les troubles Les individus en proie à une infection présentent des altérations de divers processus cognitifs allant de l’attention à la mémoire. Ainsi, les individus atteints de maladies infectieuses (grippe ou rhume) induites expérimentalement ou non, présentent des altérations des performances psychomotrices ainsi que des déficits des processus d’attention sélective permettant de se concentrer sur un stimulus particulier et de négliger les stimuli non pertinents (Smith et al., 1987a; Smith et al., 1987b). Des sujets étudiés lors d’un épisode grippal présentent des performances mnésiques significativement plus faibles que celles des sujets sains (Capuron et al., 1999). De plus, l’administration d’endotoxine bactérienne à des sujets 42 volontaires provoque une diminution des performances mnésiques associées à la mémoire déclarative et non-déclarative, qui est corrélée à l’augmentation des taux circulants de cytokines dont l’IL-6 et le TNFα (Reichenberg et al., 2001; Yirmiya et al., 2000). Dans une autre étude, l’injection par voie intraveineuse d’une faible dose d’endotoxine ne provoque pas d’altération mnésique significative, mais le taux plasmatique d’IL-6 est inversement corrélé à la performance de mémoire déclarative (Krabbe et al., 2005). Plusieurs tests comportementaux permettant de mesurer les performances cognitives chez l’animal ont été utilisés afin d’étudier l’impact des cytokines inflammatoires sur les processus cognitifs. Ainsi, il est possible d’étudier la mémoire spatiale des rongeurs en se basant sur l’attirance des rongeurs pour la nouveauté, un comportement spontané qui les amène à explorer préférentiellement les endroits les moins familiers (Conrad et al., 1996; Dellu et al., 1992). L’animal est placé dans un labyrinthe composé de trois bras identiques disposés en forme de Y (Y maze). Au cours d’une première phase d’acquisition, un des bras du Y est aléatoirement fermé, de façon à ce que l’animal explore seulement les deux bras restants. Apres un intervalle de rétention de durée variable, les animaux sont replacés dans le labyrinthe avec cette fois-ci un accès libre à l’ensemble des bras. Des indices spatiaux permettent à l’animal d’établir une représentation spatiale afin de distinguer les bras qui sont strictement identiques, ce qui nécessite la mise en jeu de l’hippocampe (Conrad et al., 1996). Les animaux ayant identifiés dans l’espace les bras explorés durant l’acquisition explorent préférentiellement le bras nouveau (Dellu et al., 1992). Il a récemment été montré que cette tâche mnésique de reconnaissance spatiale est altérée par l’administration périphérique de LPS 24 h avant le test (Noble et al., 2007), mais la dose de LPS utilisée (250µg/souris) induisait un choc sceptique. Il est donc difficile de differencier l’effet du choc sceptique sur l’activité locomotrice de l’effet sur la cognition. Le rôle des cytokines dans des conditions d’inflammation plus modérée, comme dans le cas d’une inflammation chronique à bas bruit, reste donc à élucider. Il existe d’autres tests permettant d’évaluer la mémoire implicite ou explicite, comme le test du labyrinthe aquatique de Morris qui permet d’évaluer une forme de mémoire explicite relationnelle impliquant l’hippocampe (Morris et al., 1982) ou encore la mémoire de travail en modifiant le paradigme du test (Sparkman et al., 2005). Mais le Y maze est un test très peu stressant pour les animaux et ne necessitant pas d’apprentissage, ce qui en fait un test efficace et pertinent. 43 Un des mécanismes pouvant expliquer l’action des cytokines cérébrales sur les performances cognitives est leur action sur la plasticité synaptique. L’hippocampe est le siège de phénomènes importants de plasticité synaptique. La potentialisation à long terme (PLT) semble en particulier jouer un rôle essentiel dans les processus d’apprentissage et de mémoire. La PLT désigne l’augmentation de la réponse synaptique consécutive à la stimulation haute fréquence des fibres afférentes (Bear and Malenka, 1994; Jeffery and Morris, 1993). Il a été montré que l’administration d’IL-1β au sein de tranches d’hippocampe altère la PLT au niveau des champs CA1 (Bellinger et al., 1993) et CA3 de l’hippocampe (Katsuki et al., 1990), ainsi qu’au niveau du gyrus dentelé où cet effet est de plus bloqué par l’IL1-ra (Cunningham et al., 1996). Il a de plus été montré in vivo que l’administration d’IL1β par voie icv inhibe la PLT dans le gyrus dentelé (Murray and Lynch, 1998). L’injection systémique de LPS altère également la PLT probablement via l’IL-1β puisque celle-ci augmente au niveau hippocampique suite au LPS et que l’effet du LPS est fortement atténué chez les souris transgéniques dépourvues du récepteur de l’IL-1 de type 1 (Kelly et al., 2003). Le TNFα affecte également la plasticité synaptique puisque l’administration de TNFα au sein d’une tranche d’hippocampe inhibe la PLT au niveau du champ CA1 (Tancredi et al., 1992) et du gyrus dentelé de façon similaire à l’effet de l’IL-1β et du LPS (Cunningham et al., 1996). Enfin, un effet inhibiteur de l’IL-6 sur la PLT est rapporté par plusieurs travaux. L’incubation de tranches d’hippocampe avec de l’IL-6 entraîne une inhibition de la PLT au niveau du champ CA1 (Li et al., 1997; Tancredi et al., 2000). Les souris transgéniques surexprimant l’IL-6 au niveau cérébral présentent une réduction de la PLT dans le gyrus dentelé (Bellinger et al., 1995). Une activation chronique du réseau de cytokines peut également être à l’origine de troubles cognitifs. Une des premières études cliniques sur les effets secondaires des traitements par les cytokines montre que la moitié des patients atteints de cancers métastasés recevant de l’IL-2 par voie intraveineuse présente après 3 mois une détérioration des performances cognitives mesurée lors de tests psychométriques (Denicoff et al., 1987). Ces altérations cognitives se traduisent par une augmentation du temps de réaction, une baisse de la vigilance et de la performance dans la reconnaissance d’images (Walker et al., 1996). Des patients traités par l’IFNα présentent des difficultés dans la réalisation de tâches logiques impliquant la mémoire verbale, une baisse de performance en calcul et en écriture et une altération de la rapidité de traitement de l’information et/ou des fonctions exécutives alors que des améliorations sont observées dès l’arrêt du traitement (Poutiainen et al., 1994; Pavol et al., 44 1995; Scheibel et al., 2004). Sous l’effet d’un traitement conjoint par l’IFNα et l’IL-2 ou par l’IL-2 seule, il a été observé des perturbations de la mémoire de travail et de la planification de tâches (Capuron et al., 2001). Résumé L’anxiété et la dépression sont des pathologies psychiatriques multifactorielles associant symptômes psychiques et somatiques Les troubles de la mémoire sont des phénomènes complexes du fait de l’existence de différents types de mémoire. La présence de cytokines inflammatoires dans le cadre d’une immunothérapie ou d’une pathologie à composante inflammatoire serait un facteur favorisant le developpement de troubles de l’humeur et de la cognition. 3. Mécanismes potentiellement impliqués a) Implication de l’IDO Le L-tryptophane (Trp) est le moins abondant des acides aminés essentiels chez les mammifères. Le tryptophane est utilisé pour la synthèse des protéines (plus de 95%), mais également pour la synthèse de sérotonine (5-HT), un des systèmes de neurotransmission perturbés au cours de la symptomatologie dépressive. Seule une faible concentration du Trp provenant de l’alimentation est convertie en 5-HT. Outre la voie métabolique conduisant à la 5-HT, la majeure partie du Trp est catabolisée sous l’influence de la tryptophane 2-3dioxygénase (ou TDO) et de l’indoléamine 2,3-dioxygénase (ou IDO) en kynurenine (Kyn) (Moroni, 1999; Schwarcz and Du, 1991; Stone, 1993) (Figure 4). Ces enzymes pourraient être impliquées dans la mise en place des troubles décrits précédemment. La voie de la kynurénine est la voie majoritaire de métabolisation non protéique du Trp (Takikawa et al., 1986). La première étape de cette dégradation permet la formation de Nformylkynurénine convertie ensuite en L-kynurénine, précurseur de l’acide nicotinique ainsi que de l’acide xanthurénique (Grohmann et al., 2003; Schwarcz and Du, 1991). A terme, la voie de la kynurénine permet la production du coenzyme ubiquitaire, le nicotinamide adénine 45 dinucléotide (NAD), impliqué dans un grand nombre de réactions cellulaires et particulièrement essentiel lors de la synthèse d’adénosine triphosphate (ATP) (Figure 5). Stimuli immun L-Tryptophane Cytokines Inflammatoires Sang BHE SNC L-tryptophane décarboxylase L-Tryptophane 5-HT P IDO L-Kynurenine Décarboxylase Sérotonine Figure 4 : Les voies de catabolisme du Tryptophane 46 L -Tryptophane IDO TDO Kynurenine aminotransferase KAT 1/2 Acide Kynur Kynuré é nique L -Kynur Kynuré é nine Kynureninase KYN-ase Acide Anthranilique Kynurenine hydroxylase KYNOH-ase 3 -Hydroxykynurenine KYN-ase Acide 3 3--Hydroxyanthranilique 3-hydroxyanthranilate 3,4 dioxygenase 3-HAO Quinolinate phosphoribosyltransferase QPRT-ase NAD Acide Quinolinique Picolinic carboxylase PIC-ase Acide Picolinique Figure 5 : La voie de la Kynurenine La formation de la N-formylkynurénine à partir du Trp fut tout d’abord observée dans des extraits de foie et attribuée à une enzyme, la tryptophane pyrrolase (Kotake and Masayama, 1936). Elle est par la suite décrite comme un système peroxydase-oxydase, possédant une haute spécificité pour l’isomère L-Trp (Tanaka and Knox, 1959). Alors appelée TDO, cette hémoprotéine initie le catabolisme du Trp par le clivage oxydatif de son noyau indole. Exclusivement mesurée dans le foie (Knox and Auerbach, 1955), l’activité de la TDO est augmentée en quelques heures après administration de Trp, ainsi que par les glucocorticoïdes, alors qu’elle est inhibée par l’administration de certains anti-dépresseurs (Badawy and Evans, 1981; Knox and Auerbach, 1955). Cependant, la découverte de la présence de D-kynurénine dans les urines de lapins nourris avec du D-Trp par Kotake et Ito, en 1937, a suggéré la présence d’une enzyme au sein des tissus extra-hépatiques (Higuchi and Hayaishi, 1967). Purifiée à partir d’intestin grêle de lapin, cette hémoprotéine permettrait la conversion du D-Trp en formyl-D-kynurénine en catalysant le clivage oxydatif du noyau indole du D-Trp (Higuchi and Hayaishi, 1967; Yamamoto and Hayaishi, 1967). Contrairement à la TDO, cette enzyme n’est pas spécifique du D-Trp, mais est aussi capable de métaboliser le L-Trp, ainsi que d’autres indoléamines telles que la tryptamine ou la 5-HT (Yamamoto and Hayaishi, 1967; Shimizu et al., 1978). Du fait de sa large spécificité de substrats, elle fut alors appelée l’indoléamine 2,3-dioxygénase ou IDO (Hirata et al., 1975). Contrairement à la TDO, l’IDO est largement distribuée au sein des tissus extra-hépatiques 47 des mammifères tels que l’intestin et le colon, la rate, les reins, l’estomac, les poumons, ainsi que le cerveau (Hayaishi et al., 1975). Au niveau cellulaire, l’IDO est fortement exprimée, chez l’homme et le rongeur, par les cellules dendritiques et les macrophages, ainsi que par les cellules endothéliales cérébrales, les astrocytes, la microglie et les neurones (Carlin et al., 1989; Guillemin et al., 2005b; Kwidzinski et al., 2005). Son activité n’est pas influencée par le Trp alors que sa synthèse de novo est stimulée par des agents activant la production de cytokines tel que le LPS (Hayaishi and Yoshida, 1978; Yoshida and Hayaishi, 1978). Ainsi, l’IFNγ produit au sein des macrophages et des cellules dendritiques va induire l’activation de l’IDO (Byrne et al., 1986; Koide and Yoshida, 1994; Taylor and Feng, 1991; Williams et al., 2008). De plus, il a été montré au sein du laboratoire qu’hormis l’IFNγ, le TNFα semble impliqué dans l’activation cérébrale de l’IDO. Le rôle d’autres cytokines comme l’IL-6 reste encore à élucider. Bien que la TDO hépatique représente la voie majoritaire de dégradation du Trp en conditions physiologiques, l’IDO jouerait un rôle essentiel dans la modulation des concentrations en Trp nécessaires au bon fonctionnement de l’organisme en conditions inflammatoires. En effet, en conditions physiopathologiques, son activation par le système immunitaire pourrait être responsable des variations de Trp au sein d’un grand nombre de tissus du fait de sa distribution ubiquitaire et plus particulièrement au niveau cérébral, où l’activation de l’IDO pourrait induire une déplétion en Trp suffisante pour être à l’origine d’une perturbation du métabolisme de la 5-HT et ainsi participer à la mise en place de troubles de l’humeur (Schiepers et al., 2005). Ainsi, l’IDO semble être un bon candidat dans l’induction des troubles de l’humeur associés à une activation du système immunitaire. En conditions inflammatoires, l’activation de l’IDO pourrait réduire de manière suffisante les concentrations de Trp pour intervenir sur le fonctionnement 5-HT. Parmi les effets cérébraux résultant d’un dysfonctionnement de la 5-HT, il est connu qu’une hypoactivité des systèmes sérotoninergiques intervient très probablement chez les patients déprimés et chez les maniaco-dépressifs (Owens and Nemeroff, 1994; van Praag, 1982). A l’inverse, l’anxiété généralisée pourrait être associée à une exacerbation de la transmission 5HT cérébrale (Baldwin and Rudge, 1995; Chaouloff et al., 1999; Eison and Eison, 1994; Handley and McBlane, 1993). Il a été montré par notre laboratoire l’existence d’altérations du métabolisme du Trp périphérique et cérébral en relation avec des modifications comportementales de type dépressif au cours de la réaction inflammatoire (Dantzer et al., 2008). L’activation du système immunitaire agit au niveau du SNC et modifie l’activité 48 neuronale et la réponse neurochimique cérébrale. En condition aiguë, elle influence fortement le métabolisme du Trp et le système 5-HT cérébral (O'Connor et al., 2008). L’activation de l’IDO, tout en induisant une déplétion en Trp, va donc entrainer la synthèse de kynurénine. Ce métabolite peut à son tour être métabolisé vers deux voies différentes. La kynurénine-3-monooxygénase (KMO) convertit la kynurénine en radicaux libres neurotoxiques producteurs de 3-hydroxykynurénine (3-OH KYN) qui sera ensuite métabolisé en acide quinolinique (QUIN) excitotoxique. La kynurénine aminotransférase II (KAT II) métabolise la kynurénine en acide kynurénique (KYNA), un composé neuroprotecteur du fait de ses propriétés antagonistes des récepteurs NMDA (Connor et al., 2008). La 3OH-KYN augmente l’activité des monoamines oxydases et de ce fait pourrait être impliquée dans le developpement des troubles de l’humeur en diminuant indirectement les taux de 5-HT. De plus, une production élevée de QUIN ou de 3OH-KYN a été observée dans de nombreuses pathologies neurodégénatives à composante inflammatoire (Heyes et al., 1989; Ogawa et al., 1992; Reynolds and Pearson, 1989). Il a été montré que les cerveaux des patients atteints de maladie d’Alzheimer présentent un métabolisme de la kynurénine élevé. Le blocage des récepteurs NMDA par la KYNA pourrait être responsable de l’altération de la mémoire, de l’apprentissage et de la cognition chez les patients atteints d’Alzheimer (Baran et al., 1999). Enfin, le système serotoninergique semble impliqué dans le contrôle neurobiologique de l’apprentissage et de la mémoire. Ainsi les récepteurs 5-HT(1A), 5-HT(4) et 5-HT(6) sont fortement associés à l’apprentissage et la mémoire (King et al., 2008). b) Implication de l’axe HPA Les cytokines inflammatoires activent l’axe corticotrope, ce qui conduit à la libération des hormones glucocorticoïdes (Matta et al., 1993; van der Meer et al., 1996). L’activation de l’axe corticotrope est associée à l’apparition de troubles anxieux impliquant une action centrale de la CRH ainsi que des glucocorticoïdes (Korte, 2001; Owens and Nemeroff, 1991). Il pourrait donc participer à l’action des cytokines sur les troubles de l’humeur observés lors d’une activation du système immunitaire. En effet, l’administration de LPS ou d’IL-1β par voie ip induit une augmentation des taux plasmatiques d’ACTH et de corticostérone, s’accompagnant d’une diminution d’exploration des bras ouverts de l’EPM ou du compartiment fortement éclairé dans la « light/dark box » traduisant un état d’anxiété (Lacosta et al., 1998, 1999). Enfin, l’injection d’IL-1β par voie icv induit une augmentation 49 de la corticostérone plasmatique qui s’accompagne d’une augmentation du comportement de type anxieux dans l’EPM chez le rat (Connor et al., 1998). Dans le cadre de la dépression, l’implication de l’axe HPA semble également être démontrée. En effet, il a pu être observé une hyperactivité de l’axe HPA chez les patients dépressifs (Strohle and Holsboer, 2003). En effet, ces patients présentent une augmentation des taux plasmatiques et urinaires de cortisol, ainsi qu’une élévation marquée des concentrations de CRH dans le liquide céphalo-rachidien (Banki et al., 1987; Maes, 1995). Le cortisol étant incapable de freiner la production d’ACTH et de CRH, l’hypothèse d’un dysfonctionnement du rétrocontrôle négatif de l’axe HPA dans la dépression a été suggérée (Sheline, 2000 ; Pariante, 2003). Cette altération serait due à une réduction de la fonction des récepteurs aux glucocorticoïdes (Modell et al., 1997; Pariante, 2004). De plus, il a été montré que suite à la première injection d’IFNα lors d’un traitement immunothérapeutique, les patients qui présentaient une réponse exacerbée de l’axe HPA en terme de sécrétion d’ACTH et de cortisol étaient les sujets qui développaient par la suite des épisodes de type dépressif. Ces mêmes conclusions ont été observées après l’induction d’un stress chez ces patients (Capuron et al., 2003). Enfin, dans le cas des pathologies d’Alzheimer, l’activation de l’axe HPA pourrait participer au developpement de la maladie puisque l’hypercortisolémie présente lors de cette pathologie serait associé à une atrophie de l’hippocampe (Pomara et al., 2003). De plus, lors du vieillissement, l’élévation de la concentration de glucocorticoïdes circulants semble être liée au developpement du déclin cognitif via les lésions qu’ils induiraient au niveau hippocampique. Dans certaines conditions, l’utilisation d’inhibiteurs des glucocorticoïdes apparait avoir une action thérapeutique (Pomara et al., 2003). Résumé Les troubles de l’humeur et de la cognition sont des symptômes souvent accompagnés de modifications neurobiologiques telles qu’une hyperactivité de l’axe HPA, une dérégulation du système 5-HT et une production accrue de cytokines inflammatoires. Une diminution des taux de Trp ayant pour conséquence une réduction de la synthèse de 5-HT pourrait indirectement être impliquée dans les troubles de l’humeur et de la cognition. 50 L’IDO pourrait intervenir dans le developpement des troubles de l’humeur et de la cognition en perturbant à la fois les systèmes sérotoninergiques, via la réduction des taux de Trp disponibles, et glutamatergiques, en favorisant la production de composés neurotoxiques, QUIN et 3-OH KYN. L’activation de l’axe HPA et principalement la production exacerbée de glucocorticoïdes pourrait également intervenir dans les troubles de l’humeur et de de la cognition. C. L’obésité Par leur synthèse et leur action dans le cerveau, les cytokines sont à l’origine de modifications transitoires du comportement qui seraient une stratégie adaptative contribuant à éliminer l’agent pathogène et à retourner à l’état d’équilibre initial. Mais dans certaines situations comme une inflammation chronique, le comportement de maladie peut laisser place à une situation de dysfonctionnement neuronal et au développement de troubles de l’humeur et de la cognition. Dans ce contexte, l’obésité, en tant que situation inflammatoire à bas bruit, pourrait permettre l’étude des implications physiopathologiques de l’altération de la régulation des cytokines. 1. Définition et caractérisation L’obésité est devenue la première maladie non infectieuse de l’histoire. C’est une véritable épidémie qui frappe aussi bien les pays industrialisés que les pays en voie de développement. L’Organisation Mondiale de la Santé (OMS) définit « le surpoids et l'obésité comme une accumulation anormale ou excessive de graisse corporelle qui peut nuire à la santé » et place actuellement sa prévention et sa prise en charge comme une priorité dans le domaine de la pathologie nutritionnelle. Le plus souvent, l'obésité est appréciée par le poids mais il faut noter qu'il n'y a pas de stricte équivalence entre poids et obésité puisque dans le poids interviennent, outre la masse grasse, le tissu osseux, l'eau et le muscle. L'obésité est définie par l’Indice de Masse Corporelle (IMC). L'IMC est calculé en divisant le poids de la personne par le carré de sa taille (kg/m²). Si l’indice est compris entre 25 et 30, on parle de surpoids. Lorsqu’il est supérieur ou égal à 30, l'individu est considéré 51 comme obèse. Au-delà de 40 kg/m², le patient présente une obésité morbide. On sait également aujourd'hui que l'IMC n'est qu'un outil de mesure du rapport poids/taille et n'est pas suffisant pour évaluer un risque de morbidité chez la personne obèse. Il existe donc d’autres indicateurs de surpoids comme le rapport tour de taille/tour de hanches. Il doit être inférieur à 1 chez l'homme et à 0,85 chez la femme. Ces indices sont complémentaires puisque l’homme et la femme ne présentent pas un profil de répartition de la masse graisseuse identique. En effet, chez l'homme elle s'accumule généralement sur l'abdomen et le thorax où l’on parle d’obésité androïde (en forme de pomme) tandis que la masse de graisse se repartit préférentiellement sur les hanches et les cuisses chez la femme qui présente alors une obésité gynoïde (en forme de poire) (Blouin et al., 2008) (Figure 6). On distingue alors trois types de tissus adipeux de topographie différente : le tissu adipeux gynoïde qui prédomine à la partie inférieure du corps au niveau des cuisses et des fesses, le tissu adipeux androïde sous-cutané et viscéral. Ce tissu adipeux se localise au contraire à la partie supérieure du corps. Il est caractérisé par une hypertrophie adipocytaire et une sensibilité lipolytique importante. Cette topographie androïde avec surcharge adipeuse viscérale serait favorisée entre autre par une augmentation du tonus sympathique et par l'hyperinsulinisme. Les complications cardiovasculaires et métaboliques associées à l'obésité sont en rapport avec la distribution androïde et le type viscéral de tissu adipeux. Celui-ci est doté d'une capacité sécrétrice, et les adipokines libérées par le tissu adipeux viscéral peuvent directement ou indirectement promouvoir l'apparition d'un diabète de type 2, d'une dyslipidémie ou d'une hypertension artérielle. Ces facteurs de risque associés très directement à l'activité du tissu adipeux viscéral vont favoriser la progression de l'athérosclérose et de ses complications (Pathak, 2007). Obé Obésité sité gynoï gynoïde ou en forme de poire Obé Obésité sité androï androïde ou en forme de pomme Figure 6 : La ré répartition de la masse grasse chez la femme et chez ll’’homme 52 Dans le cas d’une obésité dite « modérée », les risques d’apparition de problèmes comorbides, comme le diabète et l’hypertension, augmentent mais ces pathologies associées ne sont pas forcément présentent chez ces sujets obèses. Quand on parle d’obésité morbide, on voit apparaître une morbidité secondaire à différents types de complications telles que des maladies cardio-vasculaires, de l’hypertension artérielle, une hypercholestérolémie ou un diabète de type 2. Ce diabète de type 2 est non insulino-dependant contrairement au diabète de type 1 qui lui est insulino-dependant. L’ensemble de ces symptômes constitue alors le syndrome métabolique. D’autres pathologies peuvent également apparaître comme des apnées du sommeil et des troubles respiratoires, des douleurs articulaires, des reflux gastrooesophagiens, des problèmes psychologiques et une infertilité (Basdevant et al., 2002). Quelque soit la sévérité de l’obésité, le tissu adipeux va être à l’origine de la production de cytokines inflammatoires. L’obésité va donc être associée à une situation inflammatoire chronique à bas bruit (Clement et al., 2004; Cottam et al., 2004; Trayhurn and Wood, 2004). Mais si l’obésité est à l’origine d’une situation inflammatoire chronique par la production de cytokines inflammatoires par le tissu adipeux, d’autres hypothèses sont proposées suggérant que l’écologie microbactérienne chez l’homme peut être un facteur important affectant l’homéostasie énergétique. Ainsi, les individus prédisposés à développer une obésité auraient une colonie bactérienne intestinale qui favoriserait l’occurrence de maladies métaboliques (Backhed et al., 2004; Backhed et al., 2007; Ley et al., 2005). Mais l’impact du microbiote sur le statut inflammatoire reste encore peu connu. De plus, il a également été montré que certains traitements antibiotiques, en modifiant le microbiote intestinal, protègent partiellement contre le développement de diabète de type 1, chez des rats présentant une insulite (Brugman et al., 2006). Mais un des facteurs qui pourraient être responsable de l’apparition et du maintien d’une inflammation lors de la consommation d’un régime hyperlipidique est le lipopolysaccharide bactérien (LPS). Le LPS endogène est un facteur continuellement produit par le tractus intestinal et transloqué à travers les capillaires intestinaux par un mécanisme TLR4-dépendant. De plus, il est transporté jusqu’aux organes cibles via les lipoprotéines, en particulier les chylomicrons synthétisés lors de la consommation d’un régime hyperlipidique. Enfin le LPS est un agent inflammatogène qui entraîne la sécrétion de cytokines proinflammatoires quand il se lie à son récepteur, le complexe CD14/TLR4 présent à la surface des cellules de l’immunité innée (Neal et al., 2006). De façon intéressante, il a été montré que la consommation d’un régime hyperlipidique augmente de façon significative l’endotoxémie. En effet, la consommation pendant 4 semaines par des souris d’un régime hyperlipidique entraîne l’augmentation de la 53 concentration plasmatique de LPS dans une proportion deux à trois fois plus importante que l’endotoxémie métabolique. De plus, la consommation d’un régime hyperlipidique modifie le microbiote intestinal en favorisant le développement de bactéries Gram négatif (Cani et al., 2007a). Mais si la consommation d’un régime riche en graisse augmente la concentration de LPS plasmatique, une endotoxémie métabolique chronique expérimentalement induite entraîne une obésité, un diabète et une insulino-resistance au niveau du foie (Cani et al., 2007a). En effet, l’infusion sous-cutanée continue de LPS pendant 4 semaines chez la souris entraîne une augmentation de la glycémie, une augmentation de l’insulinémie, une augmentation du poids du tissu adipeux, du foie et de la souris, et enfin une augmentation de l’expression de facteurs inflammatoires de façon similaire à ce qui est observé lors de la consommation d’un régime riche en graisses (Cani et al., 2007b). Ainsi, l’endotoxémie métabolique participe au contrôle du statut inflammatoire et peut entraîner une prise de poids et un diabète. De plus les régimes hyperlipidiques modulent la composition du microbiote intestinal et la concentration plasmatique de LPS, et par conséquent l’endotoxémie métabolique. Enfin, les modifications du microbiote intestinal semblent controler l’occurrence des maladies métaboliques en contrôlant l’endotoxémie métabolique, l’inflammation et les pathologies associées via un mécanisme qui pourrait impliquer la perméabilité intestinale (Cani et al., 2008). Ainsi, l’obésité est fortement liée à l’inflammation, en tant que cause de la pathologie mais également comme conséquence de la modification morphologique et fonctionnelle du tissu adipeux. C’est cet aspect de la relation entre obésité et inflammation que nous allons plus particulièrement étudié dans ce travail de thèse. 2. Prévalence et cause D’après les dernières estimations mondiales de l’OMS pour 2005, environ 1,6 milliards d’adultes (âgés de 15 ans et plus) étaient en surpoids et au moins 400 millions d’adultes étaient obèses. L’OMS prévoit en outre que d’ici 2015, quelques 2,3 milliards d’adultes présenteront un surpoids et plus de 700 millions seront obèses. Au moins 20 millions d’enfants de moins de cinq ans étaient en surpoids en 2005. Depuis les années 1990 l'élévation de la prévalence de l'obésité et du surpoids est très importante: la prévalence de l'obésité passe de 5 à 10 % pour les hommes et de 6 à 10 % pour 54 les femmes entre 1992 et 2007. La France compte ainsi 6 millions d'adultes de moins de 65 ans obèses en 2007 (source : étude ObEpi issue d’une enquête réalisée auprès de 25 770 personnes âgées de plus de 15 ans) (Charles et al., 2008). Quant au surpoids, il touche toujours beaucoup plus les hommes (35 %) que les femmes (21 %). Si les différences de corpulence, et en particulier l'obésité, sont pour une part liées à des facteurs génétiques, ces derniers ne peuvent expliquer cette brusque augmentation de la corpulence, qui tient plus à des facteurs sociaux, économiques et culturels. En 2003, on retrouve par exemple une nette sur-représentation des obèses chez les ménages les plus pauvres par rapport aux plus aisés et l'écart a même légèrement augmenté (Thibaut de Saint Pol, 2007). Les causes de l’obésité sont bien évidemment nombreuses et multifactorielles. Tout d’abord il est important de noter que pour la première fois dans l’histoire de l’humanité, une grande proportion des humains peuvent s'alimenter à suffisance, voire se suralimenter ou s'alimenter sans tenir compte de leurs besoins, alors que par le passé l’homme a toujours dû vivre malgré les restrictions alimentaires et les famines (Corbeau, 1992). De plus, les modes de vie ont changé et ont fait place à la sédentarité. La forte réduction de l'activité physique due au développement des transports (voiture, transports en commun,...), des nouvelles technologies (télécommandes, télévision, ordinateurs,...) ne permet pas d'équilibrer le bilan énergétique. Il ne faut pas croire que l'abondance alimentaire a fatalement occasionné une hausse des apports énergétiques qui expliquerait la pandémie de l'obésité. En effet, il a été constaté à l'heure actuelle une baisse des apports énergétiques journaliers qui reste toutefois supérieure aux dépenses énergétiques journalières. C'est ce dernier élément qui reste un facteur d'obésité (Poulain, 2004). La consommation d’aliments gras et sucrés en dehors des repas, le grignotage, est également fortement responsable de la prise de poids d’une partie de la population mondiale. L’industrie agroalimentaire a su créer des aliments addictifs présentant un fort index glycémique qui sont consommés au détriment des fruits et légumes. Enfin, les sociétés contemporaines sont sources de stress qui peut être à l’origine d’un comportement alimentaire compensateur. Mais l’obésité présente parfois aussi une origine génétique. Le rôle de l’hérédité est de mieux en mieux connu : des gènes responsables ont été identifiés, qui interviennent sur la production de leptine par les adipocytes. On a remarqué également l'influence des modes de vie sur les facteurs génétiques. Notre corps a été habitué pendant des millénaires à faire face 55 au manque et la sélection naturelle aurait plutôt favorisé les personnes capables de stocker en période d'abondance pour faire face aux périodes de disette. Paradoxalement, ces personnes seraient aussi celles le moins adaptées à une abondance régulière. Mais cette théorie sur la capacité de l’homme à créer des réserves de graisse en période de disette comme facteur ayant permis la survie de l’espèce est actuellement controversée, puisqu’il apparaît que la pression sélective se soit plutôt faite devant la capacité à fuir face aux agresseurs. Par ailleurs, avec une même alimentation et une même pratique physique, la prise de masse varie selon les individus et leur métabolisme. 3. Rappel sur la régulation alimentaire alimentaire et les molécules mises en jeu L’homéostasie énergétique met en jeu l’intégration d’informations par le cerveau, dont la résultante est le maintien de paramètres énergétiques tels que le poids corporel dans des conditions environnementales données. Pour cela, un comportement alimentaire finement régulé est nécessaire. La principale fonction de ce comportement est d’assurer l’apport de substrats énergétiques et de composés biochimiques nécessaires à l’ensemble des cellules de l’organisme. Le comportement alimentaire inclut au sens large la recherche, la sélection et le stockage des aliments. L’épisode de prise alimentaire se déroule en trois phases : une phase pré-ingestive caractérisée par une sensation de faim, une phase prandiale correspondant à la prise alimentaire et au processus progressif de rassasiement, et enfin une phase post-prandiale, caractérisée par un état de satiété dont la durée est variable et détermine l’intervalle entre les repas. L’homéostasie énergétique ou pondérale a longtemps été considérée comme dépendante d’un contrôle par rapport à un point de consigne, tout comme l’est la température corporelle. Cependant, les recherches de ces dernières années démontrent que ce modèle est trop simpliste. En effet l’homéostasie pondérale de l’individu est soumise à de nombreux facteurs faisant face, en plus des contraintes internes (stocks, dépenses énergétiques,…), à des contraintes externes (difficulté d’accès aux ressources). Ces facteurs sont d’ordre écologique, physiologique (reproduction, vieillissement), social ou métabolique (Collier, 1985; Havel, 2001; Woods and Seeley, 2000). Ils interviennent dans une régulation de l’ordre de jours à plusieurs années. Parallèlement, un ensemble de signaux de rétrocontrôle est mis en jeu suite 56 à l’ingestion d’aliments (Smith, 2000). Ces signaux sont généralement des facteurs de satiété à court terme, de nature nerveuse principalement, directement générés par la détection de l’absorption d’aliments au cours du repas. La prise alimentaire ne serait donc pas régulée par rapport à un point de consigne déterminée par la stricte adéquation entre apports et dépenses énergétiques, mais plutôt par rapport à une zone de consigne déterminée par une multitude de facteurs internes et environnementaux dans laquelle une marge de variation du poids corporel et de la prise alimentaire est tolérée par l’organisme (Levitsky, 2002). Le cerveau peut être considéré comme un lieu de convergence et d’intégration d’informations métaboliques et sensorielles, dont la réponse en terme de régulation de la prise alimentaire est également modulée par des facteurs émotionnels (Berthoud, 2002; Saper et al., 2002). De ce fait, le cerveau est capable de trier et d’attribuer de multiples qualités sensorielles à un acte d’ingestion alimentaire pour ajuster un ensemble de réponses motrices, endocrines et végétatives dépendantes des dépenses énergétiques. Diverses expériences, notamment basées sur des techniques de lésions, ont mis en évidence le rôle prépondérant de l’hypothalamus et du tronc cérébral dans le contrôle de la prise alimentaire (Anand and Brobeck, 1951). Ainsi le noyau du tractus solitaire (NTS), une large structure du tronc cérébral qui reçoit des afférences sensorielles gustatives et viscérales, et le noyau arqué de l’hypothalamus fonctionnent de façon coordonnée entre eux et le reste du système nerveux, pour initier ou arrêter la prise alimentaire (Grill and Norgren, 1978). Le noyau arqué abrite des circuits neuronaux soit orexigènes, soit anorexigènes capables de répondre de façon opposée à un ensemble de stimuli métaboliques (Baskin et al., 1999;Elmquist et al., 1999). Ainsi la leptine, l’hormone impliquée dans la sensation de satiété, joue un rôle anorexigène en inhibant l’activité des neurones à neuropeptide Y (NPY) (Tatemoto et al., 1982) et à agoutirelated protein (AgRP) (Broberger et al., 1998) qui stimule la prise alimentaire et en activant les neurones libérateurs d’α-melanocyte-stimulating hormone (α-MSH) (Mains et al., 1977). En retour, ces circuits régulent l’activité d’un certain nombre de fonctions cérébrales impliquées dans la régulation de la prise alimentaire. La balance entre la libération d’un ensemble de peptides et de neurotransmetteurs orexigènes et anorexigènes va orienter l’individu vers un état de satiété ou d’appétit (Figure 7). 57 Figure 7 : La prise alimentaire (1) La leptine La leptine est une hormone peptidique de 16 kDa comportant 167 acides aminés et dont la séquence est fortement conservée parmi différentes espèces chez les mammifères (Gaucher et al., 2003). La structure de la leptine et de son récepteur est très proche de celle des cytokines de la famille de l’IL-6 et de leurs récepteurs. Le gène codant pour la leptine est nommé ob. La leptine régule le poids corporel en diminuant l’appétit et en augmentant les dépenses énergétiques (Friedman and Halaas, 1998). Le récepteur de la leptine Ob-R, le produit du gène db, est un membre de la famille des récepteurs de cytokines de classe I, qui inclut gp-130, le récepteur des cytokines de la famille de l’IL-6 (Baumann et al., 1996). Par épissage alternatif, au moins 5 transcrits différents sont produits à partir du gène db, nommés Ob-Ra à Ob-Re (Fei et al., 1997). Les effets anorexigènes de la leptine sont dépendants du récepteur Ob-Rb, dont la partie cytoplasmique est plus longue que celle de toutes les autres isoformes (Halaas et al., 1995). Le récepteur Ob-Rb est retrouvé de manière abondante au niveau de l’hypothalamus, qui est une région du cerveau jouant un rôle important dans le contrôle de l’appétit. Les souris déficientes en leptine (ob/ob) ou en l’expression de la forme 58 longue de son récepteur (db/db) présentent un phénotype d’obésité sévère, se caractérisant par une augmentation de la prise alimentaire et une diminution des dépenses énergétiques (Zhang et al., 1994). L’administration de leptine recombinante aux souris ob/ob corrige le phénotype obèse, mais n’a aucun effet chez les souris db/db. L’injection de leptine à des souris normales diminue la prise alimentaire. Les cas d’obésité génétique sont rares chez l’homme. Des cas exceptionnels de déficit en leptine entrainent chez les patients un développement précoce de l’obésité, associé une altération de la production d’hormones de croissance (Clement et al., 1998; Strobel et al., 1998). La leptine est produite de manière prépondérante par les adipocytes. Toutefois, la synthèse de leptine a également été détectée au niveau de l’hypothalamus, de l’hypophyse (Jin et al., 1999), du placenta, de l’estomac (Bado et al., 1998), du muscle (Wang et al., 1998) et à un moindre degré dans d’autres tissus (Margetic et al., 2002). Les taux circulants de leptine corrèlent avec l’importance de la masse grasse et par conséquent, les individus obèses présentent des taux sériques de leptine plus élevés que les sujets minces (Considine et al., 1996). Cette corrélation entre taux sériques de leptine et pourcentage de la masse grasse suggère que pour la plupart, les patients obèses présentent une diminution de la sensibilité à la leptine et non pas un défaut de production. En plus de ses effets sur l’appétit et la consommation d’énergie, la leptine influence le système endocrinien, la reproduction, l’agrégation plaquettaire, la formation osseuse et la réponse immune (Ahima and Flier, 2000b; Fantuzzi and Faggioni, 2000; Konstantinides et al., 2001; Takeda et al., 2002). Les souris ob/ob et db/db ne sont par conséquent pas seulement obèses, mais présentent également de nombreuses anomalies hormonales, une augmentation de la masse osseuse, une infertilité et des anomalies de l’hématopoïèse et de la réponse immune (Ahima and Flier, 2000b; Fantuzzi and Faggioni, 2000; Konstantinides et al., 2001). Chez les patients obèses, le déficit en leptine n’est pas seulement associé à une obésité morbide, mais également à un hypogonadisme et à une susceptibilité accrue aux infections (Ozata et al., 1999; Strobel et al., 1998). Le rôle de la leptine dans la modulation de la réponse immune et inflammatoire a été récemment décrit dans de nombreuses études. Le fait que la production de leptine soit modifiée dans des modèles d’infection et d’inflammation suggère que la production de cette hormone est contrôlée par la cascade des cytokines impliquée dans la réponse immune (Faggioni et al., 2001; Pecoits-Filho et al., 2002). Comme d’autres membres de la famille de 59 l’IL-6, la leptine peut activer des réponses cellulaires par la stimulation de signaux de la voie Janus Kinase/Signal transducer and activator of transcription (JAK/STAT) (Baumann et al., 1996). La leptine peut induire l’expression de suppressor-of-cytokine signaling (SOCS)-3, qui inhibe les signaux intra-cellulaires de STAT (Bjorbaek et al., 1998). La leptine peut également stimuler deux autres voies de signalisation intra-cellulaires : phosphatidylinositol 3-kinase (PI3K) et mitogen-activated protein kinase (MAPK) (Martin-Romero and SanchezMargalet, 2001). L’activation de ces différentes voies de signalisation intra-cellulaires est caractéristique des effets des cytokines de la famille de l’IL-6 (Heinrich et al., 2003). La leptine peut influencer les réponses inflammatoires en modulant la production de cytokines pro- ou anti-inflammatoires et en induisant des signaux inhibiteurs intra-cellulaires, tels que SOCS-3 (Xiao et al., 2003). Plusieurs études ont montré que les taux circulants de leptine sont augmentés au cours de processus infectieux et inflammatoires. L’expression du gène ob dans le tissu adipeux et les taux circulants de leptine augmentent après l’administration de stimuli pro-inflammatoires tels que l’administration systémique de LPS (Grunfeld et al., 1996). Le LPS peut stimuler in vitro la production de leptine par les cellules mononucléées chez des primates mais également chez des sujets sains (Landman et al., 2003). Le LPS ainsi que certains de ses médiateurs, TNFα et l’IL-1, augmentent l’expression du transcrit codant pour la leptine dans le tissu adipeux chez les rongeurs (Grunfeld et al., 1996). De plus, certains ont retrouvé une diminution des taux plasmatiques de leptine chez des patients tuberculeux (van Crevel et al., 2002). L’injection intraveineuse de staphylocoques dorés à des souris a également été suivie d’une diminution des taux circulants de leptine (Hultgren and Tarkowski, 2001). Les souris ob/ob, de même que des souris normales maintenues à jeun, présentent une susceptibilité accrue à l’injection de LPS (Palmer and Gabay, 2003) ou plus directement de cytokines dont le TNF-α (Takahashi et al., 1999). La réaction inflammatoire exacerbée induite par le LPS peut être expliquée par la surproduction de cytokines inflammatoires qui n’est pas contrebalancée par un taux suffisant de médiateurs anti-inflammatoires. Après administration de LPS aux souris ob/ob, plusieurs auteurs ont constaté des taux circulants relativement bas de cytokines anti-inflammatoires tels que IL-10 et IL-1Ra, contrastant avec des taux élevés de cytokines pro-inflammatoires, incluant l’IL-12 et l’IFN-γ. En résumé, ces travaux indiquent que la leptine pourrait avoir un rôle anti-inflammatoire en augmentant la production de cytokines anti-inflammatoires tout en diminuant la synthèse de médiateurs proinflammatoires. 60 Cependant, il est important de noter que les souris déficientes en leptine ou en son récepteur présentent également des taux circulants élevés de corticostérone (Coleman and Burkart, 1977; Guillaume-Gentil et al., 1990; Takeshita et al., 2000). Etant donné que les glucocorticoïdes tels que la corticostérone, peuvent moduler la réponse immune et inflammatoire (Goujon et al., 1996; Stenberg et al., 1990), les souris db/db permettent également d’étudier l’implication de l’axe HPA dans la réponse inflammatoire associée à l’obésité morbide. (2) La ghréline La ghréline est un peptide de 28 acides aminés sécrété principalement par l'estomac au niveau périphérique, mais également l'hypophyse et l'hypothalamus dans le cerveau. Découverte en tant que ligand endogène du récepteur hypophysaire des sécrétagogues de l'hormone de croissance (GHSs), outre son puissant effet libérateur de GH, elle joue également un rôle important dans la régulation de la prise alimentaire et du poids à long terme. Elle est à l'heure actuelle la seule hormone orexigène d’origine intestinale connue. La concentration plasmatique de ghréline augmente rapidement avant chaque repas et diminue tout aussi rapidement dès l'ingestion d'aliments (effet à court terme). La concentration basale de ghréline plasmatique est inversement corrélée à l'importance des réserves énergétiques, elle est plus faible chez l'obèse et plus élevée chez l'anorexique que chez le sujet sain. Elle augmente avec un régime et diminue avec une prise de poids (effet à long terme). L'impact de la ghréline sur la régulation de la balance énergétique passe par une activation des neurones hypothalamiques du noyau arqué, sécréteurs des puissants neuropeptides anaboliques : le NPY et l'AgRP. La ghréline apparaît comme la « coordinatrice » de la sécrétion de GH et de la prise alimentaire afin d'assurer une croissance harmonieuse et la stabilité de la balance énergétique (Tounian, 2005). (3) La résistine A l’origine découverte comme étant le facteur responsable de l’insulinorésistance, la résistine est une protéine de 114 acides aminés, principalement sécrétée par les adipocytes (Steppan et al., 2001). Elle appartient à une famille de molécules riches en cystéine, impliquées dans la régulation de l’inflammation (Holcomb et al., 2000). Son ARNm est 61 exprimé dans de nombreux tissus chez l’homme et la souris incluant le tissu adipeux, l’hypothalamus, les muscles squelettiques, les glandes surrénales, la rate, le pancréas ou encore le tractus gastrointestinal (Kusminski et al., 2005). Bien que la synthèse de sa protéine semble être restreinte aux adipocytes chez la souris, d’autres types cellulaires tels que les macrophages sont capables de produire la résistine chez l’homme. Ainsi, le traitement de macrophages humains par le LPS ou par l’IL-1β, le TNFα et l’IL-6 augmente l’expression de l’ARNm de la résistine, tandis que l’administration périphérique de LPS entraîne une élévation marquée des taux de résistine sérique (Kaser et al., 2003; Lehrke et al., 2004). De plus, la résistine stimule l’expression des cytokines inflammatoires incluant l’IL-1β, le TNFα, l’IL-6 et l’IL-12 (Bokarewa et al., 2005; Silswal et al., 2005). Enfin, la résistine est fortement exprimée en conditions inflammatoires chroniques telles que l’arthrite rhumatoïde (Kusminski et al., 2005; Bokarewa et al., 2005). Bien que cette idée soit controversée, la résistine semblerait donc être fortement impliquée dans la pathogenèse de l’obésité associée au diabète de type II (Kim et al., 2001; Steppan et al., 2001; Fève et al., 2006). 4. Les conséquences de l’obésité a) Une pathologie inflammatoire chronique à bas bruit (1) Mise en évidence Le tissu adipeux blanc exerce un rôle central dans l’homéostasie lipidique ainsi que le maintien de l’équilibre énergétique. Principaux constituants cellulaires du tissu adipeux, les adipocytes stockent l’énergie sous forme de triglycérides ou la libèrent sous forme d’acides gras suivant l’état nutritionnel de l’individu. Le développement du tissu adipeux résulte de la différenciation des cellules précurseurs ou préadipocytes présents dans la fraction non adipocytaire ou fraction stroma-vasculaire (Gesta et al., 2007). Le passage des préadipocytes en adipocytes différenciés est influencé par les glucocorticoïdes et l’accumulation des triglycérides et principalement orchestré par deux catégories de facteurs de transcription appartenant d’une part à la famille des PPAR (Peroxisome proliferator activated receptor) et d’autre part à la famille C/ EBP (Enhancer binding proteins) (Hauner et al., 1989; Rosen and MacDougald, 2006). L’obésité se caractérise par une hypertrophie et/ou une hyperplasie adipocytaire entraînant ainsi une altération de la morphologie et de la fonction sécrétoire du tissu adipeux (Batchelor et al., 1976). En effet, les cellules formant le tissu adipeux régulent le métabolisme énergétique en sécrétant des composés inflammatoires dont les cytokines telles 62 que le TNFα et l’IL-6, ou encore des hormones telles que la leptine (pour revue (Tilg and Moschen, 2006)). La mise en évidence du développement d’un état systémique d’inflammation à bas bruit chez des sujets fortement obèses a permis de caractériser l’obésité comme une maladie inflammatoire chronique (Clement et al., 2004; Cottam et al., 2004; Trayhurn and Wood, 2004). Le tissu adipeux blanc, longtemps considéré comme un organe inerte servant uniquement de réserve énergétique, est surtout un organe endocrine ayant une forte capacité à sécréter un grand nombre de facteurs protéiques regroupés sous le terme d’adipokines (Ahima and Flier, 2000a; Trayhurn and Wood, 2004). En effet, les adipocytes sécrètent la leptine, la résistine et l’adiponectine, hormones impliquées dans le contrôle de l’homéostasie énergétique, ainsi que des molécules inflammatoires telles que des chémokines, des protéines de la phase aiguë dont la protéine C réactive et surtout les cytokines inflammatoires, TNFα et IL-6. Ainsi, il a été montré que le tissu adipeux exprimait un grand nombre de protéines associées à l’inflammation, mais que les gènes codant pour ces protéines étaient préférentiellement localisés dans la fraction stroma-vasculaire (Clement et al., 2004). De plus, la plupart de ces gènes sont connus pour être impliqués dans la biologie des macrophages, suggérant un rôle de ces derniers dans la mise en place de l’inflammation chronique observée chez la souris obèse (Xu et al., 2003a). En effet, il a pu être démontré une accumulation des macrophages dans le tissu adipeux, positivement corrélée à la masse corporelle et à la taille des adipocytes (Weisberg et al., 2003). Le tissu adipeux est donc à l’origine d’une inflammation et d’une infiltration progressive des macrophages au fur et à mesure du développement de l’obésité (Weisberg et al., 2003). Cependant, l’origine et la succession des évènements conduisant à la mise en place de cette inflammation restent mal comprises. En particulier, l’inflammation induite par les adipocytes est-elle responsable de l’infiltration des macrophages ou au contraire, est-ce l’accumulation des macrophages au sein du tissu adipeux qui initie la mise en place de l’inflammation chronique? Néanmoins, il a pu être montré que des changements morphologiques des adipocytes induisaient des variations physiques dans leur environnement, ainsi que des modifications de la fonction paracrine du tissu adipeux (Wellen and Hotamisligil, 2003). Au cours de l’obésité, les adipocytes libèrent de faibles quantités de TNFα qui vont stimuler la production de MCP-1 (Monocyte chemoattractant protein-1) par les préadipocytes (Xu et al., 2003a). De façon similaire, les cellules endothéliales sont également capables de sécréter le MCP-1 en réponse aux cytokines, permettant ainsi 63 l’attraction des macrophages vers le tissu adipeux. De plus, l’augmentation de la sécrétion de leptine par les adipocytes pourrait également contribuer au recrutement des macrophages en facilitant leur transport vers le tissu adipeux via la stimulation de l’angiogénèse (SierraHonigmann et al., 1998). Il serait intéressant de tester cette hypothèse en étudiant le recrutement macrophagique soit chez des souris ob/ob ou chez des souris db/db, soit chez des animaux ayant reçu des injections de leptine. Ainsi, l’accumulation d’adipocytes et de macrophages au sein du tissu adipeux serait donc responsable de la forte production de cytokines inflammatoires observée au cours de l’obésité (Clement et al., 2004) (Figure 8). Adipocyte Cellule endothéliale Préadipocyte Prise de poids TNFα MCP-1 angiogénèse VEGF Leptine Recrutement des macrophages Prise de poids TNFα IL-6 IL-1β MCP-1 Recrutement des macrophages Figure 8 : L’ L’obé obésité sité, une pathologie inflammatoire chronique IL: Interleukine, MCP-1: Monocyte chemotacttractant protein-1, TNFα: Tumor necrosis factor alpha, VEGF: Vascular endothelial growth factor 64 (2) Les cytokines impliquées Le TNFα a été la première cytokine inflammatoire dont l’expression et la sécrétion ont été localisées dans le tissu adipeux blanc. En effet, l’expression de l’ARNm du TNFα est fortement augmentée dans ce tissu, dans des modèles d’obésité chez la souris (Hotamisligil et al., 1993). Le TNFα semble impliqué dans le développement de l’insulinoresistance. En effet, il a été montré que les taux élevés de TNFα étaient positivement corrélés à l’insulinémie. Le TNFα participerait à la mise en place de l’insulinorésistance en inhibant la voie de transduction associée à l’insuline (Coppack, 2001; Hotamisligil, 2003). Chez l’homme, plusieurs études ont montré que la sécrétion de TNFα serait majoritairement induite par des cellules de la fraction stroma-vasculaire et plus particulièrement les macrophages infiltrants (Fain et al., 2004; Weisberg et al., 2003). Au niveau du tissu adipeux, le TNFα a une action autocrine et paracrine de régulation locale, induisant ainsi de nombreux processus comme l’apoptose (Coppack, 2001; Prins et al., 1997). De plus, le TNFα est impliqué dans la synthèse, la sécrétion et l’action d’autres cytokines dont l’IL-6 et la protéine C (Bullo et al., 2003; Coppack, 2001). Contrairement à d’autres adipokines, la libération dans la circulation sanguine du TNFα synthétisé par le tissu adipeux reste discutée, bien que le degré d’obésité ait été corrélé à une augmentation des taux plasmatiques du récepteur soluble du TNFα (Bastard et al., 2000; Bullo et al., 2003). L’IL-6 est l’autre cytokine inflammatoire majeure exprimée par les adipocytes dans une situation d’obésité, mais également au niveau des noyaux hypothalamiques qui régulent la composition corporelle (Fried et al., 2000). Dans des conditions physiologiques normales, il a été estimé que plus d'un tiers de la concentration circulante totale d'IL-6 a pour origine le tissu adipeux. Comme le TNF-α, l'IL6 est exprimé dans le tissu adipeux mais la source cellulaire pourrait être les adipocytes matures, les préadipocytes ou la fraction stroma-vasculaire (Clement et al., 2004; Yudkin et al., 2000). Chez les patients obèses, les taux circulants d’IL-6 sont augmentés de façon corrélée avec l’IMC (Mohamed-Ali et al., 1997). Parmi ses effets, l'IL6 est un des facteurs importants du contrôle de la production de CRP. Des travaux chez l'homme ont mis en évidence une relation positive entre les quantités d'IL6 dans le tissu adipeux, les concentrations circulantes d'IL6 et celles de CRP (Bastard et al., 1999). D'autres paramètres métaboliques comme la sensibilité à l'insuline sont également corrélés aux concentrations circulantes d'IL-6. L’IL-6 est capable de stimuler l'axe corticotrope et augmente les concentrations circulantes de triglycérides et de glucose. De plus, l'IL6 serait 65 mis en cause dans l'insulinorésistance qui se développe lors d'obésité. Le récepteur de l'IL6, le gp130, fait partie de la famille des récepteurs des cytokines de classe I qui recrutent les Janus Kinases (JAK) pour propager le signal cellulaire. L'activation des JAK entraîne la phosphorylation de facteurs de transcription de la famille de STATs, ce qui permet leur dimérisation, leur activation et leur translocation dans le noyau où ils vont affecter la transcription de gènes cibles (Ihle et al., 1995) (Figure 9). Des travaux récents ont permis de démontrer l'existence d'interactions entre les voies de signalisation de l'IL-6 et celle de l'insuline (Hotamisligil et al., 1996; Kroder et al., 1996; Mooney et al., 2001). Ces interactions se traduisent en général par une diminution de la signalisation de l'insuline en présence de cytokines. Les taux circulants d’IL-6 sont également corrélés à l’apparition de perturbations métaboliques et cardio-vasculaires. Enfin, une étude a mis en évidence les effets "antiobésité" de l'IL-6. Les souris dont le gène codant pour l'IL-6 a été inactivé (IL-6-/-) ont un poids normal à la naissance et développent à l'âge adulte une obésité en partie corrigée par l’administration d’IL-6 (Wallenius et al., 2002). D’autres cytokines sont probablement mises en jeu. Ainsi, la consommation d’un régime hyperlipidique chez des rats entraîne, en plus de l’augmentation de l’expression de TNFα et d’IL-6, une augmentation de l’expression hypothalamique d’IL-1β, d’IL-2 et d’IL-7 (De Souza et al., 2005). De plus, suite à une perte de poids, le tissu adipeux de sujets obèses présente une augmentation de l’expression des gènes codant pour des cytokines antiinflammatoires telles que l’IL-10 et l’IL-1ra (Clement et al., 2004). 66 Leptine IL-6 gp130 IL-6R ObR P P JAK2 JAK Sos SH P Grb2 JAK2 P P -2 P P IRS STAT3 P Ras Akt Activation de la voie JAK/STAT Raf STAT3 Activation de la voie des MAPK P MEK P STAT3 PI3K ERK Transcription gènes cibles Figure 9 : Voie de signalisation associé associée à la leptine et à l’ILIL-6 Akt: Sérine/Thréonine kinase, ERK: Extracellular signal-regulated kinase, gp130: Glycoprotéine 130, Grb2: Growth factor receptor bound protein 2, IL-6R: Interleukine 6 receptor, IRS: Insulin receptor substrat, JAK2: Janus kinase 2, MEK: Extracellular signalregulated kinase kinase, ObR: Leptin receptor, PI3K: phosphatidylinositol 3-kinase, Raf: Sérine/Thréonine kinase, Ras: Small GTP binding protein, SHP-2: SH2 domain containing tyrosine phosphatase 2, Sos: Son of svenless, STAT3: Signal of transducer and activator of transcription 3 (3) Modulation de la répose immunitaire Si l’obésité est associée à une augmentation de l’expression des cytokines inflammatoires, elle est également accompagnée d’une perturbation de la réponse immunitaire (Nieman et al., 1999). Ainsi, une réduction du nombre de lymphocytes, ainsi que de leur 67 réponse proliférative, a été établie à la fois chez des patients obèses et dans des modèles génétiques d’obésité chez les rongeurs (Lord et al., 1998; Nieman et al., 1999). De plus, des études cliniques récentes ont suggéré que l’obésité serait associée à un dysfonctionnement de la réponse immunitaire et de ce fait, exacerberait la sensibilité à certains pathogènes. Ainsi, l’obésité pourrait contribuer à la pathogenèse de l’asthme puisqu’il a été montré une corrélation positive entre l’IMC et l’incidence de l’asthme chez les jeunes garçons (Mannino et al., 2006). De plus, l’augmentation des septicémies chez les sujets obèses pourrait être due à une exacerbation de l’inflammation microvasculaire, ainsi qu’à la suractivation des cellules endothéliales (Vachharajani et al., 2005). Un modèle de rats génétiquement obèses (fa/fa) présente une perturbation du comportement de maladie, en particulier une exacerbation de la fièvre et de l’anorexie, en réponse à la microinfusion i.c.v. d’IL-1β (Plata-Salaman et al., 1998). Enfin, une augmentation de la production d’IFNγ par les lymphocytes T activés a été observée chez des enfants obèses, suggérant que la prédominance de la réponse Th1 contribue à l’inflammation associée à l’obésité (Pacifico et al., 2006). Cet état inflammatoire associé à l’obésité pourrait jouer un rôle dans la pathogenèse de nombreuses maladies co-morbides telles que le diabète de type 2, l’hypertension, l’insulinorésistance, l’athérosclérose, certains cancers, ainsi que dans le développement de troubles de l’humeur fréquemment décrit chez les sujets obèses. Résumé L’obésité, pathologie complexe aux causes multifactorielles, est désormais une véritable épidémie mondiale. Problème de santé publique, elle est associée à un grand nombre de pathologies co-morbides. L’obésité se caractérise par un excès de tissu adipeux dont la morphologie et la fonction sécrétoire sont altérées, entraînant la mise en place d’une inflammation à bas bruit. Les principaux constituants cellulaires du tissu adipeux, les adipocytes et les macrophages de la fraction stroma-vasculaire sécrètent des adipokines qui jouent entre autre un rôle dans le maintien de la balance energétique et/ou dans la mise en place de la réponse inflammatoire telles que la leptine, le TNFα et l’IL-6. 68 b) Les troubles de l’humeur et du comportement L’obésité qui s’accompagne chez la plupart des patients de troubles de la conduite alimentaire est souvent caractérisée par une diminution de l’estime de soi, une insatisfaction globale de la vie, de l’impulsivité, des phobies et de l’hostilité. Mais les patients obèses présentent également des troubles caractéristiques de l’humeur et du comportement. Ainsi, l’association obésité-troubles de la conduite alimentaire est souvent accompagnée par le développement de dépression, d’anxiété ou encore de troubles bipolaires. Une étude récente réalisée sur des femmes obèses montrent que 75 % d’entre elles présentent un score positif au test d’auto-évaluation de la dépression, et environ 60 % souffrent d’anxiété moyenne à élevée (Giusti and Panchaud, 2007). L’impact psychologique dans l’apparition de ces troubles est bien évidemment à prendre en compte. En effet, la société de consommation qui nous entoure a créé un monde où l’image corporelle se doit de correspondre à des standards de poids et de taille. La discrimination associée au rejet de la différence participe donc à l’état de dévalorisation psychologique de certains sujets obèses. Mais cet aspect psychologique n’est probablement pas le seul à intervenir. En effet, l’inflammation à bas bruit associée à l’obésité est responsable de la libération de médiateurs inflammatoires, les cytokines dont l’action a été décrite précédemment. Ainsi il serait cohérent d’envisager que l’état d’inflammation chronique à bas bruit observé dans l’obésité puisse avoir des conséquences sur le cerveau et entraîner la mise en place de troubles de l’humeur. (1) Les troubles anxieux De plus en plus d’études mettent en évidence un lien entre obésité et anxiété. Ainsi, une étude réalisée sur des femmes obèses a mis en évidence que les sujets présentant une obésité sévère avaient déjà eu au cours de leur vie des épisodes dépressifs et anxieux (Wadden et al., 2006). L’obésité augmente significativement les troubles de l’anxiété à n’importe quelle période de la vie. Le risque de développer des troubles de type anxieux est deux fois plus élevé chez des femmes obèses que chez des femmes avec un faible IMC (Becker et al., 2001). Cette augmentation de la prévalence des troubles anxieux chez les sujets obèses pourrait de plus faciliter la mise en place d’un état dépressif chez ces sujets. Très peu d’études chez l’animal établissent un lien entre anxiété et obésité. L’injection de leptine chez des souris ob/ob, qui ne possèdent donc pas le gène codant pour la leptine, diminue l’anxiété chez ces 69 souris comme le montrent les résultats obtenus dans l’EPM (Asakawa et al., 2003). Comme nous l’avons vu précédemment, l’injection de LPS facilite la mise en place de troubles anxieux (Lacosta et al., 1999). De plus, l’injection chronique intraveineuse d’IL-2 ou d’IFNα provoque chez l’homme une chute des taux circulants de Trp, corrélée positivement à l’intensité des symptômes anxieux (Capuron and Dantzer, 2003). Compte tenu de ces résultats, la possibilité de l’implication des cytokines et de l’IDO dans le développement des troubles anxieux observé chez les sujets obèses peut être envisagée. De plus, il a été constaté chez les obèses une augmentation des taux de cortisol. De même, des dysfonctionnements de l’axe corticotrope ont été observés chez les modèles animaux obèses qui ont permis de mettre en évidence un lien entre obésité et glucocorticoïdes. Ainsi, la souris mutante ob/ob manifeste une hypercorticostéronémie et une obésité réversible par surrénalectomie (Naeser, 1973). Le rat obèse Zucker présente également une hypercorticostéronémie associée à une diminution de la réactivité de l’axe corticotrope après stimulation avec de la CRH (Castonguay et al., 1986). Cette hypersécrétion de corticostérone pourrait être à l’origine des troubles anxieux observés dans des situations d’obésité. (2) Les troubles dépressifs L’obésité et la dépression ont une prévalence en augmentation dans nos populations et sont associées à d’autres complications de santé. Pendant longtemps ces deux pathologies ont été étudiées de façon totalement dissociée, mais il semblerait qu’il existe une forte relation entre les deux. Un certain nombre d’explications ont été fournies pour comprendre cette relation entre obésité et troubles dépressifs, mais les arguments avancés sont néanmoins plus souvent psychologiques que physiologiques (Faith et al., 2002; McElroy et al., 2004; Ryden et al., 2004). Ainsi, la stigmatisation du surpoids et de l’obésité peut conduire à une dévalorisation de soi, à la création d’une image du corps négative ce qui peut entraîner une dépression (Anderson et al., 2007; Latner and Stunkard, 2003). La sévérité de l’obésité et de la dépression semble être corrélée. Chez les personnes les plus obèses, la prévalence des dépressions majeures augmente de façon significative. La relation entre le poids et le niveau de dépression dépend donc du degré d’obésité (Stunkard et al., 2003). De même, la présence d’une dépression clinique prédispose au développement d’une obésité. Des individus développant des épisodes de type dépressif entre 15 et 19 ans ont significativement plus de 70 chance d’avoir un IMC important à l’âge adulte que les individus n’ayant jamais développé de dépression (Carpenter et al., 2000). Cette relation est cependant dépendante d’un certain nombre de facteurs dont le sexe et le statut socio-économique (Carpenter et al., 2000). Il existerait également des bases biologiques communes aux deux pathologies, parmi lesquelles la production de cytokines inflammatoires et/ou la perturbation de l’axe HPA et du métabolisme de la 5-HT semblent être de bons candidats. Ainsi, l’obésité et la dépression sont deux pathologies comprenant une composante inflammatoire. La dépression est associée à une production accrue de cytokines inflammatoires périphériques et centrales, corrélée à la sévérité des troubles de l’humeur, tandis que l’obésité se caractérise par un état inflammatoire chronique, associé à l’accumulation des adipocytes et l’infiltration progressive des macrophages sécrétant la leptine et les cytokines inflammatoires. Ainsi, il a été proposé que cette production excessive de cytokines et plus largement de molécules inflammatoires sécrétées par le tissu adipeux, puisse être un lien entre l’obésité et le développement des troubles de l’humeur. En effet, le TNFα, une des cytokines produites par le tissu adipeux lors d’obésité, participe à l’induction de l’expression de l’IDO et à la mise en place de troubles de type dépressif evalués par un FST (Andre et al., 2008b; Moreau et al., 2008b). L’axe HPA pourrait également être un intermédiaire possible entre l’obésité et la dépression puisqu’un rétrocontrôle négatif défectueux de l’axe HPA et impliquant les récepteurs aux glucocorticoïdes est observé dans ces deux pathologies (Jessop et al., 2001; Pariante, 2004). De plus, les concentrations de glucocorticoïdes, fortement augmentées chez les sujets obèses, sont capables de réduire les taux de Trp probablement en activant l’IDO et la TDO, inhibant alors la synthèse de 5-HT (Maes et al., 1990). Largement impliquée dans le développement des troubles de l’humeur, la 5-HT cérébrale est également connue pour participer au contrôle de l’appétit en diminuant la prise alimentaire. Certains de ses récepteurs ont été localisés au niveau de l’hypothalamus, structure clé du contrôle de la balance énergétique (Romanova et al., 2004). De plus, l’administration d’antidépresseurs favorisant la neurotransmission serotoninergique, diminue dans un même temps la prise alimentaire (Sugrue, 1987; Vickers et al., 2000). Ainsi, confortant l’hypothèse d’une relation physiologique et non uniquement psychologique entre l’obésité et la dépression, les agents psychotropes sont de plus en plus utilisés dans le traitement de l’obésité. La plupart des psychostimulants, certains antidépresseurs et de nouveaux antiépileptiques sont des agents psychotropes favorisant la perte de poids. Bien que les 71 mécanismes d’action des psychotropes sur l’appétit et le poids ne soient pas encore connus, certaines explications ont été proposées (Appolinario et al., 2004). Les psychotropes pourraient agir sur des neurotransmetteurs au niveau du système nerveux central pour contrôler la prise alimentaire et/ou la dépense énergétique. Les psychotropes utilisés sont les SSRI (selective serotonin reuptake inhibitor) tels que la fluoxetine et la sertraline, un SNRI (serotonin-noradrenaline reuptake inhibitor) : la venlafaxine, les NDRI (noradrenaline and dopamine reuptake inhibitor) tels que le bupropion et des antiépileptiques comme le topiramate. Une diminution des concentrations cérébrales de 5-HT, du ratio Trp/acides aminés neutres (tyrosine + phenylalanine + leucine + isoleucine + valine), ainsi que des taux circulants de Trp a été observée chez des sujets obèses (Ashley et al., 1985; Breum et al., 2003). De plus, l’insuline, dont l’expression est fortement induite par les régimes riches en sucre, réduit les taux d’acides aminés neutres, favorisant ainsi l’accès du Trp au cerveau. Ainsi, le Trp jouerait chez ces personnes un rôle potentiellement important dans le développement des troubles dépressifs et serait la cible de modulations endocriniennes. Ces variations des taux plasmatiques de Trp suggèrent une activation soutenue de la voie du catabolisme du Trp et donc d’un rôle potentiel de l’IDO chez les patients obèses (Brandacher et al., 2006; Breum et al., 2003). De plus, la suractivation de l’IDO a souvent été proposée pour sous-tendre la relation entre stress, inflammation et troubles de l’humeur (Leonard, 2005), en particulier au travers des altérations de la transmission sérotoninergique et/ou la génération des dérivés neurotoxiques de la voie du catabolisme du Trp résultant de son activation (Capuron and Dantzer, 2003; Myint and Kim, 2003). Ainsi, il serait possible d’envisager que l’état d’inflammation chronique à bas bruit observé dans l’obésité puisse avoir des conséquences sur le cerveau et plus particulièrement sur l’IDO, entraînant la mise en place de troubles dépressifs par des mécanismes semblables à ceux décrits précédemment dans les modèles d’inflammation d’origine infectieuse. Il a d’ailleurs été montré que l’obésité favorisait la réponse de type Th1 permettant une production accrue d’IFNγ, cytokine inflammatoire fortement impliquée dans l’induction de l’IDO (Pacifico et al., 2006). Compte tenu de ces résultats, la possibilité de l’implication de l’IDO dans le développement des troubles de l’humeur associés à l’obésité a été proposée chez l’homme (Brandacher et al., 2007; Brandacher et al., 2006) bien qu’il n’existe à ce jour aucune donnée chez l’animal permettant de le confirmer. 72 Enfin, un certain nombre d’études a décrit une relation entre leptine et 5-HT, proposant ainsi la 5-HT comme une des bases biologiques communes à l’obésité et la dépression. En effet, l’infusion icv de leptine chez le rat induit une réduction de la liaison du transporteur de la 5-HT dans le cortex frontal (Charnay et al., 2000). Des études immunohistochimiques ont permis de mettre en évidence la colocalisation du récepteur de la leptine et des neurones 5-HT, NA, DA chez le rat (Hay-Schmidt et al., 2001). La colocalisation du récepteur de la leptine et du transporteur de la 5-HT au sein du noyau dorsal du raphé a également été montrée chez des souris ob/ob (Collin et al., 2000). Enfin, une atrophie du lobe temporal a été corrélée à une augmentation de l’IMC chez la femme obèse (Gustafson et al., 2004). (3) Les troubles cogni cognitifs tifs Différents liens commencent à être mis en évidence entre obésité et démence. Il a tout d’abord été montré qu’une relation entre la perte de poids et la survenue de démence sénile, et notamment qu’une perte de poids précède souvent l’apparition de démence chez les personnes âgées (Barrett-Connor et al., 1998; Franklin and Karkeck, 1989). Mais cette perte de poids apparaît probablement plus comme un des premiers signes de démence que comme son origine. Par contre, de plus en plus d’étude démontrent que le surpoids et l’obésité sont des facteurs de risque de la maladie d’Alzheimer (Gustafson et al., 2003; Kivipelto et al., 2005; Rosengren et al., 2005). En effet, en augmentant le risque de survenue de pathologies vasculaires, le surpoids et l’obésité peuvent favoriser le développement de maladie d’Alzheimer ou de démences vasculaires. De plus en plus d’études rapportent une association entre les fonctions cognitives, l’IMC et diverses mesures d’adiposité, bien que ces études soient difficiles à comparer entre elles puisqu’elles n’utilisent pas les mêmes outils de mesure des troubles cognitifs ou de l’adiposité. Ainsi, l’étude Framingham Heart montre que des hommes obèses pendant plus de 16 ans présentent des capacités altérées dans les tâches de reproductions visuelles ou dans les tâches de reconnaissance de séries de chiffres (Elias et al., 2005). Mais ces études suggèrent un lien entre l'obésité et les démences séniles généralement à un stade avancé de chacun de ces troubles. Plus récemment il a été observé une relation linéaire entre l'excès de poids et certaines capacités cognitives à un stade plus précoce dans une population adulte d'âge moyen en bonne santé. L’analyse de l’IMC et des performances dans les épreuves de mémoire, d’attention et de vitesse de traitement des informations ont permis de mettre en évidence que les performances des personnes d’IMC élevé étaient inférieures à celles des personnes d’IMC 73 faible. De plus, les IMC élevés semblent également associés à un léger déclin de la mémoire sur 5 ans. Ces résultats ont été obtenus après élimination de nombreux biais potentiels, notamment le niveau d'éducation des sujets, la présence de diabète ou une pression sanguine élevée, facteurs susceptibles de modifier les résultats (Cournot et al., 2006). Des études menées sur le rat ont permis de mettre en évidence l’impact d’un régime hyperlipidique sur les capacités cognitives. Les animaux ont été testés dans différents paradigmes afin de mettre en évidence les différents aspects de la cognition : la mémoire spatiale, la mémoire procédurale, la mémoire à long terme ou à court terme, impliquant l’hippocampe et le thalamus (Winocur, 1985; Winocur, 1991). Les rats nourris avec un régime riche en graisse présentent des altérations de leurs capacités dans toutes ces tâches, et dans certains cas (notamment pour la mémoire à long terme) le déficit est comparable à celui observé chez les animaux avec des lésions cérébrales ou chez les rats âgés nourris avec un régime normal (Winocur and Greenwood, 2005). Les déficits cognitifs sont particulièrement observés chez les animaux ayant reçu un régime riche en acides gras saturés (Winocur and Greenwood, 1999). Le lien entre l’IMC et les fonctions cognitives pourrait s’expliquer par les conséquences vasculaires de l’obésité déjà mises en cause dans certaines démences (Kloppenborg et al., 2008). Un des autres liens possibles pourrait être le fait que les régimes hypercaloriques contribuent à augmenter la résistance à l’insuline et diminuer la capture du glucose dans le cerveau. L’altération de la régulation du glucose est un important facteur de déclin cognitif associé au diabète de type 2. Ainsi l’administration de glucose à des rats nourris avec un régime hyperlipidique améliore significativement les capacités cognitives hippocampedépendantes et suggère qu’un des liens entre l’altération des fonctions cognitives et les régimes alimentaires riches en graisse pourrait être la résistance à l’insuline et/ou l’intolérance au glucose (Winocur et al., 2005). Mais le tissu adipeux est un organe endocrine qui, comme nous l’avons vu précédemment, sécrète des hormones, des cytokines et des facteurs de croissance, induisant un état inflammatoire à bas bruit. Plusieurs travaux montrent une relation entre les troubles cognitifs et le statut inflammatoire chez les personnes âgées. Ainsi, l’élévation du taux plasmatique d’IL-6 a été corrélée aux altérations cognitives dans plusieurs études (Rafnsson et al., 2007; Weaver et al., 2002). Le rôle de l’IL-6 dans le déclin des fonctions cognitives a été mis en évidence également par l’utilisation de souris transgéniques, d’une part déficientes pour le gène de l’IL-6, d’autre part surexprimant l’IL-6 dans les astrocytes. Les souris IL-6 74 KO sont ainsi protégées de la diminution liée à l’âge des performances cognitives (Braida et al., 2004), tandis que les souris exprimant chroniquement l’IL-6 au niveau cérébral par les astrocytes développent en vieillissant des déficits d’apprentissage corrélés à des marqueurs de neurodégénérescence dans le cortex frontal et l’hippocampe (Heyser et al., 1997). Enfin, dans cette situation d’inflammation à bas bruit qu’est le vieillissment, les cytokines inflammatoires, et en particulier l’IL-1β entrainerait une diminution de la PLT associée à l’augmentation d’activation microgliale chez les rats dès l’âge de 15 mois (Griffin et al., 2006). D’autres expériences menées sur des rongeurs de laboratoire viennent confirmer l’implication des processus neuroinflammatoires dans le déclin cognitif lié à l’âge. Ainsi, il serait possible d’envisager que l’inflammation chronique à bas bruit associée à l’obésité puisse entraîner, via la production de cytokines inflammatoires comme l’IL-6, le TNFα ou encore bien que moins étudié l’IL-1β, des troubles cognitifs chez les personnes obèses. Cette inflammation chronique à bas bruit pourrait également être à l’origine des troubles cognitifs en activant l’IDO. Chez les patients obèses, l’inflammation à bas bruit entraînant la production de cytokines inflammatoires pourrait être à l’origine de l’activation de l’IDO et ainsi favoriser la voie de dégradation de la kynurénine. La production des dérivés neurotoxiques tels que la QUIN ou la 3-OH KYN pourrait alors être impliquée dans la mise en place des troubles cognitifs observés chez les patients obèses. Résumé La survenue fréquente de troubles de l’humeur et de la cognition chez des patients souffrant d’obésité suggère l’existence d’une relation entre ces différentes pathologies. Même si des explications psychologiques ont été établies, l’hypothèse d’une implication de bases biologiques a été avancée. La perturbation de la réponse inflammatoire et des altérations du système 5-HT, ainsi que de l’axe HPA, semblent être les dénominateurs biologiques communs de ces différentes pathologies. La production chronique de cytokines induite dans l’obésité pourrait participer au développement des troubles de l’humeur et de la cognition observés chez les patients obèses. 75 76 Objectifs 77 78 Objectifs De nombreuses études menées chez l’homme ont montré que l’obésité est associée à un état inflammatoire chronique caractérisé par une augmentation de la sécrétion de nombreuses molécules dont la leptine, la C-reactive protein (CRP) et des cytokines inflammatoires comme le TNF-α et l’IL-6 (Clement et al., 2004). Des données récentes suggèrent que cette inflammation périphérique pourrait également présenter une composante au niveau cérébral. De Souza et al ont d’ailleurs montré que l’exposition de rats à un régime hypercalorique particulièrement riche en acides gras, entraîne au niveau hypothalamique une augmentation de l’expression de différentes cytokines inflammatoires (IL-6, TNF-α, IL-1β…), s’accompagnant de l’activation de leurs voies de signalisation intracellulaire (notamment une augmentation de l’activité c-Jun-N-terminal kinase et de NFkB), mais également de l’altération de la voie de signalisation de l’insuline (De Souza et al., 2005). L’intensité de la situation inflammatoire semble être liée au degré d’obésité. Ainsi, il est possible de distinguer différentes situations d’obésité : une obésité modérée qui ne s’accompagne pas forcément de pathologies comorbides, et une obésité morbide associée à différents types de complications comme des maladies cardio-vasculaires, de l’hypertension artérielle ou un diabète de type 2. Notre laboratoire a été un des pionniers dans l’étude de l’expression et de l’action des cytokines au niveau central et de leurs conséquences, tant comportementales que neurobiologiques. Cette relation entre système de l'immunité innée et cerveau a particulièrement été étudiée dans le cadre du comportement de maladie regroupant un ensemble de symptômes non spécifiques (fièvre, activations neuroendocriniennes, anorexie, anhédonie, repli sur soi, perte d’intérêt pour l’environnement…) observés chez les individus malades et pouvant être reproduits chez l’animal en réponse à l’injection d’un inducteur de cytokines tel que le lipopolysaccharide (LPS) (Dantzer, 2001). Dans le cas d’une exposition prolongée et non régulée de l’activation du réseau de cytokines, le comportement de maladie peut laisser place à de véritables troubles de l’humeur (anxiété, dépression) et de la cognition associés à une chute des taux circulants de tryptophane. Il a été montré que l'indoléamine 2,3dioxygénase (IDO), une enzyme dégradant le tryptophane en réponse aux cytokines (Lestage et al., 2002; Moreau et al., 2005) est impliquée dans l’induction de la dépression notamment associée à une injection de LPS, et que cette action serait plus particulièrement dépendante du catabolisme du tryptophane via la voie da la kynurenine (O'Connor et al., 2008). L’activation 79 de l’IDO en situation inflammatoire aboutit à la production de dérivés neurotoxiques (3-OHkynurénine, acide quinolinique) se comportant comme des agonistes des récepteurs glutamatergiques de type NMDA (Taylor and Feng, 1991). Ainsi, l’activation de l’IDO suite à une infection pourrait également jouer un rôle dans l’apparition de troubles cognitifs induits par les cytokines. L’ensemble des études réalisées dans ce travail de thèse a donc eu pour objectif général de déterminer chez la souris si l’inflammation chronique à bas bruit qui est associée à un état d’obésité entraînait le développement de troubles de l’humeur et de la cognition. De plus, afin d’identifier au mieux les bases neurobiologiques potentielles à l’origine de ces troubles, nous avons choisi de nous placer dans deux situations différentes : un état d’obésité modérée induite par l’administration d’un régime enrichi mais n’entraînant pas le développement de pathologies co-morbides graves, et un état d’obésité morbide d’origine génétique associée à d’autres pathologies notamment un diabète de type 2. Dans les deux cas, les conséquences de cette obésité sur l’état d’activation inflammatoire et les altérations neurochimiques et comportementales qui en découlent ont été étudiées en détail. Objectif 1 : Etude des conséquences de l’obésité induite par la consommation d’un régime hypercalorique (modèle « Diet Induced Obesity » ou DIO) sur l’inflammation et les troubles de l’humeur et de la cognition. Objectif 2 : Etude des conséquences d’une infection périphérique chez un modèle d’obésité DIO sur la réponse inflammatoire, l’activation de l’IDO et les troubles du comportement associés. Objectif 3 : Etude des conséquences d’une obésité morbide (modèle de souris db/db) sur l’activation de l’IDO et les troubles du comportement associés. 80 Démarche expérimentale 81 82 Démarche expérimentale Afin de répondre aux différents objectifs décrits précédemment, nous avons choisi d’utiliser différentes approches expérimentales complémentaires chez l’animal ; soit deux modèles d’obésité, l’un induit par l’ingestion d’un régime hypercalorique, l’autre d’origine génétique. Nous avons également décidé de nous placer dans un contexte de stimulation périphérique du SI aiguë afin d’évaluer la réponse immunitaire dans une situation déjà établie d’inflammation chronique. Nous nous attarderons dans un premier temps à expliquer le choix de ces deux modèles animaux d’expérimentation puis redéfinirons les différents objectifs de ce travail en décrivant les expériences mises en œuvre pour y répondre. A. Le choix des modèles utilisés L’obésité est caractérisée comme une situation inflammatoire chronique à bas bruit. Pour reproduire cette situation d’obésité de façon expérimentale, différentes approches peuvent être envisagées. En effet, dans nos sociétés, la prise de poids est majoritairement due à une totale dérégulation de la prise alimentaire et à la consommation d’aliments hypercaloriques. Afin de se placer dans une situation comparable, nous avons dans un premier temps décidé d’utiliser un modèle animal d’obésité induite par le régime alimentaire. Dans le modèle animal de DIO (diet-induced obesity), les rongeurs rendus obèses par un excès de calories dans leur nourriture ne répondent pas à des concentrations de leptine efficaces chez les animaux minces (Morrison, 2008). Par conséquent, les souris DIO, comme les hommes obèses sont résistantes à la leptine et de ce fait constituent un modèle animal proche de la plupart des situations d’obésité rencontrées chez l’homme. Dans notre modèle, nous avons choisi l’emploi d’un régime hypercalorique réalisé au sein de notre laboratoire à partir d’un mélange de chips, de lardons, de pâté de jambon, de chocolat, de biscuits et d’aliments pour souris. La composition énergétique de ce régime est la suivante : lipides, 32% ; glucides, 17,5% ; protéines, 11,3% ; 4,4 Kcal/g. Ce régime est donc hypercalorique quand on le compare au régime classique administré habituellement aux souris (Régimé Safe A04) dont la composition est : lipides, 3,1%; glucides, 60%; protéines, 16,1% ; 3,3 Kcal/g. Bien que ce régime soit hyperlipidique, nous avons choisi de ne pas utiliser un modèle de type « high fat » dans lequel les concentrations en lipides sont bien plus importantes que dans notre régime. En 83 effet, les régimes hyperlipidiques présentent un pool excédentaire de lipides qui peut entraîner une inflammation locale de la barrière intestinale (Cabre and Gassull, 2003). L’inflammation à bas bruit observé alors chez ces animaux peut ne pas être uniquement représentative de l’état inflammatoire du tissu adipeux. Les patients obèses présentent également souvent une plus grande susceptibilité devant les infections, comme par exemple lors de septicémie (Vachharajani et al., 2005). Afin d’évaluer l’impact d’une sur-inflammation, nous avons également soumis ces animaux à l’injection de LPS, un fragment de bactérie Gram négatif. Ce modèle d’obésité est donc proche des situations réelles d’obésité rencontrées dans nos sociétés puisque l’obésité de nos souris est due à l’augmentation de la charge calorique de la prise alimentaire et à la consommation d’un régime déséquilibré. Mais, dans ce modèle, l’obésité observée est une obésité « modérée » qui n’est pas associée à d’autres co-morbidités marquées comme un diabète de type 2 ou des pathologies cardiovasculiares. Or la prévalence des troubles de l’humeur et de la cognition observée chez les patients obèses augmente avec la sévérité de l’obésité. Afin de se placer dans un contexte plus propice à l’observation de certains troubles, nous avons également réalisé nos différentes études sur un modèle d’obésité génétique. Les souris db/db présentent une mutation des récepteurs de la leptine altérant la sensation de satiété. Bien que ce modèle ne soit pas un reflet de la réalité puisque l’obésité génétique est une pathologie rare chez l’homme, il présente l’avantage de créer une situation d’obésité morbide. Les animaux présentent des pathologies associées comme un diabète de type 2, une insulino-résistance et des problèmes cardio-vasculaires. Ce modèle est souvent utilisé dans le cadre d’étude sur le diabète de type 2, et cette pathologie associée à l’obésité morbide participe probablement au développement des troubles étudiées. Mais nous avons choisi dans cette étude de nous intéresser à l’impact de l’inflammation associée à l’obésité, sans pour autant éluder le probable impact des médiateurs métaboliques. De plus, chez ces animaux ce n’est pas le type calorique du régime qui va être responsable de la prise de poids, mais seulement l’augmentation de la portion alimentaire. Ce contexte pathologique plus avancé devrait nous permettre de mettre en évidence des troubles non encore mis en place dans le premier modèle. Ainsi ces deux modèles, souris DIO et souris db/db apparaissent comme deux approches complémentaires pour étudier l’impact de l’inflammation sur les troubles du comportement associés à l’obésité. 84 B. Objectifs et expériences mises en œuvre 1. Objectif 1 : Etude des conséquences de l’obésité induite par la consommation d’un régime hypercalorique (modèle DIO) sur l’inflammation et les troubles de l’humeur et de la cognition Afin de répondre à ce premier objectif, nous avons choisi d’utiliser un régime enrichi permettant d’induire une obésité chez la souris. a) Régime enrichi entraînant l’obésité: un modèle physiopathologique d’inflammation chronique. L’obésité se caractérise par un état inflammatoire à bas bruit et fréquemment associé à un certain nombre de pathologies ayant en commun cette composante inflammatoire. Il est proposé que cette inflammation ait pour origine le tissu adipeux où les adipocytes hypertrophiés, ainsi que les macrophages infiltrés, sécrètent un grand nombre de molécules inflammatoires dont les cytokines et plus particulièrement le TNFα et l’IL-6 (Bastard et al., 2000; Laimer et al., 2002). Cette inflammation périphérique a pu être reproduite chez le rongeur dans des modèles d’obésité induite par manipulations génétiques ou bien par l’utilisation de régimes enrichis en graisses saturées (Hotamisligil et al., 1993; Mohamed-Ali et al., 2001). Dans ces modèles animaux, l’obésité est également associée à une hyperactivation de l’axe HPA. De plus, la présence de glucocorticoïdes est indispensable à l’induction d’une obésité par un régime enrichi (Mantha et al., 1999). Chez l’homme, de nombreuses études font état d’une association entre obésité et hyperactivité de l’axe HPA (Duclos et al., 1999; Duclos et al., 2001; Pasquali et al., 1996; Rosmond and Bjorntorp, 1998). Dans un premier temps, nous avons choisi d’utiliser un régime enrichi pour induire l’obésité chez la souris afin de pouvoir mesurer l’impact réel de la prise alimentaire sur la prise de poids et l’inflammation qui en découle. Ce modèle représente une approche plus pertinente pour étudier l’obésité qui se développe chez l’homme. En effet, l’incidence de 85 l’obésité chez l’homme a atteint des proportions épidémiques ces dernières années du fait d’un changement général du style de vie et plus particulièrement d’une augmentation de la consommation d’aliments riches en graisses et en sucres (Drewnowski, 2007), tandis que les altérations génétiques ne représentent qu’un faible pourcentage de la population obèse (Gibson et al., 2004a). Dans notre étude, des souris C57bl/6J mâles ont été soumises à un régime enrichi précédemment décrit (Berraondo et al., 1997; Groubet et al., 2003). Ce régime déséquilibré et hypercalorique va nous permettre de nous placer dans une situation d’obésité modérée. Le groupe témoin a reçu un régime classiquement utilisé chez les rongeurs et nutritionnellement équilibré. Du fait de la forte prévalence de troubles de l’humeur et de la cognition chez les sujets obèses, il a été proposé que l’inflammation à bas bruit associée à l’obésité puisse jouer un rôle dans l’apparition de ces troubles. b) Démarche Démarche expérimentale Nous avons vérifié si la mise en place d’une obésité chez la souris s’accompagne d’un état inflammatoire responsable de l’activation de l’IDO, d’une activation de l’axe HPA, ainsi que d’altérations comportementales. Des souris C57bl/6J de 3 semaines ont été soumises à un régime hypercalorique pendant 26 semaines. Au terme de cette période, les souris présentent une masse corporelle de 35% supérieure à celle du groupe contrôle et sont donc considérées comme obèses. Les groupes contrôle et obèse ont ensuite été soumis à des tests comportementaux (FST, EPM et Y maze), suivis d’analyses de biochimie (dosage plasmatique d’hormones et de cytokines associées à l’obésité et mesure de l’activité enzymatique de l’IDO) et de biologie moléculaire (expression de l’ARNm de l’IDO et des cytokines). 2. Objectif 2 : Etude des conséquences d’une infection périphérique chez un modèle d’obésité DIO sur la réponse inflammatoire, l’activation de l’IDO et les troubles du comportement associés. Une augmentation de la susceptibilité aux infections a été décrite chez les sujets obèses (Mannino et al., 2006; Vachharajani et al., 2005) et des modèles d’obésité induite chez le 86 rongeur présentent également une réponse immunitaire perturbée (Plata-Salaman et al., 1998; Smith et al., 1987a). Pour induire une stimulation périphérique aiguë du SI chez la souris, nous avons choisi d’utiliser les LPS. a) Le LPS : un modèle d’activation aiguë du système immunitaire Le lipopolysaccharide ou LPS est une endotoxine, composant majeur du feuillet le plus externe de la paroi des bactéries à Gram négatif. Classiquement utilisé comme modèle expérimental d’inflammation périphérique, le LPS reproduit les effets d’une infection bactérienne en induisant une production massive mais transitoire de cytokines en périphérie, ainsi qu’au niveau central. En effet, l’injection de LPS par voie intrapéritonéale (i.p.) chez le rongeur entraîne une expression cérébrale précoce de cytokines inflammatoires (Gatti and Bartfai, 1993; Laye et al., 1994; van Dam et al., 1992). En plus de ces effets physiologiques, le LPS induit également des modifications comportementales transitoires et réversibles regroupées sous le terme de comportement de maladie comprenant entre autres la fièvre, des troubles du sommeil et de l’appétit, un repli sur soi et qui disparaissent en moins de 24 h chez le rongeur (pour revue Dantzer, 2006). Toutefois, les changements comportementaux observés à court terme et caractérisant le comportement de maladie peuvent être suivis du développement d’altérations comportementales plus durables et définies comme troubles comportementaux de type dépressif à l’aide de tests comportementaux de dépression fréquemment utilisés et validés pharmacologiquement à l’aide d’antidépresseurs classiques (Frenois et al., 2007; Yirmiya, 1996). De plus, l’induction de ces changements comportementaux de type dépressif par l’administration de LPS coïncide avec la stimulation de l’activité de l’IDO pulmonaire in vitro (Andre et al., 2008b; Hayaishi and Yoshida, 1978; Yoshida and Hayaishi, 1978) ainsi que son activité périphérique et centrale in vivo (Lestage et al., 2002). Le LPS induit la production de cytokines inflammatoires dans un grand nombre de types cellulaires et en particulier au sein des macrophages. La fixation du LPS sur le récepteur CD14, présent à la surface des cellules immunitaires, entraîne son interaction avec les toll-like récepteurs (TLRs) et plus particulièrement avec le TLR4 (Du et al., 1999). Dans notre étude réalisée chez la souris, la dose de LPS, issu de E.coli (sérotype 0127 :B8), choisie est de 830 µg/kg car il a été montré qu’elle permet de reproduire tous les symptômes du comportement de maladie, d’induire la mise en place de symptômes de type dépressif, ainsi que de stimuler l’activité pulmonaire et cérébrale de l’IDO (Frenois et al., 87 2007; Lestage et al., 2002; Mormede et al., 2004). Dans cette dernière étude réalisée au laboratoire, les auteurs ont montré que le LPS induisait une production plasmatique d’IFNγ maximale 6 h après l’injection i.p. de LPS, tandis que l’IDO cérébrale présentait un pic d’activité enzymatique 24 h après injection de LPS. b) Démarche expérimentale Après 26 semaines de régime hypercalorique, donc quand la prise de poids est devenue suffisament importante pour entraîner une obésité, les souris C57bl/6J sont soumises à une stimulation du système immunitaire par le LPS afin de déterminer si l’obésité et les altérations associées pouvaient perturber la réactivité du système nerveux central à une infection et favoriser ainsi le développement des troubles comportementaux de type dépressif. Suite à cette injection, les souris sont soumises à des tests comportementaux (FST et Y maze), suivis d’analyses de biochimie (dosage plasmatique d’hormones et de cytokines associées à l’obésité et mesure de l’activité enzymatique de l’IDO) et de biologie moléculaire (expression de l’ARNm de l’IDO et des cytokines). L’implication potentielle de l’IDO dans le développement des troubles observés dans de telles conditions a été tout particulièrement étudiée. 3. Objectif 3 : Etude des conséquences d’une obésité morbide sur l’activation de l’IDO et les troubles du comportement associés. a) Obésité Obésité d’origine génétique: une situation d’inflammation chronique exacerbée Dans le cas d’une obésité génétiquement induite, les animaux présentent les caractéristiques d’une obésité morbide. En effet, l’acquisition excessive de masse grasse s’accompagne de développement d’autres pathologies associées telles qu’une insulinorésistance, un diabète de type 2, une hypertension ou des problèmes cardio-vasculaires. L’ensemble de ces symptômes constituent le syndrome métabolique associé à une situation inflammatoire via entre autres la production de protéine C-réactive et d’IL-6. De plus, les 88 modèles d’obésité génétique tels que la souris ob/ob ou le rat Zucker présentent une hypercorticostéronémie (Castonguay et al., 1986; Naeser, 1973). Bien que l’obésité d’origine génétique ne représentent qu’une très faible proportion des causes de l’obésité humaine, ce modèle permet de se placer dans une situation d’obésité morbide qui est fréquemment rencontré chez l’homme mais qu’il est difficile d’obtenir chez l’animal avec des régimes hypercaloriques. En se plaçant dans ce contexte extrême, nous avons cherché à évaluer la réponse inflammatoire observée en conditions non stimulées, c'està-dire sans stimulation périphérique par un agent inflammatogène comme le LPS, et les troubles du comportement qui peuvent en découler. b) Démarche expérimentale Des souris db/db (C57bl/6J-leprdb/leprdb) de 5 semaines ont reçu pendant 3 semaines un régime équilibré (régime 5K52 fourni par Charles River). Au terme de cette période, les souris présentent une masse corporelle de 69% supérieure à celle du groupe contrôle et sont donc considérées comme obèses. Les groupes contrôle et obèse ont ensuite été soumis à des tests comportementaux (EPM et Open Field), suivis d’analyses de biochimie (dosage plasmatique d’hormones et de cytokines associées à l’obésité et mesure de l’activité enzymatique de l’IDO) et de biologie moléculaire (expression de l’ARNm de l’IDO et des cytokines). Afin d’évaluer la réponse inflammatoire dans cette situation inflammatoire extrême, une partie des animaux reçoit une injection de LPS afin d’induire une stimulation périphérique aigue du SI. Suite à cette injection, les souris sont soumises à des tests comportementaux (FST, Y maze ou EPM), suivis d’analyses de biochimie (dosage plasmatique d’hormones et de cytokines associées à l’obésité et mesure de l’activité enzymatique de l’IDO) et de biologie moléculaire (expression de l’ARNm de l’IDO et des cytokines). 89 90 Resultats 91 92 Chapitre 1 93 94 Chapitre 1 DIET-INDUCED OBESITY IN MICE EXACERBATES NEUROINFLAMMATION AND SICKNESS ELICITED BY SYSTEMIC INFECTION Caroline André, Anne Laure Dinel, Sophie Layé and Nathalie Castanon En cours de soumission 95 96 DietDiet-induced obesity in mice exacerbates neuroinflammation and sickness elicited by systemic infection Objectifs : Le but de cette étude était de vérifier si un état d’obésité induit par un régime enrichi pouvait moduler les réponses comportementales et neurobiologiques induites par l’administration de LPS. Matériel et méthodes : Des souris mâles C57bl/6J de 3 semaines ont été soumises soit au régime standard pour rongeur soit à un régime enrichi (lipides: 24%, glucides: 34%, protéines: 12%) pendant 26 semaines. Au terme de cette période, l’ensemble des souris a reçu une injection i.p. de LPS (0,83 mg/kg) ou de solution saline, puis une moitié de ces animaux a été sacrifiée 2 h posttraitement et l’hypothalamus a été rapidement prélevé. L’autre moitié des souris a été soumise à des tests de comportement (activité locomotrice, FST) 22 h et 24 h post-LPS respectivement puis sacrifiée tandis que le plasma, les poumons, le tissu adipeux et le cerveau ont été prélevés. Les concentrations en leptine, résistine, MCP-1, IL-6 et TNFα ont été mesurées dans le plasma et le tissu adipeux en multiplex selon la technologie Luminex. L’activité enzymatique de l’IDO pulmonaire a été évaluée par dosage du rapport KYN/Trp par HPLC. Enfin, l’expression cérébrale des ARNm de l’IL-6, du TNFα, de l’IFNγ, de SOCS-3 et de l’IDO a été mesurée par PCR en temps réel. Résultats : Les souris consommant le régime enrichi présentent une masse corporelle de 35 % supérieure à celle du groupe contrôle, associée à une augmentation significative des concentrations de leptine mesurées dans le plasma et le tissu adipeux. En conditions non stimulées, les taux circulants d’IL-6, de TNFα, de MCP-1, ainsi que la libération de corticostérone ne sont pas affectés chez les souris obèses, tandis que leur augmentation induite 24 h post-LPS est potentialisée par le régime enrichi. De plus, la consommation de régime enrichi exacerbe l’induction de l’activité enzymatique de l’IDO pulmonaire et cérébrale, ainsi que son expression cérébrale 24 h après l’administration de LPS. De même, l’induction de l’ARNm de l’IL-6, ainsi que de l’IDO exprimée dans l’hypothalamus 2 h post- 97 LPS est exacerbée chez les souris obèses. Enfin, alors que les animaux ne présentent aucun déficit locomoteur quelque soit le groupe, la durée d’immobilité mesurée dans le FST est diminuée chez les souris obèses après LPS. Conclusion : L’état d’obésité induit par le régime enrichi interfère avec la capacité du SI à répondre de façon appropriée à une stimulation aiguë du SI, en exacerbant les réponses neurobiologiques (plus particulièrement l’expression cérébrale et périphérique de l’IL-6 et l’IDO, ainsi que l’activation de l’axe HPA), ainsi que leurs conséquences sur la réactivité comportementale. 98 Diet-induced obesity in mice exacerbates neuroinflammation and sickness elicited by systemic infection Caroline André, Anne Laure Dinel, Sophie Layé and Nathalie Castanon1 Author Affiliation : INRA, UMR 1286 PsyNuGen, Université Victor Ségalen Bordeaux 2, CNRS, UMR 5226, IFR8, F-33076 Bordeaux, France CA and ALD contributed equally to the work. Corresponding Author: 1 Nathalie Castanon, Ph.D INRA, UMR 1286, Laboratory of Psychoneuroimmunology, Nutrition and Genetics, Université Victor Ségalen Bordeaux 2, Bâtiment UFR Pharmacie, Case courrier 34, 146 rue Léo Saignat, 33076 Bordeaux, France. E-mail : [email protected] Phone: 33 557 574 505 Fax: 33 557 571 227 Running Title: Obesity enhances neuroinflammation induced by LPS Nonstandard abbreviations used: FST, Forced swim test; HPA, hypothalamic-pituitaryadrenal axis; IDO, Indoleamine 2,3-dioxygenase; KYN, Kynurenine; MCP-1, monocytes chemotactic protein; TRP, Tryptophan. Abstract Severe obesity is associated with peripheral chronic low-grade inflammation and a high prevalence of mood disorders that might constitute aggravating risk factors for the development of other obesity-related comorbidities. Excessive production of proinflammatory cytokines by brain microglia during a systemic infection can promote a shift from reversible sickness responses to neurobehavioral complications including depression. Cytokine-induced over-activation of the microglial enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO) and glucocorticoid release might condition increased vulnerability to inflammation-induced 99 depression. The same cascade of events may explain the increased susceptibility of obese subjects to immune-mediated diseases. Our aim was to investigate in mice whether dietinduced obesity exacerbated neuroinflammation induced by a systemic lipopolysaccharide (LPS) challenge and the resultant neurobiological and behavioral sickness responses. Here we show that diet-induced obesity interfered with the ability of the innate immune system to appropriately respond to LPS by exacerbating the neuroinflammation, as manifested by amplified hypothalamic interleukin-6 production and IDO activation, and the intensity of the resultant corticosterone secretion and behavioral reactivity to an emotional challenge (forced swim test). These results provide the first evidence that obesity-associated over-reactivity of brain cytokines could play a pathophysiological role in the increased vulnerability to obesityrelated comorbid diseases that share systemic inflammation in their pathology. Introduction Over the past decade, obesity has continuously increased at alarming rates throughout the world, fostering the rise in obesity-related comorbidities, particularly cardiovascular and metabolic diseases (1). The high prevalence of altered emotional reactivity to adverse conditions that frequently evolves in neuropsychiatric disorders in severely obese subjects constitutes an aggravating risk factor for the development of these pathological complications (2, 3). Psycho-social factors are classically pointed out to explain the association between obesity and mood disorders, although with inconsistent reliability (4, 5). Recent evidence suggests however that functional links relying on biological systems shown to be impaired in both obesity and mood disorders may also exist (6-8). These biological intermediates may constitute new therapeutic targets to prevent development of mood disorders and their deleterious effects on other obesity-related comorbidities. In this context, inflammation has been proposed as a potential key element in the shared biology of obesity and mood disorders, particularly depression (8-10). Mounting evidence indicates that severe obesity is associated with a state of peripheral chronic low-grade inflammation characterized by increased plasma production of cytokines mainly originating from adipose tissue (11, 12) and with immune dysfunction (13, 14). Moreover, few rodent studies have suggested that signs of neuroinflammation may also exist (15, 16). During an infection, cytokines produced by activated innate immune system in the periphery act on the brain to induce the local production of brain cytokines by activated 100 microglia (17). These molecular signals in turn target neuronal substrates to organize the behavioral, neuroendocrine and metabolic components of the sickness response that aims to cope with infectious micro-organisms (18). Effective coping implies that this adaptive sickness response is strictly tailored to the stimulus and time-limited. However, when immune activation continues unabated, exacerbation of the sickness response can culminate in the development of pathological disorders including depressive symptoms (19, 20). This is particularly true when protracted inflammation occurs in the context of an increased vulnerability to the negative consequences of immune-mediated events, as observed in aging (21) or neurological diseases (22), and as recently suggested in obesity (9, 23). Hence, an increased susceptibility to autoimmune diseases and infection is often reported in obese subjects (24, 25). The intensity of cytokine-induced depressive symptoms is correlated to a drastic increase in the ratio of plasma kynurenine (KYN) to tryptophan (TRP) (26). The indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO), an enzyme that catabolizes the essential amino acid TRP along the KYN pathway, is potently induced by cytokines in activated monocytes, macrophages and brain microglia (27). Activation of this enzyme has been extensively studied by cellular immunologists for its role in mediating T-cell proliferation and local immunotolerance. However, an increase of IDO activity creates immune privilege that can be both beneficial and deleterious to the host (27). In degrading TRP, IDO reduces its bioavailability for the synthesis of serotonin (5-HT), a neurotransmitter that is well-known to be involved in mood regulation. Moreover, brain KYN can be further metabolized to generate neuroactive glutamatergic compounds and heightened glutamate receptor activity has been recently evidenced in major depression (28). Therefore, it has been proposed that enhanced IDO activation may participate in linking inflammation with mood disorders through its impact on brain serotoninergic and/or glutamatergic neurotransmission (19, 29). Impaired hypothalamicpituitary-adrenal (HPA) axis response to cytokine administration has also been shown to condition increased vulnerability to inflammation-induced depression (30-32). Interestingly, severe obesity is associated with increased activity of both the HPA axis (6) and peripheral IDO (33). It can therefore be hypothesized that in the context of obesity, altered reactivity of both neurobiological systems might be an important contributing factor to the pathophysiology of mood disorders that might result from exacerbated sickness response to immune activation. Mood disorders in turn might contribute to increase the vulnerability to 101 other obesity-related comorbidities, including cardiovascular and metabolic diseases, that becomes potentially manifest upon subsequent exposure to insults (2, 3). Conditions in which a deleterious increased inflammatory status that remains silent until it is challenged by a systemic infection have already been reported in animal models of aging or chronic neurodegenerative diseases. In these models, peripheral immune activation facilitates development of cognitive and mood alterations (21, 34) and progression of neurodegeneration respectively (22). This facilitation has been proposed to be based on an atypical more “reactive” state of brain microglia referred to as “primed” state (22). In vulnerable subjects exposed to systemic infection, “primed” microglia switch their silent phenotype to produce excessive cytokines and IDO (26, 35) that translate in altered neuroendocrine (HPA axis) and behavioral sickness responses (9, 30, 35). Similarly, obesity may constitute another situation in which a “primed” state of microglia, potentially revealed by a systemic inflammatory challenge, would condition vulnerability to comorbidities linked to chronic inflammation. In rodents, administration of the cytokine inducer lipopolysaccharide (LPS) is classically used to mimic the host response to infection (36). The purpose of this study was therefore to investigate in mice whether innate immune system activation by LPS administration, as well as the consequent neurobiological and behavioral sickness responses, was exacerbated in a model of diet-induced obesity. Our data indicate that diet-induced obesity indeed interfered with the ability of the innate immune system to appropriately respond to a systemic infection, despite the lack of visible signs of peripheral inflammation and related-comorbidities in unstimulated conditions. These findings support our hypothesis that microglia “priming” induced by obesity might mediate the higher prevalence of mood disorders and related comorbidities in this population. Results Sustained exposure to enriched diet induces obesity As expected, enriched diet induced a significant and sustained increase in body weight over the 26-week period, whereas body weight of mice fed with standard diet stabilized from the 16th week (diet: F1-92 = 17.9, P < 0.001, time: F4-92 = 356.9, P < 0.001, diet x time: F4-92 = 42.2, P < 0.001) (Fig. 1). 102 Body weight (g) 45 40 *** Lean Obese *** *** 35 30 25 20 15 10 0 2 8 16 21 26 Wk Figure 1 At last, mice on enriched diet gained 35 % more body weight than controls. Moreover, dietinduced obesity led to a marked increase in the proportion of adipose tissue compared to lean mice (data not shown) that was associated with a significant increase of leptin levels in both adipose tissue (F1-20 = 14.4, P < 0.001) and plasma (F1-15 = 40.3, P < 0.001) (Table 1). This result agrees with those showing that plasma release of leptin from adipose tissue is proportional to adipose tissue mass and correlated with body mass index (37). On the other hand, diet had no significant effect on insulin plasma levels that remained very low in both lean and obese mice (data not shown). Taken together, these results show that consumption of a highly caloric food, even though daily food intake did not significantly differ between both groups (data not shown), clearly induced the development of a marked obesity. Table I lean Plasma obese saline LPS saline LPS Leptin (ng/ml) 2.0 ± 0.4A 2.2 ± 1.0A 9.8 ± 2.4B 20.2 ± 2.2C Resistin (ng/ml) 2.8 ± 0.3A 1.8 ± 0.1A 3.3 ± 0.4A 10.9 ± 1.3B Corticosterone (ng/ml) 24.5 ± 3.0A 48.1 ± 10.8B 25.2 ± 2.7A 124.6 ± 12.3C MCP-1 (pg/ml) 29.1 ± 2.9A 226.0 ± 48.2B 29.7 ± 2.1A 551.3 ± 126.1B IL-6 (pg/ml) 62.9 ± 16.0A 275.4 ± 44.3B 29.6 ± 5.7A 3304.0 ± 996.6C 7.6 ± 0.4A 14.0 ± 2.1B TNFα (pg/ml) 7.3 ± 0.2A 9.0 ± 0.8B lean Adipose tissue obese saline LPS saline LPS Leptin (ng/ml) 1.3 ± 0.2 1.1 ± 0.2 2.4 ± 0.4 2.7 ± 0.4 Resistin (ng/ml) 4.1 ± 0.3 4.5 ± 0.4 4.0 ± 0.2 3.7 ± 0.2 MCP-1 (pg/ml) 26.2 ± 0.0A 185.5 ± 22.5B 29.1 ± 2.9A 243.2 ± 61.5B 103 Diet-induced obesity alters immune, neuroendocrine and neurochemical responses to LPS Severe obesity has been associated with increased susceptibility to infection (24) that can potentially facilitate development of inflammation-related comorbidities (21, 22). Therefore, we studied here the consequences of diet-induced obesity on immune, neuroendocrine and neurochemical responses to innate immune system activation by the cytokine inducer LPS. Although TNFα and IL-6 adipose tissue levels remained very low whatever the group (data not shown), LPS induced 24 h after treatment the expected significant increase of plasma levels of IL-6 (F1-13 = 10.7, P < 0.01) and TNFα (F1-18 = 4.7, P < 0.05) (Table I). LPS also increased both plasma (F1-17 = 22.2, P < 0.001) and adipose tissue (F1-19 = 12.2, P < 0.01) levels of the monocytes chemotactic protein (MCP-1) (Table I). As anticipated, such a peripheral immune activation by LPS resulted in a significant stimulation of some classical targets of cytokines, namely plasma corticosterone release (F1-19 = 55.5, P < 0.001) (Table I), lung IDO activity (F1-20 = 47.4, P < 0.001) (Fig. 2A), as well as brain IDO mRNA expression and activity (F1-18 = 6.8, P < 0.05 and F1-20 = 16.5, P < 0.001 respectively) (Fig. 2B-C). In unstimulated conditions, neither plasma cytokine and corticosterone levels, nor expression and activity of IDO, were markedly altered by diet-induced obesity, even if an overall main effect of diet was observed (P < 0.05) (Table I, Fig. 2). However, as revealed by the significant diet by LPS interactions reported below, diet-induced obesity clearly exacerbated LPS-induced increase in plasma concentrations of MCP-1 (F1-17 = 4.5, P < 0.05), IL-6 (F1-13 = 10.7 P < 0.01) and TNFα (F1-18 = 4.7, P < 0.05) (Table I), as well as the resultant stimulation of corticosterone release (F1-19 = 21.1, P < 0.001) (Table I), lung IDO activity (F120 = 4.0, P = 0.05), and brain IDO expression (F1-18 = 7.0, P < 0.05) and activity (F1-20 = 7.2, P < 0.05) (Fig. 2). Indeed, brain IDO mRNA expression was undetectable 24 h after treatment in both unstimulated lean and obese mice, whereas a huge induction of this expression was found in obese LPS-treated mice. Finally, the stimulating effect of LPS on circulating levels of leptin and resistin was restricted to obese mice (diet x treatment: F1-15 = 6.1, P < 0.05 and F1-17 = 37.2, P < 0.001 respectively) (Table I). 104 § Lung KYN/TRP A *** 0.12 0.10 Saline LPS 0.08 0.06 0.04 0.02 0 lean obese # 50 *** 0.02 0.01 0 lean IDO ∆mRNA Brain KYN/TRP B 0.03 C * 40 30 20 10 0 obese # nd nd lean nd obese Figure 2 Alterations of 5-HT system functioning induced by cytokines either directly or as a consequence of IDO activation could constitute an important biochemical connection between inflammation, obesity and related comorbidities, including depression (19). In order to determine if LPS-induced increase of brain cytokine expression and IDO activity in obese mice was associated with increased 5-HT turnover, levels of TRP, 5-HT, and their respective metabolites KYN and 5-HIAA were measured in lean and obese mice 24 h after injection of saline or LPS (Fig. 3). LPS treatment induced an increase of TRP concentrations in the brain of both lean and obese mice (F1-20= 6.9, P < 0.05), but brain levels of KYN were significantly higher in obese LPS-treated mice than in all other groups (treatment: F1-20= 43.3, P < 0.001; diet: F1-20= 8.9, P < 0.01; treatment x diet: F1-20= 9.9, P < 0.01) (Fig. 3A). In contrast, brain levels of 5-HT remained unchanged despite a significant increase of 5-HIAA concentrations by LPS (F1-20= 58.4, P < 0.001) (Fig. 3B). As determined by the 5-HIAA/5-HT ratio measurement, 5-HT turnover was significantly increased in both lean and obese mice 24 h after LPS (treatment: F1-20= 36.1, P < 0.001) (Fig. 3C). Moreover, it was also lightly affected by diet (F1-20= 6.4, P < 0.05) with no interaction between both factors. In summary, activation of the peripheral immune system by LPS increased 5-HT turnover in the same proportion in brains of both lean and obese mice despite the higher increase of brain IDO activation in this last group. On the contrary, this last effect translated in a sustained production of KYN in obese LPS-treated mice compared to their lean counterparts. 105 A 35 * ng/mg fo protein 30 25 Saline LPS 20 15 10 # 5 *** * 0 lean obese 35 Trp B *** *** 30 3,0 25 C § 2,5 5-HIAA/5-HT ng/mg of protein obese lean KYN 20 15 10 5 2,0 *** *** 1,5 1,0 0,5 0 0 lean obese 5-HT lean obese lean obese 5-HIAA Figure 3 Diet-induced obesity alters hypothalamic cytokine and IDO expression induced by LPS Diet-induced obesity was able to alter LPS-induced plasma release of cytokines, as well as both peripheral and brain consequences of this induction on corticosterone secretion and IDO activity. This last effect may be explained by an interference of diet-induced obesity with the induction of brain cytokines that occurs over the first hours following the peripheral LPS injection (38, 39). In order to test this possibility, cytokine and IDO mRNA expression was measured 2 h after LPS in the hypothalamus of both lean and obese mice. This structure is well known to play a major role in obesity by coordinating food intake and energy expenditure, particularly via leptin stimulation (40). In the context of inflammation, the hypothalamus also represents an important site of induction of brain cytokines that allows coordination of the neurobiochemical, neuroendocrine and behavioral responses to LPS (18). Two hours after treatment, LPS increased mRNA expression of TNFα (F1-19 = 123.9, P < 0.001) and IFNγ (F1-19 = 5.8, P < 0.05) in the same proportion in both lean and obese mice (Fig. 4A-B). On the contrary, the increase of IL-6 mRNA expression induced by LPS (F1-19 = 113.2, P < 0.001) was exacerbated in obese mice compared to lean controls, as revealed by the significant diet effect (F1-19 = 34.7, P < 0.001) and diet by treatment interaction (F1-19 = 37.3, P < 0.001) (Fig. 4C). Interestingly, obese mice also displayed exacerbation of LPS effect on IDO mRNA expression (treatment: F1-19 = 38.7, P < 0.001; diet: F1-19 = 5.7, P < 0.05, diet x treatment: F1-19 = 5.8, P < 0.05) 2 h after treatment (Fig. 4D), as it was still observed 24 h later (see Fig. 2C). Moreover, LPS-induced increase of SOCS-3 mRNA expression (F1-19 = 97.6, P 106 < 0.001), an indicator of cytokine signaling pathway activation and therefore a potential intermediate between brain cytokines and IDO (41), was also significantly amplified by dietinduced obesity (diet: F1-19 = 10.3, P < 0.01; diet x treatment: F1-19 = 10.5, P < 0.01) (Fig. 4E). Thus, diet-induced obesity selectively potentiated the LPS-induced increase of brain IL-6, SOCS-3 and IDO mRNA expression. This effect may therefore underlie the obesity-induced over-activation of IDO and HPA axis by LPS. A *** 250 30 IDO ∆mRNA TNFα α ∆ mRNA 35 25 20 15 10 *** Saline LPS 150 100 *** 50 0 lean 0 obese lean B 5 10 * 4 SOCS-3 ∆mRNA IFNγγ ∆mRNA # 200 5 3 2 1 0 lean obese obese E ## *** 8 6 *** 4 2 0 lean obese ### C 60 IL-6 ∆mRNA D *** 50 40 30 20 *** 10 0 lean obese Figure 4 Diet-induced obesity alters physiological and behavioral responses to LPS Proinflammatory cytokines which are transiently expressed within the brain by microglia in response to peripherally released cytokines trigger LPS-induced adaptive sickness responses that allow the organism to cope with the bacterial threat (18). Thus, obesity-induced exacerbation of innate immune system reactivity to LPS may impair the consequent physiological and behavioral sickness responses. In order to test this hypothesis, LPS effects on body weight and behavioral reactivity to an emotional challenge, the forced swim test (FST), were compared between lean and obese mice. As expected, LPS induced a progressive and sustained decrease in body weight (treatment: F1,40 = 121.27, P < 0.001, time: F2,40 = 74.36, P < 0.001, treatment x time: F2-40 = 66.5, P < 0.001) in both lean and obese mice compared to saline controls (Fig. 5). However, a significant attenuation of body weight loss 107 was observed in LPS-treated obese mice compared to their lean counterparts (diet x time x treatment: F2-40 = 9.2, P < 0.001). Body weight loss (%) 2 0 -2 § *** §§§ ** -4 ** *** -6 -8 *** §§§ Lean-Sal Lean-LPS -10 -12 Obese-Sal Obese-LPS *** Figure 5 Most of the rodent tests aiming at evaluating behavioral reactivity to an emotional challenge are based on changes in motor activity (42), whereas LPS-induced motor retardation is one of the main symptoms of sickness behavior (18). In order to assess the consequences of LPS treatment on emotional reactivity it is therefore necessary to clearly dissociate cytokine-induced emotional alterations from locomotor alterations. A solution to this dilemma is to measure behavioral changes induced by activation of the innate immune system only when sickness has dissipated, (20, 43). Shortly after LPS treatment, both lean and obese mice presented most of the classical visual indicators of sickness including piloerection, curl up body posture, listlessness, and a relative immobility (data not shown). However, by the time of the FST exposure, i.e. 23 h after treatment, all mice exhibited normal motor activity as assessed by the number of between-compartment crossings performed in the activity cage (Fig. 6A). The duration of immobility measured 1 h later in the FST was reduced by diet-induced obesity (F1-20 = 8.3, P < 0.01) and treatment (F1-20 = 10.9, P < 0.01) (Fig. 6B). Although the interaction between both factors did not reach statistical significance, it is noteworthy that the reduction of the duration of immobility was only significant in LPStreated obese mice (Saline-obese versus LPS-obese: P < 0.01). LPS also selectively increased time spent swimming in obese mice (diet: F1-20 = 16.5, P < 0.001; diet x treatment: F1-20 = 4.1, P = 0.05) (Fig. 6C), whereas its effect on the duration of climbing was similar in both lean and obese mice (treatment: F1-20 = 6.0, P < 0.05) (Fig. 6D). Thus, diet-induced obesity altered 108 the adaptive behavioral response to an emotional challenge normally exhibited by lean LPS- 60 A C 50 160 40 120 30 20 ## * 80 40 10 0 0 lean lean obese §§ B ** 250 50 D obese * 40 200 Climbing FST Immobility (s) Saline LPS Locomotor activity Swimming Total number of crossings/6min treated mice. 150 100 30 20 10 50 0 0 lean obese lean obese Figure 6 Discussion Understanding the pathophysiological mechanisms by which biological dysregulations associated with obesity, particularly low-grade inflammation, could contribute to the pathogenesis of its related comorbidities, particularly mood disorders, has wide ranging therapeutic implications. The present findings demonstrate that despite the lack of detectable illness symptoms in obese mice, diet-induced obesity interfered with the ability of the organism to appropriately respond to a systemic infection. More specifically, obesity provides a brain environment promoting an exacerbation of the neuroinflammation induced by a peripheral immune challenge, as manifested by an excessive brain cytokine production and activation of the microglial TRP-catabolizing enzyme IDO that translate in altered neuroendocrine (HPA axis) and behavioral sickness responses. Excessive activation of both IDO and HPA axis has already been related to the development of psychological disorders resulting from dysregulated innate immune system activation (19, 29, 44). In rodent models of aging or neurological diseases, a similar exaggerated neuroinflammatory and sickness response to innate immune challenge has been related to an atypical over-reactive or “primed” 109 state of brain microglia (22). Moreover, this amplified neuroinflammatory response is a precursor to important neurobehavioral complications (22, 35). Although the cellular source of exacerbated neuroinflammation was not directly identified in the present study, our results strongly suggest that obesity may constitute another situation in which a “primed” microglia may determine increased vulnerability to the negative consequences of immune-mediated events. As genetic alterations only account for a small fraction of obesity in humans (45), dietinduced obesity models constitute a more relevant approach for studying the relationship between obesity and inflammation than genetically obese animals. Moreover, they allow following up the progression of obesity and its related comorbidities, whereas the time frame is much more reduced in the case of genetic obesity models. In the present study, mice fed with enriched diet became obese, as evidenced by the huge body weight gain and adipose tissue hypertrophy, as well as the marked increase in plasma and adipose tissue levels of leptin (37). Nevertheless, mice did not display increased plasma cytokine production in unstimulated conditions, strongly suggesting therefore the lack of detectable low-grade basal inflammation by the time it was measured. This finding agrees with recently published data (24, 46), but it contrasts with what is usually reported in genetic obesity models or in high fat diet-induced obesity models (15, 47, 48). However, in both cases inflammation is associated with marked symptoms of obesity-related pathological complications, particularly diabetes or cardiovascular diseases that can per se induce an inflammation. Similarly, low-grade inflammation has been mainly reported in humans suffering from extremely severe forms of obesity (11). Our experimental conditions provide therefore the opportunity of detecting biological changes preceding the onset of the obesity-related comorbidities that have important deleterious consequences on health. These biological systems deserve to be thoroughly studied as promising predictive biomarkers and/or potential therapeutic targets. Despite the lack of visible signs of basal inflammation, diet-induced obesity resulted in exacerbated immune and neurobehavioral responses to LPS challenge, suggesting the development of molecular changes underlying an increased vulnerability to systemic infection. These findings are consistent with data obtained in genetic obesity models, although as mentioned before the infection acts, in these models, on a preexistent inflammatory background (23, 49, 50). Recent studies also report altered immune responses to bacterial (24) or influenza virus infection (51) in diet-induced obesity models. To our knowledge, this is however the first report detailing how dietary obesity can interfere with normal host response 110 to bacterial infection at both the peripheral and brain levels. Here we show that diet-induced obesity selectively exacerbated the increase of hypothalamic IL-6 mRNA expression induced by LPS, leaving unchanged TNFα and IFNγ expression. These results strongly strengthen the assumption that IL-6 might play a key role in obesity-related mood disorders (9) and cardiovascular comorbidities (52). Increased IL-6 production leads to the transcription of many genes, including those coding for the SOCS inhibitory proteins. Here we show that hypothalamic IL-6 and SOCS-3 mRNA expression was concomitantly increased 2 h after LPS and more importantly that this effect was amplified in obese LPS-treated mice. Since it has been shown that IL-6 is selectively involved in the LPS-induced increase of brain SOCS-3 expression (41), our results argue for a direct link between both activations in diet-induced obesity. Additionally, increased SOCS-3 mRNA expression could also result from the LPSinduced elevation of plasma leptin levels (53). Hypothalamic SOCS-3 expression has been proposed as a critical determinant of the leptin resistance classically observed in obesity (54). Moreover, leptin has been suspected to be involved in cytokine-induced anorexia and body weight loss (55). Although not directly tested here, development of leptin resistance in our obese mice, as evidenced by the efficiency of enriched diet in promoting obesity despite elevated levels of circulating leptin, could therefore explain the attenuation of LPS-induced body weight loss compared to lean mice. As shown for IL-6 and SOCS-3, the increase of lung and brain IDO expression and activity induced by LPS was amplified in obese mice compared to their lean counterparts, whereas no inter-group differences were observed in basal unstimulated conditions. Increase of basal serum KYN/TRP ratio in obesity has been recently reported in a clinical study, but only in morbidly obese patients already presenting therefore a marked peripheral inflammation (56). Although it is widely accepted that IFNγ is the main IDO inducer in response to LPS (57, 58), in vitro studies suggest the possibility of a synergistic induction of IDO by TNFα, IL-6 and IL-1β (59, 60). Since enhanced IDO and IL-6 responses to LPS coincide in obese LPS-treated mice, it can be reasonably hypothesized that IL-6 is involved in obesity-induced increased activation of IDO by LPS. In support to this hypothesis, we have recently shown in aged mice an association between protracted IL-6 production and IDO activation in response to LPS (21). Furthermore, high concentrations of glucocorticoids have also been reported in vitro to enhance cytokine-induced IDO activation (61). In the present study, the exacerbated production of corticosterone observed in obese LPS-treated mice may similarly participate in the over-activation of IDO. 111 By reducing local bioavailability of TRP, stimulation of IDO activity by cytokines can ultimately impact on the synthesis of brain 5-HT and therefore serotoninergic neurotransmission. Alternatively, TRP-neuroactive metabolites such as KYN that are generated as a result of IDO activation can affect glutamatergic neurotransmission. Through its potential impact on both brain systems playing a key role in the control of the physiological, behavioral and emotional reactivity to an external challenge, cytokine-induced IDO activation may participate in linking inflammation with related neuropsychiatric disorders (28). In the present study, obese mice exhibited higher LPS-induced increase of brain IDO activation and KYN production than lean mice, but the same stimulation of brain 5-HT turnover. Therefore, these data suggest that the physiological and behavioral responses to LPS treatment observed in obese mice together with the exacerbated brain IDO activation may preferentially be mediated by an increased production of the neuroactive metabolites of KYN. We acknowledge that more experiments are necessary to thoroughly test this assumption in the context of obesity, but it is already strengthened by recently published data (29). Converging evidence suggests that an amplified inflammatory response in the brain is associated with exacerbated and/or protracted sickness behavior (62, 63). In some situations such as aging, this exacerbation can promote development of more severe neurobehavioral complications (21, 34). Furthermore, we have recently reported that cytokine-induced IDO activation is important to mediate sustained behavioral alterations in response to innate immune system stimulation (20, 21, 29). In agreement with these findings, an exacerbated behavioral response to an emotional challenge (the FST exposure), was found in obese mice treated with LPS compared to lean LPS-treated mice. In light of previously published data (29, 43), it can appear somehow puzzling that in the present experimental conditions innate immune system activation tends to reduce immobility in the FST instead of increasing it. However, different reasons can explain such an apparent discrepancy. A first reason might be linked to the different strains of mice used (inbred C57BL/6 here versus outbred CD1 in the other studies), since strains represent a crucial factor to direct behavioral responses in most of the tests aiming at evaluating behavioral reactivity to an emotional challenge, including the FST (64). Secondly, although increased immobility is classically described as a “depressivelike” behavior in mice, reduced immobility may reflect an enhanced reactivity to the emotional stress caused by the test (42). The increased production of corticosterone reported in obese LPS-treated mice supports this assumption. It is also akin to the recent study showing 112 that stressed-C57BL/6 mice reduced their immobility in the FST compared to unstressed controls (65). Interestingly, it has been shown that repeated exposures to the FST after LPS in mice precipitate the shift from stress-like response (reduced immobility) toward depressivelike response (increased immobility) (66). Moreover, stress-induced brain elevation of cytokine expression has been recently reported to mediate chronic stress-induced depression in mice via adrenocortical activation and hippocampal neurogenesis suppression (32). The present results also fit with data reporting an association between exaggerated HPA axis response to the initial cytokine injection observed in patients undergoing cytokine immunotherapy and the delayed development of depressive symptomatology after repeated injections (30). Similar additive effects between repeated exposures of obese mice to cytokines and stress may then promote higher vulnerability to the deleterious consequences of exacerbated sickness response, particularly depressive-like symptoms (31, 67). Thirdly, it is still possible that longer exposure to diet-induced obesity or exposure to a more drastically enriched diet (68) would allow detecting “depressive-like” behavior in LPS-treated obese mice. Although more studies are necessary to discriminate the different hypotheses, all these data support the idea that obesity-induced dysregulation of the mechanisms that regulate sickness, particularly the IDO and HPA axis systems, might in turn promote increased vulnerability to the other obesity-related comorbid diseases that share systemic inflammation in their pathology. In summary, the present study indicates that diet-induced obesity interferes with the ability of the innate immune system to appropriately respond to systemic infection by exacerbating both the neuroinflammation, as manifested by amplified brain IL-6 production and microglial IDO activation, and the intensity of the resultant neuroendocrine and behavioral adaptive sickness responses. Moreover, although only correlative and with the limitation inherent to the measurement of neurobehavioral consequences of obesity in rodents, the present findings report alterations of both HPA axis and IDO activation that precede the actual onset of the severe pathological consequences of obesity on health. Therefore, these results may stimulate important considerations regarding the predictive and/or causative role of these biological systems in the increased vulnerability to immune-mediated diseases associated with obesity. Emerging data on aging and neurological diseases point to neuroinflammation, which results from microglia over-activation, as a promising new therapeutic target to improve recovery from sickness and reduce the frequency and/or 113 intensity of the associated neurological and behavioral complications. The present study suggests that similar therapeutic strategies might be very promising in the context of obesity. Methods Animals and treatment: All experimental procedures were carried out in accordance with institutional and international standards of care and use of laboratory animals. Male C57BL/6 mice 3-week old (Charles River Laboratories) were housed 4 per cage in a controlled environment (normal 12 h light/dark cycle; 22 ± 1°C), with food and water available ad libitum. Mice were either fed with a standard chow diet (A04, Safe; 3% Fat, 60 % Carbohydrate, 16% Protein; 330 Kcal/100 g) or an enriched diet (24% Fat, 34% Carbohydrate, 12% Protein; 440 Kcal/100 g) freshly prepared by mixing pâté, chips, chocolate, bacon and biscuits as previously described (69, 70). LPS from E.coli (serotype 0127:B8, Sigma) was dissolved in sterile endotoxin-free saline on the test day. The dose of 830 µg/kg i.p. was selected on the basis of its ability to induce the full spectrum of sickness response (43, 71) and a reliable increase of brain IDO activity (29, 72). Experimental procedures: Once diet-induced obesity was clearly established (26 weeks), all lean and obese mice were injected with saline or LPS and were immediately returned to their home cage. Half of the mice were killed 2 h later by CO2 asphyxiation and perfused with icecold PBS 1X to remove all traces of blood from tissues. The hypothalamus were immediately collected and stored at -80°C until essayed for determination of cytokine and IDO mRNA expression (57). Concurrently, body weight was monitored 3, 6 and 24 h after treatment in the remaining mice. Their locomotor activity and performances in the FST were respectively measured 22 and 23 h after treatment. They were killed 1 h later and blood was collected via cardiac puncture into EDTA-coated (10%) chilled tubes. After centrifugation (10 min, 3000 g, 4°C), plasma was stored at -80°C until assayed for concentrations of cytokines, adipokines and corticosterone. After perfusion with ice-cold PBS 1X, brains, lungs and adipose tissue were immediately collected and stored at -80°C. 114 Behavioral measures: As previously described (20, 43), behavioral experiments were performed under conditions of dim light and low noise. Behavior was scored by a trained observer blind to drug treatments, using the “Observer Basic” software (Noldus, Netherlands). Motor activity: The motor effect of LPS was assessed in a cage (30 x 11 x 12 cm) divided into 2 communicating compartments by counting the total number of betweencompartments crossings performed over the 6-min test. The cage was cleaned thoroughly between each session. Forced swim test: Mouse was placed individually in a cylinder (diameter: 16 cm; height: 31 cm) filled with 25°C water for a 6-min test. Duration of swimming, climbing and immobility was determined during the 5 last minutes of the test. Measurements of TRP, KYN, 5-HT and 5-HIAA: Concentrations of TRP, 5-HT, and their respective metabolites were measured as previously described (21, 73). Briefly, tissues were homogenized using ice cold potassium 0.14 M KCl, 20 mM phosphate buffer (pH 7.0) and centrifuged (14,000 g, 30 min at 4°C). Clarified homogenates were precipitated in 2 mM trichloro-acetic acid. Following centrifugation (13,000 g for 5 min at 4°C), supernatants were injected onto a 5-µm C18 HPLC column (Lichrospher, Alltech, Deerfield, IL, USA) at a flow rate of 1.0 ml/min with mobile phase containing 0.1 M ammonium acetate/acetic acid buffer and 5 % acetonitrile (pH 4.65). Levels of KYN were evaluated by UV absorbency at 360 nm, whereas TRP was detected by fluorescent detector at 285 nm excitation and 365 nm emission wavelengths. Concentrations of 5-HT and 5-HIAA were measured with a COULOCHEM II electrochemical detector. All concentrations were determined in samples by comparison of the retention time and peak areas with known standards. Measurements of hormones and cytokines: As previously described (20), leptin, insulin, resistin, MCP-1, TNFα and IL-6 were measured in plasma and adipose tissue by Luminex technology with the mouse serum adipokine LINCOplex kit (Linco Research, Inc., USA) following the manufacturer’s instructions. Plasma corticosterone levels were determined after ethanol extraction by a radiocompetitive protein binding assay using rhesus monkey serum as a source of transcortin, tritiated corticosterone as tracer and dextran-coated charcoal to absorb the unbound fraction of corticosterone (74). 115 Reverse transcription and real-time RT-PCR: Total RNA was isolated from hypothalamus using RNeasy Mini Kit (Qiagen) according to the manufacturer’s instructions and eluted in 30 µl RNase free water (75). Total RNA from whole brains was extracted into TRIzol (Sigma) and subjected to a DNase I digestion procedure (Ambion, France) (29). 1 or 2 µg of total RNA were then reverse transcribed with Moloney Murine Leukemia Virus reverse transcriptase (200 U/µl) using random primer (150 ng/µl) in a 40 µl reaction volume (5x First-Strand Buffer, 0,1 M deoxynucleotide triphosphate, 10 mM (each) dNTP mix and 40 U/µl Recombinant Ribonuclease Inhibitor) (Invitrogen). Resultant first-strand cDNA was amplified by the Taqman® Universal PCR Master Mix with sequence-specific primers and the FAM-labeled Taqman MBG probe assay mix (Applied Biosystems) as previously described (29, 57, 63). Results were normalized with the β2-microglobulin endogenous control and the relative quantitative evaluation of the amplification products was performed using the comparative threshold cycle method, as described elsewhere (Applied Biosystems user bulletin n°2). Statistical Analysis: Data were analyzed using an ANOVA analysis (diet x treatment) with repeated measurement on the time factor where appropriate, followed by a post-hoc pair wise multiple comparison procedure using the Student-Newman-Keuls method, if the interaction was significant. Acknowledgments This study was funded by INRA, CNRS, Région Aquitaine. ALD was supported by a doctoral fellowship from the Institut Danone. 116 References 1. Kim, S., and B.M. Popkin. 2006. Commentary: understanding the epidemiology of overweight and obesity--a real global public health concern. Int. J. Epidemiol. 35:60-67; discussion 81-62. 2. Fiedorowicz, J.G., N.M. Palagummi, V.L. Forman-Hoffman, D. Miller del, and W.G. Haynes. 2008. Elevated prevalence of obesity, metabolic syndrome, and cardiovascular risk factors in bipolar disorder. Ann. Clin. Psychiatry 20:131-137. 3. Scott, K.M., M.A. McGee, J.E. Wells, and M.A. Oakley Browne. 2008. Obesity and mental disorders in the adult general population. J. Psychosom. Res 64:97-105. 4. Baumeister, H., and M. Harter. 2007. Mental disorders in patients with obesity in comparison with healthy probands. Int. J. Obes. (Lond) 31:1155-1164. 5. Heo, M., A. Pietrobelli, K.R. Fontaine, J.A. Sirey, and M.S. Faith. 2006. Depressive mood and obesity in US adults: comparison and moderation by sex, age, and race. Int. J. Obes. (Lond) 30:513-519. 6. Bornstein, S.R., A. Schuppenies, M.L. Wong, and J. Licinio. 2006. Approaching the shared biology of obesity and depression: the stress axis as the locus of gene-environment interactions. Mol. Psychiatry 11:892-902. 7. Elenkov, I.J. 2008. Neurohormonal-cytokine interactions: implications for inflammation, common human diseases and well-being. Neurochem. Int. 52:40-51. 8. Emery, C.F., M.D. Fondow, C.M. Schneider, F.L. Christofi, C. Hunt, A.K. Busby, B.J. Needleman, W.S. Melvin, and H.M. Elsayed-Awad. 2007. Gastric bypass surgery is associated with reduced inflammation and less depression: a preliminary investigation. Obes. Surg. 17:759-763. 9. Capuron, L., S. Su, A.H. Miller, J.D. Bremner, J. Goldberg, G.J. Vogt, C. Maisano, L. Jones, N.V. Murrah, and V. Vaccarino. 2008. Depressive Symptoms and Metabolic Syndrome: Is Inflammation the Underlying Link? Biol. Psychiatry 10. Cottam, D.R., S.G. Mattar, E. Barinas-Mitchell, G. Eid, L. Kuller, D.E. Kelley, and P.R. Schauer. 2004. The chronic inflammatory hypothesis for the morbidity associated with morbid obesity: implications and effects of weight loss. Obes. Surg. 14:589-600. 11. Cancello, R., and K. Clement. 2006. Is obesity an inflammatory illness? Role of low-grade inflammation and macrophage infiltration in human white adipose tissue. Bjog 113:1141-1147. 12. Mora, S., and J.E. Pessin. 2002. An adipocentric view of signaling and intracellular trafficking. Diabetes Metab. Res. Rev. 18:345-356. 13. Mito, N., T. Hosoda, C. Kato, and K. Sato. 2000. Change of cytokine balance in diet-induced obese mice. Metabolism 49:1295-1300. 14. Pacifico, L., L. Di Renzo, C. Anania, J.F. Osborn, F. Ippoliti, E. Schiavo, and C. Chiesa. 2006. Increased T-helper interferon-gamma-secreting cells in obese children. Eur. J. Endocrinol. 154:691697. 15. De Souza, C.T., E.P. Araujo, S. Bordin, R. Ashimine, R.L. Zollner, A.C. Boschero, M.J. Saad, and L.A. Velloso. 2005. Consumption of a fat-rich diet activates a proinflammatory response and induces insulin resistance in the hypothalamus. Endocrinology 146:4192-4199. 16. Rizk, N.M., H.G. Joost, and J. Eckel. 2001. Increased hypothalamic expression of the p75 tumor necrosis factor receptor in New Zealand obese mice. Horm. Metab. Res. 33:520-524. 117 17. Nguyen, V.T., and E.N. Benveniste. 2002. Critical role of tumor necrosis factor-alpha and NF-kappa B in interferon-gamma -induced CD40 expression in microglia/macrophages. J. Biol. Chem. 277:1379613803. 18. Konsman, J.P., P. Parnet, and R. Dantzer. 2002. Cytokine-induced sickness behaviour: mechanisms and implications. Trends Neurosci. 25:154-159. 19. Dantzer, R., J.C. O'Connor, G.G. Freund, R.W. Johnson, and K.W. Kelley. 2008. From inflammation to sickness and depression: when the immune system subjugates the brain. Nat. Rev. Neurosci. 9:46-56. 20. Moreau, M., C. Andre, J.C. O'Connor, S.A. Dumich, J.A. Woods, K.W. Kelley, R. Dantzer, J. Lestage, and N. Castanon. 2008. Inoculation of Bacillus Calmette-Guerin to mice induces an acute episode of sickness behavior followed by chronic depressive-like behavior. Brain Behav. Immun. 22:1087-1095. 21. Godbout, J.P., M. Moreau, J. Lestage, J. Chen, N.L. Sparkman, O.C. J, N. Castanon, K.W. Kelley, R. Dantzer, and R.W. Johnson. 2008. Aging exacerbates depressive-like behavior in mice in response to activation of the peripheral innate immune system. Neuropsychopharmacology 33:2341-2351. 22. Perry, V.H., C. Cunningham, and C. Holmes. 2007. Systemic infections and inflammation affect chronic neurodegeneration. Nat. Rev. Immunol. 7:161-167. 23. O'Connor, J.C., A. Satpathy, M.E. Hartman, E.M. Horvath, K.W. Kelley, R. Dantzer, R.W. Johnson, and G.G. Freund. 2005. IL-1beta-mediated innate immunity is amplified in the db/db mouse model of type 2 diabetes. J. Immunol. 174:4991-4997. 24. Amar, S., Q. Zhou, Y. Shaik-Dasthagirisaheb, and S. Leeman. 2007. Diet-induced obesity in mice causes changes in immune responses and bone loss manifested by bacterial challenge. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 104:20466-20471. 25. Mannino, D.M., J. Mott, J.M. Ferdinands, C.A. Camargo, M. Friedman, H.M. Greves, and S.C. Redd. 2006. Boys with high body masses have an increased risk of developing asthma: findings from the National Longitudinal Survey of Youth (NLSY). Int. J. Obes. (Lond) 30:6-13. 26. Capuron, L., G. Neurauter, D.L. Musselman, D.H. Lawson, C.B. Nemeroff, D. Fuchs, and A.H. Miller. 2003. Interferon-alpha-induced changes in tryptophan metabolism. relationship to depression and paroxetine treatment. Biol. Psychiatry 54:906-914. 27. Mellor, A.L., and D.H. Munn. 2008. Creating immune privilege: active local suppression that benefits friends, but protects foes. Nat. Rev. Immunol. 8:74-80. 28. Muller, N., and M.J. Schwarz. 2007. The immune-mediated alteration of serotonin and glutamate: towards an integrated view of depression. Mol. Psychiatry 12:988-1000. 29. O'Connor, J.C., M.A. Lawson, C. Andre, M. Moreau, J. Lestage, N. Castanon, K.W. Kelley, and R. Dantzer. 2008. Lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior is mediated by indoleamine 2,3dioxygenase activation in mice. Mol. Psychiatry In press. 30. Capuron, L., C.L. Raison, D.L. Musselman, D.H. Lawson, C.B. Nemeroff, and A.H. Miller. 2003. Association of exaggerated HPA axis response to the initial injection of interferon-alpha with development of depression during interferon-alpha therapy. Am. J. Psychiatry 160:1342-1345. 31. Miura, H., N. Ozaki, M. Sawada, K. Isobe, T. Ohta, and T. Nagatsu. 2008. A link between stress and depression: shifts in the balance between the kynurenine and serotonin pathways of tryptophan metabolism and the etiology and pathophysiology of depression. Stress 11:198-209. 118 32. Goshen, I., T. Kreisel, O. Ben-Menachem-Zidon, T. Licht, J. Weidenfeld, T. Ben-Hur, and R. Yirmiya. 2008. Brain interleukin-1 mediates chronic stress-induced depression in mice via adrenocortical activation and hippocampal neurogenesis suppression. Mol. Psychiatry 13:717-728. 33. Brandacher, G., E. Hoeller, D. Fuchs, and H.G. Weiss. 2007. Chronic immune activation underlies morbid obesity: is IDO a key player? Curr. Drug Metab. 8:289-295. 34. Chen, J., J.B. Buchanan, N.L. Sparkman, J.P. Godbout, G.G. Freund, and R.W. Johnson. 2008. Neuroinflammation and disruption in working memory in aged mice after acute stimulation of the peripheral innate immune system. Brain Behav. Immun. 22:301-311. 35. Henry, C.J., Y. Huang, A. Wynne, M. Hanke, J. Himler, M.T. Bailey, J.F. Sheridan, and J.P. Godbout. 2008. Minocycline attenuates lipopolysaccharide (LPS)-induced neuroinflammation, sickness behavior, and anhedonia. J. Neuroinflammation 5:15. 36. Dantzer, R. 2001. Cytokine-induced sickness behavior: mechanisms and implications. Ann. N. Y. Acad. Sci. 933:222-234. 37. Calabro, P., and E.T. Yeh. 2007. Obesity, inflammation, and vascular disease: the role of the adipose tissue as an endocrine organ. Subcell. Biochem. 42:63-91. 38. Castanon, N., C. Medina, C. Mormede, and R. Dantzer. 2004. Chronic administration of tianeptine balances lipopolysaccharide-induced expression of cytokines in the spleen and hypothalamus of rats. Psychoneuroendocrinology 29:778-790. 39. Laye, S., P. Parnet, E. Goujon, and R. Dantzer. 1994. Peripheral administration of lipopolysaccharide induces the expression of cytokine transcripts in the brain and pituitary of mice. Brain Res. Mol. Brain Res. 27:157-162. 40. Friedman, J.M. 2002. The function of leptin in nutrition, weight, and physiology. Nutr. Rev. 60:S1-14; discussion S68-84, 85-17. 41. Lebel, E., L. Vallieres, and S. Rivest. 2000. Selective involvement of interleukin-6 in the transcriptional activation of the suppressor of cytokine signaling-3 in the brain during systemic immune challenges. Endocrinology 141:3749-3763. 42. Cryan, J.F., and C. Mombereau. 2004. In search of a depressed mouse: utility of models for studying depression-related behavior in genetically modified mice. Mol. Psychiatry 9:326-357. 43. Frenois, F., M. Moreau, J. O'Connor, M. Lawson, C. Micon, J. Lestage, K.W. Kelley, R. Dantzer, and N. Castanon. 2007. Lipopolysaccharide induces delayed FosB/DeltaFosB immunostaining within the mouse extended amygdala, hippocampus and hypothalamus, that parallel the expression of depressivelike behavior. Psychoneuroendocrinology 32:516-531. 44. Vedder, H., W. Schreiber, A. Schuld, M. Kainz, C.J. Lauer, J.C. Krieg, F. Holsboer, and T. Pollmacher. 2007. Immune-endocrine host response to endotoxin in major depression. J. Psychiatr. Res 41:280-289. 45. Gibson, W.T., I.S. Farooqi, M. Moreau, A.M. DePaoli, E. Lawrence, S. O'Rahilly, and R.A. Trussell. 2004. Congenital leptin deficiency due to homozygosity for the Delta133G mutation: report of another case and evaluation of response to four years of leptin therapy. J. Clin. Endocrinol. Metab. 89:48214826. 119 46. Bedoui, S., E. Velkoska, S. Bozinovski, J.E. Jones, G.P. Anderson, and M.J. Morris. 2005. Unaltered TNF-alpha production by macrophages and monocytes in diet-induced obesity in the rat. J. Inflamm. (Lond) 2:2. 47. Xu, H., G.T. Barnes, Q. Yang, G. Tan, D. Yang, C.J. Chou, J. Sole, A. Nichols, J.S. Ross, L.A. Tartaglia, and H. Chen. 2003. Chronic inflammation in fat plays a crucial role in the development of obesity-related insulin resistance. J. Clin. Invest. 112:1821-1830. 48. Chen, A., S. Mumick, C. Zhang, J. Lamb, H. Dai, D. Weingarth, J. Mudgett, H. Chen, D.J. MacNeil, M.L. Reitman, and S. Qian. 2005. Diet induction of monocyte chemoattractant protein-1 and its impact on obesity. Obes. Res. 13:1311-1320. 49. O'Connor, J.C., C.L. Sherry, C.B. Guest, and G.G. Freund. 2007. Type 2 diabetes impairs insulin receptor substrate-2-mediated phosphatidylinositol 3-kinase activity in primary macrophages to induce a state of cytokine resistance to IL-4 in association with overexpression of suppressor of cytokine signaling-3. J. Immunol. 178:6886-6893. 50. Mancuso, P., A. Gottschalk, S.M. Phare, M. Peters-Golden, N.W. Lukacs, and G.B. Huffnagle. 2002. Leptin-deficient mice exhibit impaired host defense in Gram-negative pneumonia. J. Immunol. 168:4018-4024. 51. Smith, A.G., P.A. Sheridan, J.B. Harp, and M.A. Beck. 2007. Diet-induced obese mice have increased mortality and altered immune responses when infected with influenza virus. J. Nutr. 137:1236-1243. 52. Yudkin, J.S., M. Kumari, S.E. Humphries, and V. Mohamed-Ali. 2000. Inflammation, obesity, stress and coronary heart disease: is interleukin-6 the link? Atherosclerosis 148:209-214. 53. Howard, J.K., B.J. Cave, L.J. Oksanen, I. Tzameli, C. Bjorbaek, and J.S. Flier. 2004. Enhanced leptin sensitivity and attenuation of diet-induced obesity in mice with haploinsufficiency of Socs3. Nat. Med. 10:734-738. 54. Howard, J.K., and J.S. Flier. 2006. Attenuation of leptin and insulin signaling by SOCS proteins. Trends Endocrinol. Metab. 17:365-371. 55. Luheshi, G.N., J.D. Gardner, D.A. Rushforth, A.S. Loudon, and N.J. Rothwell. 1999. Leptin actions on food intake and body temperature are mediated by IL-1. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 96:7047-7052. 56. Brandacher, G., C. Winkler, F. Aigner, H. Schwelberger, K. Schroecksnadel, R. Margreiter, D. Fuchs, and H.G. Weiss. 2006. Bariatric surgery cannot prevent tryptophan depletion due to chronic immune activation in morbidly obese patients. Obes. Surg. 16:541-548. 57. Andre, C., J.C. O'Connor, K.W. Kelley, J. Lestage, R. Dantzer, and N. Castanon. 2008. Spatio-temporal differences in the profile of murine brain expression of proinflammatory cytokines and indoleamine 2,3-dioxygenase in response to peripheral lipopolysaccharide administration. J Neuroimmunol. 200:9099. 58. Sotero-Esteva, W.D., D. Wolfe, M. Ferris, and M.W. Taylor. 2000. An indoleamine 2,3-dioxygenasenegative mutant is defective in stat1 DNA binding: differential response to IFN-gamma and IFN-alpha. J. Interferon Cytokine Res. 20:623-632. 59. Robinson, C.M., P.T. Hale, and J.M. Carlin. 2006. NF-kappa B activation contributes to indoleamine dioxygenase transcriptional synergy induced by IFN-gamma and tumor necrosis factor-alpha. Cytokine 35:53-61. 120 60. Fujigaki, H., K. Saito, S. Fujigaki, M. Takemura, K. Sudo, H. Ishiguro, and M. Seishima. 2006. The signal transducer and activator of transcription 1alpha and interferon regulatory factor 1 are not essential for the induction of indoleamine 2,3-dioxygenase by lipopolysaccharide: involvement of p38 mitogen-activated protein kinase and nuclear factor-kappaB pathways, and synergistic effect of several proinflammatory cytokines. J. Biochem. 139:655-662. 61. Turck, J., C. Oberdorfer, T. Vogel, C.R. Mackenzie, and W. Daubener. 2005. Enhancement of antimicrobial effects by glucocorticoids. Med. Microbiol. Immunol. 194:47-53. 62. Combrinck, M.I., V.H. Perry, and C. Cunningham. 2002. Peripheral infection evokes exaggerated sickness behaviour in pre-clinical murine prion disease. Neuroscience 112:7-11. 63. Godbout, J.P., J. Chen, J. Abraham, A.F. Richwine, B.M. Berg, K.W. Kelley, and R.W. Johnson. 2005. Exaggerated neuroinflammation and sickness behavior in aged mice following activation of the peripheral innate immune system. Faseb J 19:1329-1331. 64. Lucki, I., A. Dalvi, and A.J. Mayorga. 2001. Sensitivity to the effects of pharmacologically selective antidepressants in different strains of mice. Psychopharmacology (Berl) 155:315-322. 65. Thoeringer, C.K., I. Sillaber, A. Roedel, A. Erhardt, M.B. Mueller, F. Ohl, F. Holsboer, and M.E. Keck. 2007. The temporal dynamics of intrahippocampal corticosterone in response to stress-related stimuli with different emotional and physical load: an in vivo microdialysis study in C57BL/6 and DBA/2 inbred mice. Psychoneuroendocrinology 32:746-757. 66. Renault, J., and A. Aubert. 2006. Immunity and emotions: lipopolysaccharide increases defensive behaviours and potentiates despair in mice. Brain Behav. Immun. 20:517-526. 67. Simmons, D.A., and P.A. Broderick. 2005. Cytokines, stressors, and clinical depression: augmented adaptation responses underlie depression pathogenesis. Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry 29:793-807. 68. Lavin, D., Sherry, C., O’Connor, J., Dantzer, R., Freund, G. . 2008. Diet-induced obesity causes depressive-like behavior in mice. Brain Behav. Immun. 22:19 (Abstr.). 69. Berraondo, B., A. Bonafonte, M.P. Fernandez-Otero, and J.A. Martinez. 1997. Effects on energy utilization of a beta3-adrenergic agonist in rats fed on a cafeteria diet. Eat Weight Disord. 2:130-137. 70. Berraondo, B., A. Marti, J.S. Duncan, P. Trayhurn, and J.A. Martinez. 2000. Up-regulation of muscle UCP2 gene expression by a new beta3-adrenoceptor agonist, trecadrine, in obese (cafeteria) rodents, but down-regulation in lean animals. Int. J. Obes. Relat. Metab. Disord. 24:156-163. 71. Mormede, C., K. Palin, K.W. Kelley, N. Castanon, and R. Dantzer. 2004. Conditioned taste aversion with lipopolysaccharide and peptidoglycan does not activate cytokine gene expression in the spleen and hypothalamus of mice. Brain Behav. Immun. 18:186-200. 72. Lestage, J., D. Verrier, K. Palin, and R. Dantzer. 2002. The enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase is induced in the mouse brain in response to peripheral administration of lipopolysaccharide and superantigen. Brain Behav. Immun. 16:596-601. 73. Moreau, M., J. Lestage, D. Verrier, C. Mormede, K.W. Kelley, R. Dantzer, and N. Castanon. 2005. Bacille Calmette-Guerin inoculation induces chronic activation of peripheral and brain indoleamine 2,3dioxygenase in mice. J. Infect. Dis. 192:537-544. 121 74. Mormede, P., V. Lemaire, N. Castanon, J. Dulluc, M. Laval, and M. Le Moal. 1990. Multiple neuroendocrine responses to chronic social stress: interaction between individual characteristics and situational factors. Physiol. Behav. 47:1099-1105. 75. Mingam, R., V. De Smedt, T. Amedee, R.M. Bluthe, K.W. Kelley, R. Dantzer, and S. Laye. 2008. In vitro and in vivo evidence for a role of the P2X7 receptor in the release of IL-1 beta in the murine brain. Brain Behav. Immun. 22:234-244. Figure Legends Figure 1. Long term exposure to enriched diet exacerbates body weight gain. At their arrival, mice were randomly allocated to standard or enriched diet conditions. They were either fed with a standard chow diet or a high caloric diet freshly prepared by mixing pâté, chips, chocolate, bacon and biscuits. Food and water were available ad libitum. Body weight was measured twice a week over the 26-week period of diet exposure. As expected, enriched diet induced a significant and sustained increase in body weight. At last, mice on enriched diet gained 35 % more body weight than controls. Data are represented as means ± SEM (n=12). ***P < 0.001, obese versus lean mice. Figure 2. Diet-induced obesity potentiates peripheral and brain IDO activation following a systemic injection of LPS. Once obesity was clearly established (26 weeks), mice were randomly allocated to LPS or saline experimental groups receiving respectively an injection of LPS (830 µg/kg, i.p.) or saline. Mice were immediately returned to their home cage after treatment and they were sacrificed 24 h later. Kynurenine (KYN) and tryptophan (TRP) concentrations were determined by HPLC in both lungs (A) and brains (B) and the KYN/TRP ratio was calculated to assess IDO activity. Concomitantly, brain steady-state expression of IDO mRNA transcripts was measured by RT-PCR (C). Basal expression and activity of IDO was similar in all groups, but the effect of LPS was exacerbated in obese mice. Data represent means ± SEM (n=6). Bars indicate statistical differences among groups. ***P < 0.001, LPS versus saline-treated mice; §P < 0.05, obese versus lean mice; #P < 0.05, diet x treatment interaction; nd: not detectable. Figure 3. Serotonin (5-HT) turnover increases in the brain of lean and obese mice in response to peripheral LPS injection. By the end of the 26 weeks of standard or enriched diet exposure, mice were randomly allocated to LPS (830 µg/kg, i.p.) or saline experimental groups. Twenty-four hours after treatment, mice were sacrificed, perfused with ice-cold phosphate-buffered saline and the brains were immediately collected. (A) Concentrations of kynurenine (KYN), tryptophan (TRP), as well as (B) 5-HT and its metabolite 5-hydroxyindoleacetic acid (5-HIAA), were determined by HPLC from clarified brain homogenates. LPS treatment increased brain levels of 5-HIAA, KYN and TRP in all 122 groups. Elevation of brain concentrations of KYN by LPS were significantly higher in obese than in lean mice, as expected from their exacerbated brain IDO activation. (C) Turnover rate of brain 5-HT, as measured by the ratio of 5-HIAA to 5-HT, was similarly increased by LPS treatment in both lean and obese mice. Data represent means ± SEM (n=6). Bars indicate statistical differences among groups. *P < 0.05, ***P < 0.001, LPS versus saline-treated mice; #P < 0.05, ##P < 0.01, ### P <0.001, diet x treatment interaction. Figure 4. Diet-induced obesity potentiates neuroinflammation following a systemic injection of LPS. By the end of the 26 weeks of standard or enriched diet exposure, mice were randomly allocated to LPS (830 µg/kg, i.p.) or saline experimental groups. They were sacrificed 2 h after treatment, perfused with ice-cold phosphate-buffered saline and the hypothalamus were immediately collected. Steady-state expression of hypothalamic mRNA transcripts was measured by RT-PCR for (A) TNFα, (B) IFNγ, (C) IL-6, (D) IDO and (E) SOCS-3. Basal levels of expression were low and similar in both lean and obese mice. Peripheral LPS administration enhanced expression of proinflammatory cytokines and IDO in all LPS-treated mice, but this effect was significantly amplified by obesity for IL-6, SOCS-3 and IDO. Data represent means ± SEM (n=6). Bars indicate statistical differences among groups. *P < 0.05, ***P < 0.001, LPS versus saline-treated mice; #P < 0.05, ##P < 0.01, ### P <0.001, diet x treatment interaction. Figure 5. Body weight loss induced by a peripheral LPS injection was attenuated in obese mice. In order to assess one of the classical symptoms of the sickness response to LPS resulting from the peripheral and brain cytokine production induced by this treatment, changes in body weight were measured 3, 6 and 24 h after LPS administration (830 µg/kg, i.p.). As expected, LPS-treated mice exhibited a significant and sustained body weight loss compared to their respective pre-treatment body weight. However, this effect was attenuated in obese mice. Data represent means ± SEM (n=6). **P <0.01, ***P <0.001, LPS versus saline-treated mice; §P <0.05, §§§P <0.001, obese versus lean mice. Figure 6. Behavioral changes induced by a systemic injection of LPS are impaired in obese mice. Once obesity was clearly established (26 weeks), mice were randomly allocated to LPS or saline experimental groups receiving respectively an injection of LPS (830 µg/kg, i.p.) or saline. (A) In order to verify that mice had fully recovered from the short-term LPS-induced motor retardation, they were first tested in the activity cage 22 h after treatment and their locomotor activity was assessed by counting the number of between compartment crossings. By that time, neither LPS treatment nor obesity affected their locomotor performances. One h later, mice were therefore exposed to a FST for a 6-min test and the time spent immobile (B), swimming (C) or climbing (D) was recorded in the different groups. The slight decreased duration of immobility induced by LPS in lean mice was 123 exacerbated in obese mice, concomitantly with an increase in their duration of swimming. In contrast, LPS induced a similar increase of the duration of climbing in both lean and obese mice. Data represent means ± SEM (n=6). Bars indicate statistical differences among groups. §§P <0.01 obese versus lean mice and **P <0.01 LPS versus saline-treated mice. Table I. Diet-induced obesity impaired plasma and adipose tissue adipokines and corticosterone levels measured 24 h after LPS (830 µg/kg, i.p.) or saline injection. Assays were performed with a mouse adipokines LINCOplex kit following the manufacturer’s instructions. Values represent means ± SEM (n=6). Data labelled with different letters (A, B or C) are significantly different from each other (P < 0.05). 124 Chapitre 2 125 126 Chapitre 2 DIET-INDUCED OBESITY IMPAIRS IN MICE SPATIAL MEMORY AND EXACERBATES NEUROINFLAMMATION INDUCED BY SYSTEMIC INFECTION Anne Laure Dinel, Caroline André, Sophie Layé and Nathalie Castanon En cours de soumission 127 128 DietDiet-induced obesity impairs in mice spatial memory and exacerbates neuroinflammation induced by systemic infection Objectifs : Le but de cette étude était de vérifier si un état d’obésité induit par un régime enrichi pouvait entrainer le développement de troubles cognitifs. Matériel et méthodes : Des souris mâles C57bl/6J de 3 semaines ont été soumises soit au régime standard pour rongeur soit à un régime enrichi (lipides: 24%, glucides: 34%, protéines: 12%) pendant 19 semaines. Au bout de 9 semaines de régime, les animaux consommant le régime hypercalorique sont en surpoids et sont alors soumis à un test de cognition dans un labyrinthe en Y. Au terme de la période de 19 semaines, l’ensemble des souris a reçu une injection i.p. de LPS (0,83 mg/kg) ou de solution saline puis a été soumis de nouveau à un test de cognition (Y maze) 24 h post-LPS. Les animauux ont été sacrifiés 1h après le test et le plasma, les poumons, le tissu adipeux et le cerveau ont été prélevés. Les concentrations en IL-6, IFNγ, TNFα et ACTH ont été mesurées dans le plasma et le tissu adipeux en multiplex selon la technologie Luminex. La concentration de corticostérone plasmatique a été évaluée avec un kit RIA. L’activité enzymatique de l’IDO pulmonaire a été évaluée par dosage du rapport KYN/Trp par HPLC. Enfin, l’expression cérébrale des ARNm de l’IL-6, du TNFα, de l’IFNγ, et de l’IDO a été mesurée par PCR en temps réel. Résultats : Les souris en surpoids présentent une altéation de leur capacité dans le test de mémoire spatial comparativement aux souris minces. Cette altération des capacités cognitives est maintenue lorsque les souris sont obèses (masse corporelle de 20% supérieure à celle du groupe contrôle). De plus, l’injection de LPS entraîne l’apparition de troubles chez les animaux minces et aggravent les troubles préexistants chez les souris obèses. Confirmant notré étude précédente, en conditions non stimulées, les taux circulants d’IL-6, de TNFα, de MCP-1, ainsi que la libération de corticostérone ne sont pas affectés chez les souris obèses, tandis que leur augmentation induite 24 h post-LPS est potentialisée par le régime enrichi. De plus, la consommation de régime enrichi exacerbe l’induction de l’activité enzymatique de l’IDO pulmonaire et cérébrale, ainsi que son expression cérébrale 24 h après 129 l’administration de LPS. L’induction de l’ARNm de l’IFNγ et du TNFα, ainsi que de l’IDO exprimée dans l’hippocampe 2 h post-LPS est exacerbée chez les souris obèses mais pas celle d’IL-6. Conclusion : La prise de poids entraîne l’apparition précoce de troubles de la cognition qui se maintiennent au cours de l’obésité mais ces altérations ne sont pas associées à la mise en évidence d’un état inflammatoire en basal. Par contre, l’état d’obésité induit par le régime enrichi interfère avec la capacité du SI à répondre de façon appropriée à une stimulation aiguë du SI, en exacerbant les réponses neurobiologiques ainsi que leurs conséquences sur les capacités cognitives. 130 Diet-induced obesity impairs in mice spatial memory and exacerbates neuroinflammation induced by systemic infection Anne-Laure Dinel, Caroline André, Sophie Layé and Nathalie Castanon* INRA, UMR 1286 PsyNuGen, Université Victor Segalen Bordeaux 2, CNRS, UMR 5226, IFR8, F33076 Bordeaux, France *Adress all correspondence to: Nathalie Castanon, Ph.D INRA, UMR 1286, Laboratory of Psychoneuroimmunology, Nutrition and genetics, Bâtiment UFR Pharmacie, Case courrier 34, Université Victor Ségalen Bordeaux 2, 146 rue Léo Saignat, 33076 Bordeaux, France e-mail : [email protected] Phone: 33 557 574 505 Fax : 33 557 571 227 Abstract Rationale: Severe obesity is associated with a peripheral low-grade inflammation. Moreover, an inverse linear relationship has been reported between weight excess and cognitive abilities in an adulthood healthy population. Recent evidence suggests however that functional links relying on biological systems shown to be impaired in both obesity and cognitive disorders may exist and inflammation has been proposed as a potential key element. Cytokine-induced over-activation of the microglial enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO) and glucocorticoid release might condition development of cognitive disorders. The same cascade of events may explain the increased susceptibility of obese subjects to develop cognitive deficit. Objectives: Our aim was to investigate the relationship between inflammation and development of cognitive alterations related with increased body weight in a murine model of diet induced obesity and to measure the potential exacerbation of obesity-related cognitive 131 dysfunctions by a systemic inflammatory challenge elicited by peripheral administration of the cytokine inducer lipopolysaccharide (LPS). Findings: Here we show that cognitive deficits existed in both overweighed and obese mice and are exacerbated by LPS-induced innate immune system stimulation. Moreover, such an exacerbation was paralleled by increased activation of different inflammatory markers including brain proinflammatory cytokines and IDO enzymatic activity in obese subjects. Conclusion: This study provides therefore important clues about the neurobiological basis through which cytokines may have an impact on cognitive behaviors in the context of obesity. Introduction Over the last decade, prevalence of obesity has continuously increased to become an important public health problem, often associated with severe comorbidities, particularly cardiovascular and metabolic diseases. Moreover, an inverse linear relationship has been reported between weight excess and cognitive abilities in an adulthood healthy population. Increase in body mass index appears therefore to be associated with progressive development of cognitive disorders (Cournot et al., 2006), although the time course of such a development, as well as their underlying mechanisms are still mainly poorly understood. Recent evidence suggests however that functional links relying on biological systems shown to be impaired in both obesity and cognitive disorders may exist. These biological intermediates may constitute the neurobiological basis of the cognitive deficit associated with obesity. In this context, inflammation has been proposed as a potential key element in the shared biology of obesity and cognitive disorders. Indeed, severe obesity is associated with peripheral chronic lowgrade inflammation characterized by an increase in plasma production of cytokines mainly originating from adipose tissue and with immune dysfunction (Clement et al., 2004; Wadden et al., 2006). Moreover few rodent studies have suggested that neuroinflammation may also exist (De Souza et al., 2005). It is well known that proinflammatory cytokines that are released during a systemic inflammation can induce brain-mediated behavioral responses known collectively as sickness behavior (Dantzer et al., 2008; Konsman et al., 2002). This adaptive sickness response is strictly tailored to the stimulus and time-limited. However, exacerbation of the sickness response resulting from an amplified or unregulated inflammatory cytokine response can culminate in the development of pathological disorders including cognitive dysfunction (Heyser et al., 1997; Vallieres et al., 2002). This is particularly true when protracted 132 inflammation occurs in the context of an increased vulnerability to the negative consequences of immune-mediated events, as observed in aging (Barrientos et al., 2006; Chen et al., 2008), neurological diseases (Cunningham et al., 2008; Perry et al., 2007) or in patients undergoing cytokine immunotherapy for the treatment of viral diseases or certain cancers (Capuron et al., 2001; Raison et al., 2005). Interestingly, development of cognitive deficits in these patients is associated with a drastic drop of circulating levels of tryptophan, the essential amino acid acting as limiting factor for the serotonin synthesis. It has been proposed that these alterations could be at least partially explained by cytokine-induced peripheral and/or central activation of the indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO), a tryptophan-catabolizing enzyme that is potently induced in monocytes, macrophages and brain microglia by cytokines. IDO activation can result in the increase of neurotoxic derivates production (3-OH-kynurenine, quinolinic acid), together with a reduced bioavailability of tryptophan for the synthesis of serotonin (Dantzer et al., 2008). Both consequences of cytokine-induced IDO activation may play a role in the development of the cognitive disorders associated with inflammation, as suggested by recent animal studies (Ceresoli-Borroni et al., 2007; Guidetti et al., 2006; Olivier et al., 2008; Uchida et al., 2007). Besides IDO activation, impaired hypothalamic-pituitary-adrenal (HPA) axis response to cytokine administration has also been shown to condition increased vulnerability to inflammation-induced cognitive symptoms (Capuron et al., 2003). This result agrees with the mounting evidence that links increased concentrations of glucocorticoids resulting from chronic stress exposure or aging with cognitive decline (Chrousos and Kino, 2007; de Kloet et al., 2008; Lupien et al., 2007). Obesity is associated with increased activity of both the HPA axis and peripheral IDO. It can therefore be hypothesized that in the context of obesity, altered reactivity of both IDO and HPA systems might be an important contributing factor to the cognitive disorders that might result from exacerbated sickness response to systemic inflammation. An increased susceptibility to autoimmune diseases and infections is often reported in obese subjects (Amar et al., 2007a; Mannino et al., 2006). Similarly, systemic infections have more severe consequences in the elderly (Chen et al., 2008; Rahkonen et al., 2000) and in animal models of chronic degenerative diseases (Perry et al., 2007). In these models, transient peripheral immune activation superimposed on low grade inflammation, acutely exacerbates cognitive symptoms of disease (Cunningham et al., 2008). This effect has been proposed to be based on an atypical more “reactive” state of brain microglia referred to as “primed” state. In vulnerable subjects exposed to systemic infection, “primed” microglia switch their silent 133 phenotype to produce excessive cytokines and IDO (Capuron and Dantzer, 2003; Henry et al., 2008) that translate in altered neuroendocrine (HPA axis) and behavioural sickness response (Capuron et al., 2003; Henry et al., 2008). Similarly, obesity may constitute another situation in which chronic low grade inflammation, potentially exacerbated by systemic inflammatory challenges, would condition increased vulnerability to comorbidities such as cognitive dysfunctions. In order to test this hypothesis, we first investigated the relationship between inflammation and development of cognitive alterations related with increased body weight in a murine model of diet induced obesity. Cognitive performances were therefore evaluated in a Y-maze both before (overweighed period) and after establishment of a clear obesity (20 % increased body weight compared to lean controls). Then, we measured the potential exacerbation of obesity-related cognitive dysfunctions by a systemic inflammatory challenge elicited by peripheral administration of the cytokine inducer lipopolysaccharide (LPS). Our data indicate that cognitive deficits existed in both overweighed and obese mice and are exacerbated by LPS-induced innate immune system stimulation. Moreover, such an exacerbation was paralleled by increased activation of different inflammatory markers including brain proinflammatory cytokines and IDO enzymatic activity in obese subjects. This study provides therefore important clues about the neurobiological basis through which cytokines may have an impact on cognitive behaviors in the context of obesity. Methods Animals and housing Male C57BL/6 mice were purchased from Charles River Laboratories and were maintained under a 12h light/dark cycle (9:00 on) at 23°C with ad libitum consumption of water and A04 rodent chow (Safe, Villemoisson-sur-Orge, France) or enriched diet prepared at the laboratory. All animal care and experimental procedures were in accordance with the European Communities Council Directive of 24 November 1986 (86/609/EEC) and with the National Institute of Health (NIH) guidelines and were approved by the Institutional Animal Care and Use Committees. Diet and treatment 134 At their arrival, mice were randomly divided into two groups, one with free access to standard rodent chow A04 (Fat, 3,1 %; Carbohydrate, 60 %; Protein, 16,1 %; 3,3 Kcal/g) and the other one to a fat-rich diet containing pâté, chips, chocolate, bacon and biscuits as previously published (Berraondo et al., 1997).The composition was Fat, 32 %; Carbohydrate, 17,5 %; Protein, 11,3 %; 4,4 Kcal/g. Body weight and food intake were measured once a week over a 19-wk period. Lipopolysaccharide (LPS) from E.coli (serotype 0127:B8) was purchased from Sigma and dissolved in sterile endotoxin-free isotonic saline on the test day to obtain 0.83 µg/g for intraperitoneal (i.p.) injection. Endotoxin-free isotonic saline was used as the vehicle control. Experimental procedures The aim of the present study was to determine the consequences of chronic fat-rich diet intake on cognitive troubles and on the activity of the innate immune system, in both unstimulated (basal level) and stimulated (LPS challenge) conditions. Cognitive ability was assessed in all animals during the weight gain period and at the end of the 19 wk period of exposure to a hypercaloric diet. Animals were first submitted to a Y maze to assess the cognitive performance of the mice after 9 wk of diet. Peripheral stimulation of the innate immune system with LPS enhanced expression and release of proinflammatory cytokines, which are responsible of physiological and behavioral symptoms of sickness (Dantzer, 2006). Therefore, both LPS-induced cytokine production (mRNA and protein expression) and sickness symptoms (as reflected by body weight loss and behavioral changes) were assessed at the end of the 19-wk period of standard or fat-rich diet exposure. By that time, mice were injected i.p. with saline or LPS (0.83 µg/g) and were immediately returned to their home cage. In order to determine the potential effects of fat-rich diet on the early phase of the cytokine response to LPS, a first group of lean and obese mice was killed 2h after treatment by CO2 inhalation. Immediately after, mice were intracardiacally perfused with PBS 1X at 4°C via the ascending aorta to remove all traces of blood from tissues. Hippocampus was then collected and immediately stored at -80°C until PCR analysis of mRNA content. Concurrently, a second group of lean and obese mice was used to measure the potential modulation of long-term (24h) LPS-induced alterations by fat-rich diet. LPS-induced body weight loss was controlled 24h after injection. Twenty two hours after treatment, mice were tested in a Y maze in order to evaluate potential LPS-induced cognitive alterations. Concurrently, saline-treated lean and obese mice were tested in the same behavioral 135 paradigms to assess potential alterations induced by obesity. One hour after the end of the Y maze, mice were killed by CO2 inhalation and blood samples were collected via cardiac puncture into EDTA-coated tubes. After centrifugation (10 min, 3000 g, 4°C), plasma was stored at -80°C until assay for concentrations of corticosterone, cytokines and adipokines. Half mice were perfused with PBS 1X as just described, brain, lungs and adipose tissue were immediately collected and stored at -80°C for later determination of IDO activity, serotonin metabolism and/or cytokines mRNA levels. We have previously shown by using similar experimental procedure that LPS challenge induced, 24h after treatment, an increased IDO activity (Lestage et al., 2002), associated with behavioral alterations in the FST (Frenois et al., 2007). The other group was perfused with paraformaldehyde 4% and brains were collected to realise immunohistochemistry (Gautron et al., 2005). Behavioral measures Behavioural experiments were performed 2h before the light off, under conditions of dim light and low noise. Behaviour was monitored via a video camera and videotaped to be scored later by a trained observer blind to drug treatments, using the “Observer Basic” software (Noldus, Netherlands). The Y-maze was used to assess spatial working memory. This task has been shown to require cognitive processes involving the hippocampus (Conrad et al., 1996). The apparatus was a Yshaped maze made of gray plastic. Each arm was 34 cm long, 8 cm wide and 14 cm high. The floor of the maze was covered with corn cob litter which was mixed between each trial in order to remove olfactory cues. Visual cues were placed in the testing room and kept constant during the whole test. In the first trial of the test, one arm of the Y-maze was closed with a guillotine door and mice were allowed to visit two arms of the Y-maze for 5 min. After a 30min inter-trial interval, mice were placed back in the start arm and allowed free access to the three arms for 5 min. Start and closed arms were randomly assigned for each mouse. Arm entries were defined as entry of all four paws into the arm. The index of recognition was calculated as the ratio of the time spent in the novel arm / (novel + adjacent) arms during the first three minutes of the retrieval phase. Measurements levels of cytokines and adipokines IL-6, TNF alpha, IL10, IL12 and IFN gamma were measured in plasma with the mouse serum cytokine LINCOplex kits (Linco research, Inc., St. Charles, MO, USA) following the manufacturer’s instructions as previously described (Moreau et al., 2008a). Briefly, the assay 136 is based on the use of carboxylated polystyrene beads with a distinct emitting fluorescence pattern and coupled covalently with capture antibodies specific for individual target proteins. A Luminex100 was used to process the data. The service was provided by the “Functional Exploration Platform” from the Genopole of Toulouse, France. (http://ifr31.toulouse.inserm.fr/PFT/ExplPhysioPatho/) HPA axis evaluation Corticosterone concentrations were measured from plasma using an ImmuChem Double Antibody Corticosterone RIA Kit from Diasorin (Antony, France). Plasma concentrations of corticosterone were determined according to the manufacturer’s instructions as previously described (Apter and Eriksson, 2006). ACTH is measured using a LINCOplex kit as previously described. RNA isolation and reverse transcription for IL6, TNF alpha, IFN gamma, IDO. Total RNA from hippocampus samples was extracted with Trizol. Reverse transcription was performed using oligo dT primers added 2 µg of hypothalamus RNA. The oligo dT primer/RNA mix was then inactivated at 65°C for 5 min and chilled on ice. Reverse transcription was performed at 55°C for 45 min. The reaction was terminated by heat (70°C for 15 min). To minimize inter-assay variation all RNA samples from a single experimental group were reverse transcribed simultaneously. Real-time PCR for IL6, TNF alpha, IFN gamma, IDO. Resultant first-strand cDNA was amplified by the Taqman Universal PCR Master Mix with sequence-specific primers and the FAM-labeled Taqman MBG probe assay mix (Applied Biosystems). The assay IDs for the target genes in the assay mix were: IL-6 (Mm00446190_m1), IL-1β (Mm00434228_m1), TNFα (Mm00443258_m1), IFNgamma (Mm 00801778_m1), IDO (Mm00492586_m1), and for the house keeping gene β2 microglobulin (Mm00437762_m1) as previously used (O'Connor et al., 2008). Real time PCR was performed on the ABI Prism 7700 under the following conditions: 50°C for 2 min, 95°C for 10 min, followed by 40-cycles amplification phase of 95°C for 15 sec and 60°C for 1 min. Results were normalized with the β2 microglobulin endogenous control and the relative quantitative evaluation of the amplification products was performed using the comparative threshold cycle method, as described elsewhere (Applied Biosystems user bulletin n°2). 137 Statistic Analysis Data (mean ± SEM) were analyzed using a one-way ANOVA (strain) or a two-way (strain x treatment) ANOVA with repeated measurement on the time factor where appropriate, followed by a post-hoc pair wise multiple comparison procedure using the Fischer’s LSD method, if the interaction was significant. Results Exposure to enriched diet rapidly induced overweight leading to obesity As expected (Andre et al., 2008a), enriched diet induced a significant increase in body weight over the 19-wk period (diet: F1,1198=2606, p<0.001, time: F1,1998=889.38, p<0.001, diet x time: F1,1998=65.34, p<0.001). Overweighed appeared in animals fed with enriched diet after 9 wk (p<0.05), whereas a marked obesity (20 % increase in body weight compared to lean mice) was clearly installed after 15 wk (Fig 1A). These results show that consumption of a highly caloric food, even though daily food intake did not significantly differ between both groups (data not shown), clearly induced the development of a marked obesity. 40,0 Lean 35,0 Obese Body weight (g) 30,0 *** *** *** *** *** *** *** *** *** 25,0 Figure 1A Effect of enriched diet on body weight changes during the 19 wk period of diet exposure. Data are represented as means ± SEM (n=56). ***p<0.001, obese versus lean mice 20,0 15,0 10,0 5,0 0,0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 Wk Diet-induced obesity induced early cognitive disorders Severe obesity has been associated with some cognitive disorders but nothing was known about the time-course of disorders onset (Cournot et al., 2006). We studied here the early consequences of enriched diet on cognitive abilities. Overweighed mouse presented alteration of spatial working memory in the Y maze apparatus that requires cognitive 138 processes involving the hippocampus (Conrad et al., 1996). In accordance with the experimental procedure described for this test (Dellu et al., 2000), mice were submitted to Y maze test with an inter-trial interval (ITI) of 2 min. In this paradigm, both groups perfectly recognized the new arm (lean mice: p<0.001, overweighed mice: p<0.001) (Fig 2A). Mice did not exhibit problem of recognition since the response to novelty is not altered. One week after this test, spatial memory was evaluated in a Y maze test with an ITI of 30 min. Overweighed mice fed with enriched diet for 9 wk were not able to recognize the novel arm 30 min after the first exposure to the maze as shown by the index of recognition which was not different from chance. On the contrary, lean mice fed with well-balanced diet clearly recognized the new arm after a retention time of 30 min (lean mice: F1,30=14.32, p<0.001) (Fig 2B). Taken together, these results confirmed that overweigh mice present alteration of spatial memory and that the difference of exploration observed in the 30 min ITI test was not due to a difference of stress reactions to manipulation. 0,70 *** 0,70 *** *** 0,60 Lean Obese 0,60 Lean Obese 0,50 Recognition index Recognition index 0,50 0,40 0,30 0,40 0,30 0,20 0,20 0,10 0,10 0,00 0,00 Figure 2A Index of recognition of novelty after a 2min-ITI. Period of the diet was 9 wk. Data are represented as means ± SEM (n=8). ***p<0.001, each group is compared to hazard (0.5) Figure 2B Index of recognition of novelty after a 30min-ITI. Period of the diet was 9 wk. Data are represented as means ± SEM (n=8). ***p<0.001, each group is compared to hazard (0.5) In order to study whether increased body weight gain impaired cognitive deficit already observed in overweighed mice, their behavioural performances were re-evaluated in the Y maze once obesity was clearly established, i.e. after 19 wk of enriched diet consumption. The same paradigm with a 30 min ITI was used to study spatial working memory in both lean and obese mice. Lean mice still presented good performances in the Y maze test, whereas obese mice did not discriminate the novel arm from the other ones (lean mouse: F1,9=10.79, p<0.01, overweighed mouse: NS) (Fig 2C). These data showed that cognitive disorders appeared early 139 in the development of obesity and were maintained over time. No compensation seems to counterbalance the early effect of enriched diet on cognitive performances. 1,00 0,90 ** 0,80 Figure 2C Index of recognition of novelty after a 30min-ITI. Period of the diet was 19 wk. Data are represented as means ± SEM (n=8). **p<0.01, each group is compared to hazard (0.5) Recognition index 0,70 Lean-Sal Lean-LPS Obese-Sal Obese-LPS 0,60 0,50 0,40 0,30 0,20 0,10 0,00 LPS exacerbated enriched diet-induced cognitive disorders Severe obesity has been associated with increased susceptibility to infection (Amar et al., 2007a) that can potentially facilitate development of inflammation-related comorbidities (Godbout et al., 2008; Perry et al., 2007). As shown in our previous study (Andre et al), dietinduced obesity altered behavioural responses to LPS in a forced swim test. Moreover, a challenge with a single high intraperitoneal dose of LPS used to induce a septic shock in normal weighed mice induces cognitive disorders in the Y maze (Noble et al., 2007), but interpretation of this last result in such extreme conditions is complicated. We decided therefore to explore the consequences of a systemic infection induced by a moderate dose of LPS on cognition by the time where obesity was clearly developed. The Y maze test was performed 24 h after the LPS injection, i.e. by the time where locomotor impairment classically observed over the first hours post-treatment has dissipated (data not shown). As expected, LPS induced a progressive and sustained decrease in body weight (treatment: F1,29=315.63, p<0.0001) in both lean and obese mice compared to their respective controls, confirming therefore the efficiency of the host response to LPS. LPS-induced body weight loss was however progressively attenuated by enriched diet, as shown by the significant diet by treatment interaction (F1,29=9.24, p<0.005). Indeed, the reduction of body weight measured 24 h after LPS treatment was significantly smaller (p<0.05) in obese than lean LPS-treated mice (Fig 1B) . 140 0,5 a 0 Figure 1B Effect of LPS (830µg:kg, i.p.) in body weight measures 24h after injection. Data are represented as means ± SEM (n=8). Means with different letters are significantly different from each other. Body weight loss (g) 1 -0,5 a Lean-Sal Lean-LPS -1 Obese-Sal Obese-LPS -1,5 -2 c -2,5 b -3 In order to measure the effect of LPS on cognition, performances in a spatial working memory test, the Y maze, were compared between lean and obese mice. The results obtained revealed a negative impact of LPS treatment on cognitive abilities in both lean and obese mice (F1,21=7.96, p<0.01). As expected, LPS induced cognitive disorders in lean mice (lean saline mice: F1,9=10.79, p<0.01, lean LPS mice: NS) and exacerbated the bad score of recognition index (RI) obtained by obese mice (saline obese mice: RI=0.56± 0.035, LPS obese mice: RI=0.34± 0.139) (Fig 2C). 1,00 0,90 0,80 Figure 2C Index of recognition of novelty after a 30min-ITI. Period of the diet was 19 wk. Data are represented as means ± SEM (n=8). **p<0.01, each group is compared to hazard (0.5) Recognition index 0,70 ** Lean-Sal Lean-LPS Obese-Sal Obese-LPS 0,60 0,50 0,40 0,30 0,20 0,10 0,00 Dietinduced obesity alters immune, neuroendocrine and neurochemical responses to LPS 141 lean Plasma IL-6 (pg/ml) TNFα (pg/ml) IL-12 (pg/ml) IFNγ (pg/ml) Saline 145,02 ± 82,06a 6,09 ± 0,98a 74,55 ± 42,16 ND obese LPS 589,85 ± 299,99a 26,94 ± 16,3b 365,04 ± 131,1 ND Saline 124,68 ± 95,94a 8,86 ± 3,69a 379,99 ± 214,7 ND LPS 1613,12 ± 346,41b 30,33 ± 9,14b 295,72 ± 155,83 ND Table 1 Plasma cytokines levels 24h after LPS (830µg/kg, i.p.) or saline injection in lean and obese mice. Values represent means ± SEM (n=8). Means with different letters are significantly different from each other. Behavioral responses to peripheral innate immune system stimulation are underlined by peripheral and brain actions of cytokines that are released in response to LPS (Dantzer, 2001). The exacerbation of the behavioral responses to LPS treatment observed in obese mice may therefore be explained by an alteration of peripheral and/or brain induction of cytokines and their consequences on neuroendocrine and neurochemical activation. As expected, LPS induced 24 h after treatment a significant increase of plasma levels of IL-6 (F1,11=14.9, p<0.01) and TNFα (F1,11=4.83, p<0.05) whatever the group (Table 1). As previously observed in unstimulated conditions, neither plasma cytokine and nor corticosterone levels were markedly altered by diet-induced obesity. But as shown by the significant diet by LPS interactions reported below, diet-induced obesity clearly exacerbated LPS-induced increase in plasma concentrations of IL-6 (F1,11=4.34, p<0.05) and corticosterone (F1,28=6.46, p<0.05) (Fig 3A) . Moreover, this increased activation of the HPA axis was confirmed by the exacerbated ACTH plasma release measured 2 h after LPS injection in obese mice (F1,18=2.98, p<0.05) (Fig 3B). 142 250,00 b Figure 3A Effect of diet and LPS (830µg:kg, i.p.) on corticosterone secretion 24h after injection. Data are represented as means ± SEM (n=8). Means with different letters are significantly different from each other. Lean-Sal Lean-LPS Obese-Sal Obese-LPS Corticosterone (ng/ml) 200,00 150,00 100,00 a a a 50,00 0,00 1400,00 c 1200,00 Figure 3B Effect of diet and LPS (830µg:kg, i.p.) on ACTH secretion 2h after injection. Data are represented as means ± SEM (n=8). Means with different letters are significantly different from each other. ACTH (pg/ml) 1000,00 Lean-Sal Lean-LPS Obese-Sal Obese-LPS 800,00 b 600,00 400,00 a 200,00 a 0,00 Diet-induced obesity alters cytokine and IDO expression induced by LPS in the hippocampus. Considering the potential role of the hippocampus in memory, we decided to investigate the impact of diet-induced obesity on LPS-induced cytokine expression in this brain area. Cytokine and IDO mRNA expression was measured 2 h after LPS injection in the hippocampus of both lean and obese mice. LPS increased 2 h after treatment mRNA expression of IFNγ in both lean and obese mice (F1,17=18.8, p<0.001), but enriched diet exacerbated this effect (diet: F1,17=7.7, p<0.05, diet x treatment: F1,17=4, p=0.059) (Fig 4B). Moreover, obese mice also displayed exacerbation of LPS effect on IDO mRNA expression (treatment: F1,17=45.4, p<0.001; diet: F1,17=5.5, p<0.05, diet x treatment: F1,17=5.4, p<0.05) 2 h after treatment (Fig 4A). Interestingly, LPS-induced increase of TNFα mRNA expression (F1,17=105.9, p<0.001), one of the cytokines inducing activation of IDO (Andre et al., 2008b), was also significantly amplified by diet-induced obesity (diet: F1,17=14.5, p<0.05, diet x treatment: F1,17=15.1, p=0.05) (Fig 4C). Thus, diet-induced obesity selectively potentiated the LPS-induced increase of brain TNFα and IDO mRNA expression and IFNγ expression 143 tend to present the same profile. This effect may therefore underlie the obesity-induced overactivation of HPA axis by LPS and the exacerbation of the cognitive symptoms by LPS. Interestingly, LPS increased 2 h after treatment hippocampus mRNA expression of IL-6 in the same proportion in both lean and obese mice (F1,17=40.5, p<0.001) but we cannot 8 7 6 5 4 3 2 1 0 IDO 35 c b a a nd nd ∆ARNm TNFα A IFNγ B b a TNFα C c 30 25 b 20 15 10 5 a a 0 ∆ARNm IL-6 140 120 100 80 60 40 20 0 ∆ARNm IFNγ ∆ARNm IDO observed any effect of enriched diet (Fig 4D). a a 35 30 25 20 15 10 5 0 IL-6 D b b a a Figure 4A Hippocampic cytokines and IDO mRNA measured 2h after LPS (830µg/kg, i.p.) or saline injection in lean and obese mice. Bars represent means ± SEM (n=8) (A) IDO mRNA expression, (B) IFNγ mRNA expression, (C) TNFα mRNA expression, (D) IL-6 mRNA expression. Means with different letters are significantly different from each other. Discussion Exploring the link between obesity and cognitive symptoms could contribute to better understand some obesity-related comorbidities and to identify potential underlying mechanisms. The present findings demonstrate that despite the lack of detectable illness symptoms in obese mice, diet-induced obesity altered cognitive abilities, as assessed in a hippocampus-dependant memory maze. Moreover, our results show that this cognitive alterations appeared early in the development of obesity since overweighed mice already exhibited impaired performances. Interestingly, the present findings also demonstrate that 144 diet-induced obesity interfered with the ability of the organism to appropriately respond to a systemic infection. More specifically, obesity provides a brain environment promoting an exacerbation of the neuroinflammation induced by a peripheral immune challenge, as manifested by an excessive brain cytokine production and activation of the microglial TRPcatabolizing enzyme IDO that translate in altered neuroendocrine (HPA axis) and behavioral reactivity. Excessive activation of both IDO and HPA axis has already been related to the development of cognitive dysfunctions resulting from dysregulated innate immune system activation (Capuron et al., 2008; Henry et al., 2008). In rodent models of aging or neurological diseases, a similar exaggerated neuroinflammatory response to innate immune challenge has been related to an atypical over-reactive or “primed” state of brain microglia (Perry et al., 2007) and has been shown to accelerate development of important neurobehavioral complications (Cunningham et al., 2008; Henry et al., 2008). Although the cellular source of exacerbated neuroinflammation was not directly identified in the present study, our results strongly suggest that obesity may constitute another situation in which a “primed” microglia may determine increased vulnerability to the negative consequences of immune-mediated events. As genetic alterations only account for a small fraction of obesity in humans(Gibson et al., 2004a), diet-induced obesity models constitute a more relevant approach for studying the relationship between obesity and inflammation than genetically obese animals. Moreover, they allow following up the progression of obesity and its related comorbidities, whereas the time frame is much more reduced in the case of genetic obesity models. In the present study, mice fed with enriched diet became obese, as evidenced by the huge body weight gain and adipose tissue hypertrophy, but they did not display increased plasma cytokine production in unstimulated conditions, strongly suggesting therefore the lack of detectable low-grade basal inflammation by the time it was measured. This finding agrees with recently published data (Amar et al., 2007a; Bedoui et al., 2005), but it contrasts with what is reported in most genetic obesity models (Ellacott et al., 2007; Hotamisligil et al., 1993; Xu et al., 2003c) or in high fatinduced obesity models (Chen et al., 2005; De Souza et al., 2005; Xu et al., 2003c). However, in both cases inflammation is associated with marked symptoms of obesity-related pathological complications, particularly diabetes or cardiovascular diseases that can per se induce an inflammation. Similarly, low-grade inflammation has been mainly reported in humans suffering from extremely severe forms of obesity (Cancello and Clement, 2006). Our experimental conditions provide therefore the opportunity of detecting behavioral alterations 145 preceding the onset of obesity and its related physiological consequences such as inflammation. Before the actual development of a clear obesity and in absence of any additional immune stimulation, exposure to an enriched diet induced cognitive deficits in the Y-maze. This result suggests the development of molecular changes underlying alterations of the performances measured in these overweighed mice. The two-trial Y-maze task is a specific and sensitive test of spatial recognition memory in rodents (Dellu et al., 2000). It is based on the innate tendency of rodents to explore novel environments (Dellu et al., 2000). This paradigm does not require the learning of a rule, making it useful for studying memory in rodents (Dellu et al., 1992). Given that this task is based on exploration of novelty, mice were first tested for novelty exploration, with a short ITI. After a 2 min ITI, both obese and lean mice exhibited a normal response to novelty and recognized therefore the novel arm. Following a 30 min ITI, overweighed and obese mice showed significantly lower novel arm preference, as assessed by the recognition index. Thus, overweighed and obese mice presented spatial memory impairment in absence of any visible signs of basal inflammation compared to lean controls. We have however recently shown that mice exposed to the enriched diet used in the present experiment exhibit a marked increase in plasma and adipose tissue levels of leptin (André et al., submitted). Leptin, an adipokine encoded by an obesity gene and expressed in adipose tissue affects feeding behavior, thermogenesis, and neuroendocrine status via leptin receptors distributed into the brain, especially in the hypothalamus, but also the hippocampus (Elmquist et al., 1998). It has been shown that leptin not only affects hypothalamic functions such as feeding, but also modulates higher nervous functions, such as behavioural performance related to learning and memory (Oomura et al., 2006) or emotional reactivity (Lu et al., 2006). Although not directly assessed in the present experiment, the role played by leptin and/or related adipokines in the cognitive deficits observed in both overweighed and obese mice deserves to be thoroughly studied. Similarly, it must be interesting to evaluate brain expression of additional markers of inflammation than those already measured in the present study including hippocampal expression of IL-1β since this cytokine has been shown to play a role in complex mechanisms involved in memory processes such as long term potentiation (Griffin et al., 2006). As previously shown, diet-induced obesity interfered with the ability of the organism to appropriately respond to a systemic infection (Amar et al., 2007a); André et al, submitted). In the present study, enriched diet exposure exacerbated neuroinflammation induced by a 146 systemic immune challenge. Interestingly, the cytokines targeted by the exacerbating effects of peripheral LPS differ according to the brain structure considered. We have previously shown that diet-induced obesity selectively potentiates the LPS-induced increase of IL-6 and IDO mRNA expression in the hypothalamus (André et al, submitted). Although this exacerbated IDO mRNA expression was also observed in the hippocampus of obese LPStreated mice, the exacerbation of hypothalamic IL-6 mRNA expression was not observed in the hippocampus. Moreover, if hypothalamic expression of TNFα was not exacerbated by diet after LPS injection, this expression was exacerbated in the hippocampus of obese LPS-treated mice compared to their lean counterparts. Finally, LPS-induced increase of IFNγ mRNA expression, one of the main cytokine involved in IDO activation (Brown et al., 1989; Byrne et al., 1986), was also significantly amplified by diet in both the hippocampus and hypothalamus. Such a differential effects of a systemic LPS injection on brain expression of cytokines and IDO agree with previously published data reporting a time-dependent induction of IDO expression in both the hippocampus and hypothalamus that was associated with a specific structure-dependent expression of proinflammatory cytokines, particularly IFN-γ (Andre et al., 2008b). Taken together, these results suggest that the in vivo mechanisms of LPS-induced brain IDO mRNA expression could vary in the hippocampus and hypothalamus especially in terms of the respective importance of the different cytokines. Moreover, the present findings also suggest that distinct intracellular pathways are probably involved in the obesity-related induction of specific structure-dependent vulnerability to neuroinflammation. Furthermore, high concentrations of glucocorticoids have also been reported in vitro to enhance cytokine-induced IDO activation. In the present study, the exacerbated production of corticosterone observed in obese-LPS treated mice, linked to the exacerbation of IFNγ and TNFα expression may participate in the over-activation of IDO. Although the physiological significance of such structure-dependent differences in the mechanisms of IDO activation by LPS and modulation of this activation by obesity still needs to be elucidated, they are consistent with recent data showing that the hypothalamus and hippocampus also show after LPS a time-dependent differential pattern of cellular activation, as assessed by the neuroanatomical analysis of c-fos and FosB/∆fosB immunostaining (Frenois et al., 2007). Interestingly, such a functional dissociation was related to LPS-induced sickness and depressive-like behaviors (Frenois et al., 2007). Similarly, the possible role of the present spatial differences of vulnerability to LPS-induced neuroinflammation in the distinction between sickness behavior and cognitive deficits observed in obese subjects 147 remain to be determined. Interestingly, cognitive dysfunctions reported in cancer patients treated with cytokines parallel depressive symptoms, but appear to be independent from sickness symptoms (Capuron and Dantzer, 2003). Moreover, mood and cognitive disorders are also associated in obese patients with metabolic syndrome (Capuron et al., 2008). By reducing local bioavailability of tryptophan, stimulation of IDO activity can impact on the synthesis of serotonin that has been shown to play a key role in memory processes (Buhot et al., 1999). The kynurenine pathway also results in the generation of three neuroactive compounds: 3-hydroxykynurenine (3-HK) and quinolinic acid (QA) are generated in route to NAD production, while kynurenic acid (KA) is formed in a ‘dead end’ branch of the pathway. 3-HK and QA generate free radicals, and QA also acts as an NMDA receptor agonist. Therefore, both these kynurenine metabolites are excitotoxic (Schwarcz, 2004). Intracerebroventricular administration of a high dose QA or L-kynurenine sulfate induced excitotoxic lesions or seizures (Nemeth et al., 2005). QA induces lipid peroxidation, superoxide anion generation and decreases cell viability in primary hippocampal neurons leading to development of spatial memory deficit (Dairam et al., 2007). Moreover, the elevated concentrations of QA reported in HIV patients have been related with the AIDS dementia complex (Guillemin et al., 2005a). Through its potential impact on glutamatergic brain systems, cytokine-induced microglial IDO activation may therefore participate in linking inflammation with cognitive disorders. Indeed, LPS alters cognitive performances in healthy normal-weighted mice (Noble et al., 2007) and accelerates cognitive decline in rodent models of neurodegenerative diseases (Cunningham et al., 2008). Moreover, this acceleration is associated with exaggerated microglial activation in the hippocampus (Cunningham et al., 2008). Taken together, these data suggest that the increased production of QA in the hippocampus, resulting from the exacerbated LPS-induced IDO activation in obese mice, may underlie the concomitant cognitive deficits observed in the Y-maze. More studies are however necessary to test this hypothesis and to identify the mechanisms underlying the impairment of the cognitive performances also observed in overweighed mice or in obese mice independently of any additional LPS challenge. Interestingly, it has been recently reported that hippocampal microglial activation and TNFα production mediate altered central nervous system excitability following peripheral inflammation (Riazi et al., 2008). This microgliadependent TNFα-mediated increase in brain excitability has been proposed as a potential mechanism to underlie the neurobehavioral changes associated with chronic inflammation. 148 More studies are necessary to check whether a similar mechanism may play a role in the context of obesity-related cognitive impairment. In summary, the present study indicates that excessive weight gain altered brain sensitivity to external stimulations leading to the early development of cognitive deficits, since impairment of spatial memory appeared in overweighed mice and was maintained when mice became obese. This study also demonstrates that systemic infection induced cognitive disorders in lean mice and exacerbated alterations of the performances exhibited by obese mice, although a more detailed study of their cognitive abilities assessed in different complementary tests of cognition is obviously needed. Moreover, we confirm that dietinduced obesity interfered with the ability of the innate immune system to appropriately respond to systemic infection, as shown by amplified TNFα, IFNγ and IDO expression in the hippocampus, as well as HPA axis activation. This study provides therefore interesting clues about the neurobiological basis through which cytokines may have an impact on cognitive behaviors in the context of obesity. This information may help to identify new therapeutic and nutritional strategies to better understand and prevent behavioral disorders linked to obesity. Acknowledgments This study was fundes by INRA, CNRS, Région Aquitaine. ALD was supported by a doctoral fellowship from the Institut Danone. We thank Dr. F. Dellu for her advices around the Y maze. 149 References Amar, S., Zhou, Q., Shaik-Dasthagirisaheb, Y., Leeman, S., 2007. Diet-induced obesity in mice causes changes in immune responses and bone loss manifested by bacterial challenge. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 104, 20466-20471. Andre, C., Dinel, A.L., Layé, S., Castanon, N., 2008a. Diet-induced obesity in mice exacerbates neuroinflammation and sickness elicited by systemic infection. Submitted. Andre, C., O'Connor, J.C., Kelley, K.W., Lestage, J., Dantzer, R., Castanon, N., 2008b. Spatio-temporal differences in the profile of murine brain expression of proinflammatory cytokines and indoleamine 2,3dioxygenase in response to peripheral lipopolysaccharide administration. Journal of neuroimmunology 200, 9099. Apter, S.J., Eriksson, C.J., 2006. The role of social isolation in the effects of alcohol on corticosterone and testosterone levels of alcohol-preferring and non-preferring rats. Alcohol and alcoholism (Oxford, Oxfordshire) 41, 33-38. Barrientos, R.M., Higgins, E.A., Biedenkapp, J.C., Sprunger, D.B., Wright-Hardesty, K.J., Watkins, L.R., Rudy, J.W., Maier, S.F., 2006. Peripheral infection and aging interact to impair hippocampal memory consolidation. Neurobiology of aging 27, 723-732. Bedoui, S., Velkoska, E., Bozinovski, S., Jones, J.E., Anderson, G.P., Morris, M.J., 2005. Unaltered TNF-alpha production by macrophages and monocytes in diet-induced obesity in the rat. Journal of inflammation (London, England) 2, 2. Berraondo, B., Bonafonte, A., Fernandez-Otero, M.P., Martinez, J.A., 1997. Effects on energy utilization of a beta3-adrenergic agonist in rats fed on a cafeteria diet. Eat Weight Disord 2, 130-137. Brown, R.R., Lee, C.M., Kohler, P.C., Hank, J.A., Storer, B.E., Sondel, P.M., 1989. Altered tryptophan and neopterin metabolism in cancer patients treated with recombinant interleukin 2. Cancer research 49, 4941-4944. Buhot, M.C., Malleret, G., Segu, L., 1999. Serotonin receptors and cognitive behaviour--an update. IDrugs 2, 426-437. Byrne, G.I., Lehmann, L.K., Landry, G.J., 1986. Induction of tryptophan catabolism is the mechanism for gamma-interferon-mediated inhibition of intracellular Chlamydia psittaci replication in T24 cells. Infection and immunity 53, 347-351. Cancello, R., Clement, K., 2006. Is obesity an inflammatory illness? Role of low-grade inflammation and macrophage infiltration in human white adipose tissue. Bjog 113, 1141-1147. Capuron, L., Dantzer, R., 2003. Cytokines and depression: the need for a new paradigm. Brain, behavior, and immunity 17 Suppl 1, S119-124. Capuron, L., Raison, C.L., Musselman, D.L., Lawson, D.H., Nemeroff, C.B., Miller, A.H., 2003. Association of exaggerated HPA axis response to the initial injection of interferon-alpha with development of depression during interferon-alpha therapy. The American journal of psychiatry 160, 1342-1345. Capuron, L., Ravaud, A., Dantzer, R., 2001. Timing and specificity of the cognitive changes induced by interleukin-2 and interferon-alpha treatments in cancer patients. Psychosomatic medicine 63, 376-386. Capuron, L., Su, S., Miller, A.H., Bremner, J.D., Goldberg, J., Vogt, G.J., Maisano, C., Jones, L., Murrah, N.V., Vaccarino, V., 2008. Depressive symptoms and metabolic syndrome: is inflammation the underlying link? Biological psychiatry 64, 896-900. Ceresoli-Borroni, G., Guidetti, P., Amori, L., Pellicciari, R., Schwarcz, R., 2007. Perinatal kynurenine 3hydroxylase inhibition in rodents: pathophysiological implications. Journal of neuroscience research 85, 845854. 150 Chen, A., Mumick, S., Zhang, C., Lamb, J., Dai, H., Weingarth, D., Mudgett, J., Chen, H., MacNeil, D.J., Reitman, M.L., Qian, S., 2005. Diet induction of monocyte chemoattractant protein-1 and its impact on obesity. Obes Res 13, 1311-1320. Chen, J., Buchanan, J.B., Sparkman, N.L., Godbout, J.P., Freund, G.G., Johnson, R.W., 2008. Neuroinflammation and disruption in working memory in aged mice after acute stimulation of the peripheral innate immune system. Brain, behavior, and immunity 22, 301-311. Chrousos, G.P., Kino, T., 2007. Glucocorticoid action networks and complex psychiatric and/or somatic disorders. Stress (Amsterdam, Netherlands) 10, 213-219. Clement, K., Viguerie, N., Poitou, C., Carette, C., Pelloux, V., Curat, C.A., Sicard, A., Rome, S., Benis, A., Zucker, J.D., Vidal, H., Laville, M., Barsh, G.S., Basdevant, A., Stich, V., Cancello, R., Langin, D., 2004. Weight loss regulates inflammation-related genes in white adipose tissue of obese subjects. Faseb J 18, 1657-1669. Conrad, C.D., Galea, L.A., Kuroda, Y., McEwen, B.S., 1996. Chronic stress impairs rat spatial memory on the Y maze, and this effect is blocked by tianeptine pretreatment. Behavioral neuroscience 110, 1321-1334. Cournot, M., Marquie, J.C., Ansiau, D., Martinaud, C., Fonds, H., Ferrieres, J., Ruidavets, J.B., 2006. Relation between body mass index and cognitive function in healthy middle-aged men and women. Neurology 67, 12081214. Cunningham, C., Campion, S., Lunnon, K., Murray, C.L., Woods, J.F., Deacon, R.M., Rawlins, J.N., Perry, V.H., 2008. Systemic Inflammation Induces Acute Behavioral and Cognitive Changes and Accelerates Neurodegenerative Disease. Biological psychiatry. Dairam, A., Muller, A.C., Daya, S., 2007. Non-steroidal anti-inflammatory agents, tolmetin and sulindac attenuate quinolinic acid (QA)-induced oxidative stress in primary hippocampal neurons and reduce QA-induced spatial reference memory deficits in male Wistar rats. Life sciences 80, 1431-1438. Dantzer, R., 2001. Cytokine-induced sickness behavior: where do we stand? Brain, behavior, and immunity 15, 7-24. Dantzer, R., 2006. Cytokine, sickness behavior, and depression. Neurologic clinics 24, 441-460. Dantzer, R., O'Connor, J.C., Freund, G.G., Johnson, R.W., Kelley, K.W., 2008. From inflammation to sickness and depression: when the immune system subjugates the brain. Nat Rev Neurosci 9, 46-56. de Kloet, E.R., de Jong, I.E., Oitzl, M.S., 2008. Neuropharmacology of glucocorticoids: focus on emotion, cognition and cocaine. European journal of pharmacology 585, 473-482. De Souza, C.T., Araujo, E.P., Bordin, S., Ashimine, R., Zollner, R.L., Boschero, A.C., Saad, M.J., Velloso, L.A., 2005. Consumption of a fat-rich diet activates a proinflammatory response and induces insulin resistance in the hypothalamus. Endocrinology 146, 4192-4199. Dellu, F., Contarino, A., Simon, H., Koob, G.F., Gold, L.H., 2000. Genetic differences in response to novelty and spatial memory using a two-trial recognition task in mice. Neurobiol Learn Mem 73, 31-48. Dellu, F., Mayo, W., Cherkaoui, J., Le Moal, M., Simon, H., 1992. A two-trial memory task with automated recording: study in young and aged rats. Brain Res 588, 132-139. Ellacott, K.L., Murphy, J.G., Marks, D.L., Cone, R.D., 2007. Obesity-induced inflammation in white adipose tissue is attenuated by loss of melanocortin-3 receptor signaling. Endocrinology 148, 6186-6194. Elmquist, J.K., Bjorbaek, C., Ahima, R.S., Flier, J.S., Saper, C.B., 1998. Distributions of leptin receptor mRNA isoforms in the rat brain. J Comp Neurol 395, 535-547. 151 Frenois, F., Moreau, M., O'Connor, J., Lawson, M., Micon, C., Lestage, J., Kelley, K.W., Dantzer, R., Castanon, N., 2007. Lipopolysaccharide induces delayed FosB/DeltaFosB immunostaining within the mouse extended amygdala, hippocampus and hypothalamus, that parallel the expression of depressive-like behavior. Psychoneuroendocrinology 32, 516-531. Gautron, L., Mingam, R., Moranis, A., Combe, C., Laye, S., 2005. Influence of feeding status on neuronal activity in the hypothalamus during lipopolysaccharide-induced anorexia in rats. Neuroscience 134, 933-946. Gibson, W.T., Farooqi, I.S., Moreau, M., DePaoli, A.M., Lawrence, E., O'Rahilly, S., Trussell, R.A., 2004. Congenital leptin deficiency due to homozygosity for the Delta133G mutation: report of another case and evaluation of response to four years of leptin therapy. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 89, 4821-4826. Godbout, J.P., Moreau, M., Lestage, J., Chen, J., Sparkman, N.L., J, O.C., Castanon, N., Kelley, K.W., Dantzer, R., Johnson, R.W., 2008. Aging exacerbates depressive-like behavior in mice in response to activation of the peripheral innate immune system. Neuropsychopharmacology 33, 2341-2351. Griffin, R., Nally, R., Nolan, Y., McCartney, Y., Linden, J., Lynch, M.A., 2006. The age-related attenuation in long-term potentiation is associated with microglial activation. Journal of neurochemistry 99, 1263-1272. Guidetti, P., Bates, G.P., Graham, R.K., Hayden, M.R., Leavitt, B.R., MacDonald, M.E., Slow, E.J., Wheeler, V.C., Woodman, B., Schwarcz, R., 2006. Elevated brain 3-hydroxykynurenine and quinolinate levels in Huntington disease mice. Neurobiology of disease 23, 190-197. Guillemin, G.J., Kerr, S.J., Brew, B.J., 2005. Involvement of quinolinic acid in AIDS dementia complex. Neurotoxicity research 7, 103-123. Henry, C.J., Huang, Y., Wynne, A., Hanke, M., Himler, J., Bailey, M.T., Sheridan, J.F., Godbout, J.P., 2008. Minocycline attenuates lipopolysaccharide (LPS)-induced neuroinflammation, sickness behavior, and anhedonia. Journal of neuroinflammation 5, 15. Heyser, C.J., Masliah, E., Samimi, A., Campbell, I.L., Gold, L.H., 1997. Progressive decline in avoidance learning paralleled by inflammatory neurodegeneration in transgenic mice expressing interleukin 6 in the brain. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 94, 1500-1505. Hotamisligil, G.S., Shargill, N.S., Spiegelman, B.M., 1993. Adipose expression of tumor necrosis factor-alpha: direct role in obesity-linked insulin resistance. Science (New York, N.Y 259, 87-91. Konsman, J.P., Parnet, P., Dantzer, R., 2002. Cytokine-induced sickness behaviour: mechanisms and implications. Trends in neurosciences 25, 154-159. Lestage, J., Verrier, D., Palin, K., Dantzer, R., 2002. The enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase is induced in the mouse brain in response to peripheral administration of lipopolysaccharide and superantigen. Brain, behavior, and immunity 16, 596-601. Lu, X.Y., Kim, C.S., Frazer, A., Zhang, W., 2006. Leptin: a potential novel antidepressant. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 103, 1593-1598. Lupien, S.J., Maheu, F., Tu, M., Fiocco, A., Schramek, T.E., 2007. The effects of stress and stress hormones on human cognition: Implications for the field of brain and cognition. Brain and cognition 65, 209-237. Mannino, D.M., Mott, J., Ferdinands, J.M., Camargo, C.A., Friedman, M., Greves, H.M., Redd, S.C., 2006. Boys with high body masses have an increased risk of developing asthma: findings from the National Longitudinal Survey of Youth (NLSY). International journal of obesity (2005) 30, 6-13. Moreau, M., Andre, C., O'Connor, J.C., Dumich, S.A., Woods, J.A., Kelley, K.W., Dantzer, R., Lestage, J., Castanon, N., 2008. Inoculation of Bacillus Calmette-Guerin to mice induces an acute episode of sickness behavior followed by chronic depressive-like behavior. Brain, behavior, and immunity. 152 Nemeth, H., Toldi, J., Vecsei, L., 2005. Role of kynurenines in the central and peripheral nervous systems. Current neurovascular research 2, 249-260. Noble, F., Rubira, E., Boulanouar, M., Palmier, B., Plotkine, M., Warnet, J.M., Marchand-Leroux, C., Massicot, F., 2007. Acute systemic inflammation induces central mitochondrial damage and mnesic deficit in adult Swiss mice. Neuroscience letters 424, 106-110. O'Connor, J.C., Lawson, M.A., Andre, C., Moreau, M., Lestage, J., Castanon, N., Kelley, K.W., Dantzer, R., 2008. Lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior is mediated by indoleamine 2,3-dioxygenase activation in mice. Molecular psychiatry. Olivier, J.D., Van Der Hart, M.G., Van Swelm, R.P., Dederen, P.J., Homberg, J.R., Cremers, T., Deen, P.M., Cuppen, E., Cools, A.R., Ellenbroek, B.A., 2008. A study in male and female 5-HT transporter knockout rats: an animal model for anxiety and depression disorders. Neuroscience 152, 573-584. Oomura, Y., Hori, N., Shiraishi, T., Fukunaga, K., Takeda, H., Tsuji, M., Matsumiya, T., Ishibashi, M., Aou, S., Li, X.L., Kohno, D., Uramura, K., Sougawa, H., Yada, T., Wayner, M.J., Sasaki, K., 2006. Leptin facilitates learning and memory performance and enhances hippocampal CA1 long-term potentiation and CaMK II phosphorylation in rats. Peptides 27, 2738-2749. Perry, V.H., Cunningham, C., Holmes, C., 2007. Systemic infections and inflammation affect chronic neurodegeneration. Nature reviews 7, 161-167. Rahkonen, T., Luukkainen-Markkula, R., Paanila, S., Sivenius, J., Sulkava, R., 2000. Delirium episode as a sign of undetected dementia among community dwelling elderly subjects: a 2 year follow up study. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry 69, 519-521. Raison, C.L., Demetrashvili, M., Capuron, L., Miller, A.H., 2005. Neuropsychiatric adverse effects of interferonalpha: recognition and management. CNS drugs 19, 105-123. Riazi, K., Galic, M.A., Kuzmiski, J.B., Ho, W., Sharkey, K.A., Pittman, Q.J., 2008. Microglial activation and TNF{alpha} production mediate altered CNS excitability following peripheral inflammation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Schwarcz, R., 2004. The kynurenine pathway of tryptophan degradation as a drug target. Current opinion in pharmacology 4, 12-17. Uchida, S., Umeeda, H., Kitamoto, A., Masushige, S., Kida, S., 2007. Chronic reduction in dietary tryptophan leads to a selective impairment of contextual fear memory in mice. Brain research 1149, 149-156. Vallieres, L., Campbell, I.L., Gage, F.H., Sawchenko, P.E., 2002. Reduced hippocampal neurogenesis in adult transgenic mice with chronic astrocytic production of interleukin-6. J Neurosci 22, 486-492. Wadden, T.A., Butryn, M.L., Sarwer, D.B., Fabricatore, A.N., Crerand, C.E., Lipschutz, P.E., Faulconbridge, L., Raper, S.E., Williams, N.N., 2006. Comparison of psychosocial status in treatment-seeking women with class III vs. class I-II obesity. Obesity (Silver Spring, Md 14 Suppl 2, 90S-98S. Xu, H., Barnes, G.T., Yang, Q., Tan, G., Yang, D., Chou, C.J., Sole, J., Nichols, A., Ross, J.S., Tartaglia, L.A., Chen, H., 2003. Chronic inflammation in fat plays a crucial role in the development of obesity-related insulin resistance. The Journal of clinical investigation 112, 1821-1830. 153 154 Chapitre 3 155 156 Chapitre 3 ANXIETY-LIKE DISORDERS ARE ASSOCIATED WITH DIET-INDUCED OBESITY IN MICE Anne Laure Dinel, Caroline André, Sophie Layé and Nathalie Castanon En préparation 157 158 AnxietyAnxiety-like disorders are associated with diet dietiet-induced obesity in mice Objectifs : Après avoir identifié la mise en place de troubles cognitifs et de modification de la réponse émotionnelle chez les souris ayant consommé un régime enrichi, le but de cette étude était de s’interesser aux symptômes de type anxieux souvent associés à l’obésité. Matériel et méthodes : Des souris mâles C57bl/6J de 3 semaines ont été soumises soit au régime standard pour rongeur soit à un régime enrichi (lipides: 24%, glucides: 34%, protéines: 12%) pendant 19 semaines. Au bout de 9 semaines de régime, les animaux consommant le régime hypercalorique sont en surpoids et sont alors soumis à un test évaluant les troubles de type anxieux : le labyrinthe en croix surélevé. Au terme de la période de 19 semaines, les animaux sont de nouveau placés dans le labyrinthe en croix surélevé. Les animauux ont été sacrifiés 1h après le test et le plasma, les poumons, le tissu adipeux et le cerveau ont été prélevés. Les concentrations en IL-6, IFNγ, TNFα et ACTH ont été mesurées dans le plasma et le tissu adipeux en multiplex selon la technologie Luminex. La concentration de corticostérone plasmatique est évaluée avec un kit RIA. L’activité enzymatique de l’IDO pulmonaire a été évaluée par dosage du rapport KYN/Trp par HPLC. Enfin, l’expression cérébrale des ARNm de l’IL-6, du TNFα, de l’IFNγ, et de l’IDO a été mesurée par PCR en temps réel. Résultats : Les souris en surpoids ne présentent pas de symptômes de type anxieux. Ces symptômes ne peuvent être mis en évidence que lorsque les souris sont réellement obèses (masse corporelle de 20% supérieure à celle du groupe contrôle). En condition basale, les taux circulants ainsi que l’expression cérébrale d’IL-6, de TNFα, d’IFNγ et de MCP-1, ainsi que la libération de corticostérone ne sont pas affectés chez les souris obèses. 159 Conclusion : La prise de poids entraîne la mise en place de troubles de type anxieux, mais ces troubles n’apparaissent que lorsque l’obésité est caractérisée. Les mécanismes neurobiologiques sous-tendant ces troubles restent à préciser. 160 Anxiety-like disorders are associated with diet-induced obesity in mice Anne-Laure Dinel, Caroline André, Sophie Layé and Nathalie Castanon* INRA, UMR 1286 PsyNuGen, Université Victor Segalen Bordeaux 2, CNRS, UMR 5226, IFR8, F33076 Bordeaux, France *Adress all correspondence to: Nathalie Castanon, Ph.D INRA, UMR 1286, Laboratory of Psychoneuroimmunology, Nutrition and genetics, Bâtiment UFR Pharmacie, Case courrier 34, Université Victor Ségalen Bordeaux 2, 146 rue Léo Saignat, 33076 Bordeaux, France e-mail : [email protected] Phone: 33 557 574 505 Fax : 33 557 571 227 Abstract Introduction: Obesity, one of the major public health problems in the world, is often associated with anxiety symptoms. Interestingly, both pathologies may present a strong relationship supported by shared biological systems such as an inflammatory status, an alteration of HPA axis activity and of tryptophan metabolism. The aim of the present study was therefore to determine in a murine model of diet induced obesity (DIO) first whether anxiety-like symptoms are induced in these conditions and second whether these symptoms are accompanied by inflammation. Methods: C57Bl/6 mice were fed with enriched diet or with equilibrated diet. Anxiety-like symptoms of diet-induced obesity mice and their lean counterparts was evaluated using a classical anxiety test, the elevated plus maze. Results: Obese mice spent less time in the open arm of the elevated plus maze than lean mice, reflecting development of anxiety-like symptoms. Obese mice did not present difference of locomotor activity compared to the lean animals. Neither cytokine nor HPA axis were exacerbated in obese animals compared to lean ones. 161 Conclusion: Obesity in mice is associated with anxiety disorders. These findings provide therefore important clues to progress in a better understanding of the neurobiological basis linking inflammation and neurobehavioral alterations associated with obesity. Introduction Obesity and anxiety present an increase of their respective prevalence in our population, and are often associated with other major health problems (Becker et al., 2001). Both pathologies have been independently studied for decades however a strong relationship may exist between them. Some psychological arguments have been proposed, but recent evidence also suggests that this relationship may rely on biological systems shown to be impaired in both pathologies, such as an increased proinflammatory cytokine production and altered HPA axis activity and tryptophan metabolism. Obesity is characterized by a morphological and functional alteration of secreting function of adipose tissue which synthesize and secrete numerous adipokines such as leptin and resistin that play a crucial role in the control of energy homeostasis (Friedman and Halaas, 1998). Moreover it can also release inflammatory molecules such as chemokines, acute phase proteins and cytokines, particularly tumour necrosis factor-α (TNFα), interleukin-6 (IL-6) and interferon-γ (IFNγ) (Cancello and Clement, 2006; Mora and Pessin, 2002). It has also been suggested that at least some of these mediators of inflammation could also be found in the brain, especially in the hypothalamus which is implicated in the coordination of food intake and energy expenditure and also in emotion and stress responses (De Souza et al., 2005). This exacerbated production of inflammatory molecules could be a link between obesity and mood disorders. Indeed chronic injection of IL-2 or IFNα to cancer patients undergoing immunotherapy is positively correlated with intensity of anxiety symptoms (Capuron et al., 2003). Moreover, mood disorders associated with inflammation, particularly depressive symptoms have shown to be at least partly mediated by cytokine-induced activation of the indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO), a tryptophan catabolizing enzyme acting both at the periphery and within the brain (Dantzer et al., 2008). Impaired hypothalamic-pituitary-adrenal (HPA) axis response to stress or cytokine administration has also been shown to condition increased vulnerability to inflammationinduced mood disorders (Capuron et al., 2003). A defected negative feedback of HPA axis has been observed in both obesity and anxiety disorders (Jessop et al., 2001). Moreover, the 162 increased glucocorticoid concentrations reported in obese subject could contribute to alter tryptophan metabolism (Maes et al., 1990). Although convergent evidence strengthens the hypothesis of a role of inflammation and related activation of specific brain systems in the high prevalence of anxiety symptoms reported in obese population (Wadden et al., 2006), little is known about the potential underlying mechanisms. The aim of the present study was therefore to determine in a murine model of diet induced obesity first whether anxiety-like symptoms are induced in these conditions and second whether these symptoms are accompanied by inflammation. Methods Male C57BL/6 mice were purchased from Charles River Laboratories and were maintained under a 12h light/dark cycle (9:00 on) at 23°C with ad libitum consumption of water and food. All animal care and experimental procedures were in accordance with the European Communities Council Directive (86/609/EEC) and with the National Institute of Health (NIH) guidelines and were approved by the Institutional Animal Care and Use Committees. At their arrival, 3-wk old mice were randomly divided into two groups, one with free access to standard rodent chow A04 (Fat, 3,1 %; Carbohydrate, 60 %; Protein, 16,1 %; 3,3 Kcal/g) and the other one to an enriched diet (Fat, 32 %; Carbohydrate, 17,5 %; Protein, 11,3 %; 4,4 Kcal/g) freshly prepared in the laboratory as previously described (Berraondo et al., 1997). Body weight and food intake were measured once a week over the 19-wk period of the experiment. Animals were tested in an elevated plus-maze (EPM) at 9 weeks (overweighed period) and at the end of the 19-wk period, once obesity was clearly established. All behavioural experiments were performed between 9:00 am and 11:00, under conditions of dim light and low noise. Behaviour was monitored via a video camera and videotaped to be scored later by a trained observer, using the “Observer Basic” software (Noldus, Netherlands). The EPM test is a well-accepted test of anxiety-like behaviour based on a conflicting situation between the drive to explore a novel environment and the natural aversion for elevated, open spaces (Belzung and Griebel, 2001). The apparatus was a plus shaped acryl maze with two opposite open arms (30 cm in length and 8 cm in width) and two opposite closed arms (30 cm in length, 8 cm width, and 15 cm in height), extending out from a central platform (8 cm × 8 cm). The whole apparatus was elevated 120 cm above the floor. Each mouse was 163 individually placed in the center of the maze, facing an open-arm, and the number of arm entries, as well as the cumulative time spent in open vs. enclosed arms, was assessed during a 5-min period. An entry was scored as such only when the mouse placed all four limbs into any given arm. The ratio between open and total arm exploration, as well as the time spent in the open arms and closed arms, is considered as an “anxiety-like” index, independent of locomotor activity (Pellow et al., 1985). Lean and obese mice was killed by CO2 inhalation. Immediately after, mice were intracardiacally perfused with PBS 1X at 4°C via the ascending aorta to remove all traces of blood from tissues. Blood samples were collected via cardiac puncture into EDTA-coated tubes. After centrifugation (10 min, 3000 g, 4°C), plasma was stored at -80°C until assay for concentrations of corticosterone, cytokines and adipokines. Brains and lungs were immediately collected and stored at -80°C for later determination of IDO activity and/or cytokines mRNA levels. IL-6, TNFα, and IFNγ were measured in plasma with the mouse serum cytokine LINCOplex kits (Linco research, Inc., St. Charles, MO, USA) following the manufacturer’s instructions as previously described (Moreau et al., 2008a). Corticosterone concentrations were measured from plasma using an ImmuChem Double Antibody Corticosterone RIA Kit from Diasorin (Antony, France)(Apter and Eriksson, 2006). Total RNA from hippocampus samples was extracted with Trizol. Reverse transcription was performed using oligo dT primers added 2 µg of hypothalamus RNA. The oligo dT primer/RNA mix was then inactivated at 65°C for 5 min and chilled on ice. Reverse transcription was performed at 55°C for 45 min. The reaction was terminated by heat (70°C for 15 min). To minimize inter-assay variation all RNA samples from a single experimental group were reverse transcribed simultaneously. Resultant first-strand cDNA was amplified by the Taqman Universal PCR Master Mix with sequence-specific primers and the FAM-labeled Taqman MBG probe assay mix (Applied Biosystems) as previously described (André et al., 2008). The assay IDs for the target genes in the assay mix were: IL-6 (Mm00446190_m1), , TNFα (Mm00443258_m1), IFNgamma (Mm 00801778_m1), IDO (Mm00492586_m1), and for the house keeping gene β2 microglobulin (Mm00437762_m1) as previously used (O'Connor et al., 2008). Real time PCR was performed on the ABI Prism 7700 under the following conditions: 50°C for 2 min, 95°C for 10 min, followed by 40-cycles amplification phase of 95°C for 15 sec and 60°C for 164 1 min. Results were normalized with the β2 microglobulin endogenous control and the relative quantitative evaluation of the amplification products was performed using the comparative threshold cycle method, as described elsewhere (Applied Biosystems user bulletin n°2). Measurements of KYN and TRP were determined as described previously (Moreau et al., 2005). The KYN/TRP ratio was used to assess lung IDO activity. Briefly, lungs and brain were homogenized using ice cold potassium 0.14 M KCl, 20 mM phosphate buffer pH 7.0 with an UltraTurrax T25 homogenizer at 1000 rpm. Homogenates were then centrifuged at 14,000 g for 30 min at 4°C. 200 µl of supernatants were precipitated in trichloroacetic acid (2mM) and then centrifugated 15 min at 1300 g, 4°C. After a second centrifugation at 13,000 g, 5 min at 4°C, supernatants were injected onto a 5-µm C18 HPLC column (Lichrospher, Alltech, Deerfield, IL, USA) at a flow rate of 1.0 ml/min with mobile phase containing 0.1M ammonium acetate/acetic acid buffer and 5% acetonitrile (pH 4.65). Levels of KYN were evaluated by UV absorbency at 360 nm. Levels of TRP were detected by fluorescent detector at 285 nm excitation and 365 nm emission wavelengths. All results are presented as mean ± SEM. Statistical comparison were analysed using a one-way (lean vs. obese) ANOVA followed by a post-hoc pair wise multiple comparison procedure using the Fischer’s LSD method, if the interaction was significant. Results As expected (Andre et al., submitted), enriched diet induced a significant increase in body weight over the 19-wk period (diet: F1,1198=2606, p<0.001, time: F1,1998=889.38, p<0.001, diet x time: F1,1998=65.34, p<0.001). Overweighed appeared in animals fed with enriched diet after 9 wk (p<0.05) (Fig 1A). Obesity was clearly installed after 15 wk, their weight being 20 % above the controls by that time. These results show that consumption of a highly caloric food, even though daily food intake did not significantly differ between both groups (data not shown), clearly induced the development of a marked although moderate obesity. Anxiety symptoms have been associated with obesity in several human studies (Becker et al., 2001; Wadden et al., 2006), but only few data exist in animal models. To study the influence of enriched diet on anxiety-like behavioural changes and the time-course of the emergence of these symptoms, mice were tested in an EPM at two period of their 165 development, a first time during the overweighed phase (9 weeks of enriched or standard diet), and the second time when obesity was acquired (19 weeks). In this task which is a wellestablished anxiety test based on the exposure of subjects to unfamiliar aversive places (Belzung and Griebel, 2001), overweighed mice did not present any anxiety-like symptoms, as revealed by the similar duration of exploration of the open-arms observed in both lean and overweighed mice (data not shown). On the contrary, obese mice spent less time exploring the open arms than lean mice (F1,41=5.02, p<0.05) (Figure 1A). This difference of arm exploration cannot be attributed to locomotor activity differences since both obese and lean mice explore in the same proportion the closed and non-anxiogenic arms (F1,41=3.71, NS) (Figure 1B). Obese but not overweighed mice clearly show therefore anxiety-like behavioral 30 A Lean Obese a Anxiety index 25 20 15 10 5 b Time spend in closed arms (min) changes in the EPM. 250 B 200 Lean Obese 150 100 50 0 0 Figure 1: (A) Effect of diet on index of anxiety (time spend in open arms compared to time spend to explore) (B) Time of exploration in closed arms. Data are represented as means ± SEM (n=8). Means with different letters are significantly different from each other. Severe obesity has been associated with a low grade inflammatory status and a hyperactivation of HPA axis (Dinel et al, in preparation). In our diet-induced obesity model, mice were fed with an enriched diet aiming at inducing a moderate but not morbid obesity. In this context, mice did not present increased plasma levels of proinflammatory cytokines (data not shown). Moreover, mRNA hypothalamic and hippocampic expression of cytokines (IL-6, TNFα and IFNγ) and IDO were not altered. Similarly, lung and brain IDO activity was not affected by diet. Finally, corticosterone secretion was not exacerbated in obese mice. As shown in our previous study, mice fed with our enriched diet presented an increased plasma level of leptin in both adipose tissue (F1-20 = 14.4, P < 0.001) and plasma (F1-15 = 40.3, 166 P < 0.001). It has been shown in rats that injection of leptin in the hippocampus induces a decrease of mood disorders (Lu et al., 2006). Leptinoresistance observed in obesity could explain the emergence of anxiety-like disorders, and the time course of this progressive development. The potential positive benefit of leptin on mood reported in lean rats could be blocked by leptinoresistance in obesity. Conclusion The results demonstrate that obesity in mice was associated with anxiety-like behavioral changes and that these symptoms appeared only when obesity was acquired. Moreover, the inflammatory and neuroendocrine markers that we studied did not seem to be involved in the development of these mood disorders, but it should be interesting to investigate the role of this cytokines in others structures, like the amygdala and to study others cytokines, like IL-1β (Griffin et al., 2006; Lau et al., 2008). Interestingly, we have shown that the experimental paradigm we used to induce obesity in the present study leads to the development of silent neurobiochemical changes underlying increased vulnerability to neuroinflammation induced by a systemic inflammatory challenge and its related behavioral consequences. These neurobiological changes that probably affect microglial activation as suggested in other situations such as aging or neurodegenerative diseases (Cunningham et al., 2008; Henry et al., 2008) still need to be elucidated. However, the present study showing the existence of anxiety-like disorders in unstimulated conditions in obese mice strongly supports this hypothesis and may help to identify the mechanisms linking obesity with inflammationrelated neurobehavioral alterations. Furthermore, data assessing only circulating corticosterone are not sufficient to definitively discard the potential impact of HPA axis activity on mood disorders associated with obesity. Based on previously published data (Hay et al., 2000), it should be particularly interesting to also investigate brain mRNA CRH (corticotropin releasing hormone) expression. In conclusion, the present preliminary report demonstrates that diet-induced obesity was associated with development of anxiety-like symptoms, as shown for cognitive dysfunction (Dinel et al, in preparation) and altered emotional reactivity (André et al., submitted), but that the respective temporal patterns of emergence differ between mood and cognitive symptoms. These findings provide therefore important clues to progress in a better understanding of the neurobiological basis linking inflammation and neurobehavioral alterations associated with obesity. 167 References Apter, S. J. and C. J. Eriksson (2006). "The role of social isolation in the effects of alcohol on corticosterone and testosterone levels of alcohol-preferring and non-preferring rats." Alcohol Alcohol 41(1): 33-8. Becker, E. S., J. Margraf, et al. (2001). "Obesity and mental illness in a representative sample of young women." Int J Obes Relat Metab Disord 25 Suppl 1: S5-9. Belzung, C. and G. Griebel (2001). "Measuring normal and pathological anxiety-like behaviour in mice: a review." Behav Brain Res 125(1-2): 141-9. Berraondo, B., A. Bonafonte, et al. (1997). "Effects on energy utilization of a beta3-adrenergic agonist in rats fed on a cafeteria diet." Eat Weight Disord 2(3): 130-7. Cancello, R. and K. Clement (2006). "Is obesity an inflammatory illness? Role of low-grade inflammation and macrophage infiltration in human white adipose tissue." Bjog 113(10): 1141-7. Capuron, L., C. L. Raison, et al. (2003). "Association of exaggerated HPA axis response to the initial injection of interferon-alpha with development of depression during interferon-alpha therapy." Am J Psychiatry 160(7): 1342-5. Cunningham, C., S. Campion, et al. (2008). "Systemic Inflammation Induces Acute Behavioral and Cognitive Changes and Accelerates Neurodegenerative Disease." Biol Psychiatry. Dantzer, R., J. C. O'Connor, et al. (2008). "From inflammation to sickness and depression: when the immune system subjugates the brain." Nat Rev Neurosci 9(1): 46-56. De Souza, C. T., E. P. Araujo, et al. (2005). "Consumption of a fat-rich diet activates a proinflammatory response and induces insulin resistance in the hypothalamus." Endocrinology 146(10): 4192-9. Friedman, J. M. and J. L. Halaas (1998). "Leptin and the regulation of body weight in mammals." Nature 395(6704): 763-70. Griffin, R., R. Nally, et al. (2006). "The age-related attenuation in long-term potentiation is associated with microglial activation." J Neurochem 99(4): 1263-72. Hay, M., M. C. Meunier-Salaun, et al. (2000). "Assessment of hypothalamic-pituitary-adrenal axis and sympathetic nervous system activity in pregnant sows through the measurement of glucocorticoids and catecholamines in urine." J Anim Sci 78(2): 420-8. Henry, C. J., Y. Huang, et al. (2008). "Minocycline attenuates lipopolysaccharide (LPS)-induced neuroinflammation, sickness behavior, and anhedonia." J Neuroinflammation 5: 15. Jessop, D. S., M. S. Harbuz, et al. (2001). "CRH in chronic inflammatory stress." Peptides 22(5): 803-7. Lau, J. Y., D. Goldman, et al. (2008). "Amygdala Function and 5-HTT Gene Variants in Adolescent Anxiety and Major Depressive Disorder." Biol Psychiatry. Lu, X. Y., C. S. Kim, et al. (2006). "Leptin: a potential novel antidepressant." Proc Natl Acad Sci U S A 103(5): 1593-8. Maes, M., C. Schotte, et al. (1990). "The effects of glucocorticoids on the availability of L-tryptophan and tyrosine in the plasma of depressed patients." J Affect Disord 18(2): 121-7. Mora, S. and J. E. Pessin (2002). "An adipocentric view of signaling and intracellular trafficking." Diabetes Metab Res Rev 18(5): 345-56. Moreau, M., C. Andre, et al. (2008). "Inoculation of Bacillus Calmette-Guerin to mice induces an acute episode of sickness behavior followed by chronic depressive-like behavior." Brain Behav Immun. Moreau, M., J. Lestage, et al. (2005). "Bacille Calmette-Guerin inoculation induces chronic activation of peripheral and brain indoleamine 2,3-dioxygenase in mice." J Infect Dis 192(3): 537-44. O'Connor, J. C., M. A. Lawson, et al. (2008). "Lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior is mediated by indoleamine 2,3-dioxygenase activation in mice." Mol Psychiatry. Pellow, S., P. Chopin, et al. (1985). "Validation of open:closed arm entries in an elevated plus-maze as a measure of anxiety in the rat." J Neurosci Methods 14(3): 149-67. Wadden, T. A., M. L. Butryn, et al. (2006). "Comparison of psychosocial status in treatment-seeking women with class III vs. class I-II obesity." Obesity (Silver Spring) 14 Suppl 2: 90S-98S. 168 C hapitre 4 169 170 C hapitre 4 OBESITY-INDUCED INFLAMMATION IS ASSOCIATED WITH MOOD AND COGNITIVE DISORDERS IN DB/DB MICE Anne-Laure Dinel, Caroline André, Sophie Layé and Nathalie Castanon Soumis à Brain, Behaviour and Immunity 171 172 ObesityObesity-induced inflammation is associated with mood and cognitive disorders in db/db mice Objectifs : Après avoir étudié le statut inflammatoire et les troubles du comportement dans une situation d’obsité modérée, le but de cette étude était d’évaluer les conséquences d’une obésité morbide sur ces mêmes paramètres. Matériel et méthodes : Des souris mâles C57BL/6J-leprdb/ leprdb de 8 semaines ont été soumises à differents tests comportementaux afin d’évaluer les symptômes de type anxieux (labyrinthe en croix surélevé et open-field) et les troubles cognitifs (labyrinthe en Y). Les animaux ont été sacrifiés à l’issue de ces différents tests et le plasma, les poumons, le tissu adipeux et le cerveau ont été prélevés. Les concentrations en IL-6, IFNγ, TNFα et ACTH ont été mesurées dans le plasma et le tissu adipeux en multiplex selon la technologie Luminex. La concentration de corticostérone plasmatique est évaluée avec un kit RIA. L’activité enzymatique de l’IDO pulmonaire a été évaluée par dosage du rapport KYN/Trp par HPLC. Enfin, l’expression cérébrale des ARNm de l’IL-6, du TNFα, de l’IFNγ, et de l’IDO a été mesurée par PCR en temps réel. Résultats : Les souris db/db présentent des troubles de type anxieux ainsi qu’une altération de leur capacité cognitive. De plus, les taux circulants d’IL-6, de TNFα, d’IFNγ ainsi que ceux de leptine sont exacerbés en condition basale. De la même facon, la production de corticostérone est exacerbée. Enfin l’expression cérébrale d’IL-6, de TNFα et d’IL-1β est augmentée chez les souris obèses. Conclusion : L’obésité morbide entraîne la mise en place d’une situation inflammatoire à bas bruit périphérique et centrale qui s’accompagne de troubles de l’humeur et de la cognition. 173 Obesity-induced inflammation is associated with mood and cognitive disorders in db/db mice Anne-Laure Dinel, Caroline André, Agnès Aubert, Sophie Layé and Nathalie Castanon* INRA, UMR 1286 PsyNuGen, Université Victor Segalen Bordeaux 2, CNRS, UMR 5226, IFR8, F33076 Bordeaux, France *Adress all correspondence to: Nathalie Castanon, Ph.D INRA, UMR 1286, Laboratory of Psychoneuroimmunology, Nutrition and genetics, Bâtiment UFR Pharmacie, Case courrier 34, Université Victor Ségalen Bordeaux 2, 146 rue Léo Saignat, 33076 Bordeaux, France e-mail : [email protected] Phone: 33 557 574 505 Fax : 33 557 571 227 174 Abstract Obesity, which became a major public health problem, could be considered as a chronic inflammatory disease. In some cases, obesity becomes morbid and is associated with multiple co-morbidities such as astherosclerosis, cardiovascular and metabolic disease. Moreover, obesity is often associated with neuropsychological disorders like anxiety, depression and cognitive dysfunctions. Different biological parameters, like alteration of HPA axis activity and of tryptophan metabolism, could be a link between these neuropsychological disorders and obesity. The aim of this study was to determine in a model of morbid obesity whether these both neurobiological systems are implicated in the pathophysiology of mood and cognitive disorders associated with obesity and whether basal peripheral and low grade inflammation altered behavioral and neurochemical responses of the innate immune system to a peripheral stimulation. To test this hypothesis, behavioral and cognitive disorders of db/db mice and their agematched nondiabetic db/+ littermates were evaluated in different tests in both basal conditions. Their inflammatory status and their emotional reactivity were assessed after a peripheral stimulation with a classical cytokine inducer, the lipopolysaccharide or LPS. Our results showed that db/db mice presented cognitive deficit and anxiety-like behavior, but no depressive-like behaviour associated with peripheral and brain inflammation. Moreover obese db/db mice presented altered behavioral and physiological reactivity to systemic LPS injection. These findings provide new evidence of the relationship between inflammation associated with morbid obesity and neurobehavioral alterations observed in this pathology. Keywords: db/db mice, morbid obesity, interleukin-6, inflammation, indoleamine 2,3- dioxygenase, Y maze, forced swim test, tail suspension test, open field, elevated plus maze. Introduction Over the past decade, obesity has reached epidemic proportion throughout the world (Kim and Popkin, 2006). In the most severe forms, numerous conditions complicate obesity, such as atherosclerosis, cardiovascular diseases and metabolic dysregulations leading to development of insulin resistance and type 2 diabetes (Braddon et al., 1986; Toni et al., 2004). These comorbidities constitute a leading cause of disability and increased mortality observed 175 in morbidly obese individuals (Ogden et al., 2007). In addition to the specific symptoms that are characteristic of each of these diseases, most patients also experience non-specific symptoms that include a high prevalence of mood disorders and altered cognition (Cournot et al., 2006; Ryden et al., 2004; Wadden et al., 2006). These non-specific symptoms may constitute an aggravating risk factor for the development of obesity-associated severe comorbidities that significantly increases the cost and complexity of patient care (Fiedorowicz et al., 2008; Scott et al., 2008). However, only a few studies have addressed the pathophysiological mechanisms contributing to the development of mood and cognitive disorders in the context of morbid obesity (Elias et al., 2005; Skilton et al., 2007). There are reasons to believe that both metabolic dysregulations and inflammatory processes chronically induced in morbid obesity could participate in mood and cognitive alterations seen in this disease process (Bornstein et al., 2006; Capuron et al., 2008; Cave et al., 2008; Emery et al., 2007; Greenwood and Winocur, 2005). Severe obesity is characterized by morphological and functional alterations of secreting function of adipose tissue which synthesize and secrete numerous adipokines such as leptin and resistin (Friedman and Halaas, 1998). Concurrently, the insulin resistance that accompanies obesity-related diabetes often favours the development of a marked hyperinsulinemia (Hotamisligil et al., 1996). Moreover, mounting evidence indicates that severe obesity and insulin resistance are associated with a state of peripheral chronic low-grade inflammation characterized by increased plasma production of cytokines mainly originating from adipose tissue (Cancello and Clement, 2006; Mora and Pessin, 2002) and with immune dysfunction (Mito et al., 2000; Pacifico et al., 2006). In addition, few studies have suggested that signs of neuroinflammation may also exist in rodent models of obesity (De Souza et al., 2005). It is now well-established that these metabolic and inflammatory mediators can influence brain functions including neurotransmitter metabolism, neuropeptide function, regional brain activity, and, ultimately, behavior (Calabro and Yeh, 2007; Greenwood and Winocur, 2005). Beyond a point, exacerbated and/or protracted production of these mediators might therefore culminate in the development of pathological disorders including mood and cognitive disorders (Dantzer et al., 2008). The mechanisms underlying such a development in the context of a marked inflammation have been particularly well studied in longitudinal clinical studies performed on patients undergoing cytokine immunotherapy for the treatment of viral diseases or certain cancers (Capuron et al., 2001; Raison et al., 2005). Whereas sickness symptoms invariably 176 appear in all patients immediately after the first administration of recombinant cytokines, as many as of 40 % of these patients ultimately develop clinically relevant neuropsychiatric symptoms (Capuron et al., 2001). Using dimensional analyses, distinct phenomenology and treatment responsiveness of specific clusters of these symptoms including depressive, anxious and cognitive symptoms have been demonstrated in these patients based on their inflammatory status (Capuron et al., 2002). In light of these findings and other complementary data, different molecules have emerged as potential mediators of the various behavioral manifestations of increased inflammation, including cytokines themselves and some of their brain targets (Barrientos et al., 2002; Ben-Menachem et al., 2008; Reichenberg et al., 2001). In this context, mounting clinical and experimental studies point to the tryptophan-catabolizing enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO) as a key player in the development of inflammation-associated depressive symptoms (Capuron et al., 2003). This enzyme is activated in monocytes, macrophages and brain microglia in conditions of immune activation and metabolizes tryptophan (TRP) along the kynurenine (KYN) pathway (Fujigaki et al., 2006; Takikawa et al., 1999). By reducing TRP availability, IDO activation may impact brain serotoninergic neurotransmission, as TRP is the limiting factor for the synthesis of serotonin that plays a crucial role in the regulation of mood and cognition (Mattson et al., 2004). Concurrently, IDO activation results in an increased production of several neuroactive glutamatergic metabolites (Guillemin et al., 2005) that have been implicated in major depression (Muller and Schwarz, 2007; Wichers et al., 2005) or Alzheimer’s disease (Guillemin et al., 2005). In the context of obesity and/or metabolic syndrome, most studies have focus on the role played by metabolic (e.g. leptin, insulin) rather than inflammatory mediators in the development of mood and cognitive symptoms (Gomez-Pinilla et al., 2008; Lu, 2007; McNay, 2007). However, there are but few reports concerned with the potential consequences of inflammation, either alone or in interaction with metabolic dysregulations, on the onset of these non-specific comorbidities. Recent clinical studies report a possible link between these comorbidities and cytokines or IDO activation in obese individuals (Brandacher et al., 2007; Capuron et al., 2008), but these emerging findings still need to be completed and extended. An experimental approach carried out in appropriate animal models of obesity might be very helpful to provide an in-depth knowledge about this topic. In the present study, we aimed to determine whether genetically-induced morbid obesity in mice is associated with depressive-like, anxiety-like and/or cognitive disorders and, if so, 177 whether these associations are underlined by specific neurobiological changes. In order to test this hypothesis, we used the db/db mice that are homozygous for an inactivating mutation in the leptin receptor leading to hyperphagia, obesity, insulin resistance, and hyperglycemia (Chen et al., 1996). These mice have been already used to study the impact of the metabolic alterations related to diabetes on the molecular mechanisms of innate immune system activation, in particular in response to a systemic immune challenge (O'Connor et al., 2007; Sherry et al., 2007) . In terms of behavior, few symptoms classically characterizing infectioninduced sickness behavior such as social exploration have also been studied (O'Connor et al., 2005), but little is known about depressive-like behaviors, anxiety-like behaviors or cognitive performances of db/db mice. We first characterized therefore the potential behavioral dysfunctions associated with morbid obesity in db/db mice. Next, we assessed whether distinct pattern of metabolic and inflammatory responses in mice made ill by the innate immune system activator lipopolysaccharide (LPS) may participate in the relationship between these specific behavioral alterations and morbid obesity. We hypothesized that emotional reactivity and cognitive performances should be altered in db/db mice and that these behavioral changes should be temporarily associated to alterations of their inflammatory status. Using adapted and well-accepted rodent behavioral tests, we present exciting new data that are consistent with this hypothesis. Material and methods Animals and treatments: All animals care and experimental procedure were in accordance with the European Communities Council Directive of 24 November 1986 (86/609/EEC) and were approved by the Institutional Animal Care and Use Committees. Ten- to 14-wk-old male obese db/db (C57BL/6J-leprdb/leprdb) mice and their age-matched nondiabetic db/+ (C57BL/6J-leprdb/+) littermates were purchased from Charles River laboratory. They were housed in standard individual cages with a 12h/12h light-dark cycle (9:00 a.m. to 9:00 p.m.) and free access to food and water. Body weight was measured weekly and mice were handled daily for at least one week before the onset of the experiment to minimize stress reactions to manipulation. LPS was phenol-extracted from Escherichia coli (serotype 0127:B8; RBI/Sigma). On the test day, it was dissolved in sterile endotoxin-free isotonic saline and administered intraperitoneally (i.p.). The dose of LPS (5 µg/mouse) was selected on the basis of its ability to induce the full spectrum of sickness in db/db mice (O'Connor et al., 2005). 178 Experimental procedure: All behavioral experiments were performed under conditions of dim light and low noise. Behavior was monitored via a video camera and videotaped to be scored later by a trained observer blind to drug treatments, using “The Observer Basic” software (Noldus, Netherlands). In order to avoid possible interferences between the different behavioral tests, they were performed with an inter-test interval of at least 5 days. Experiment 1: This experiment was designed to determine a detailed profile of behavioral reactivity of db/db mice compared to their db/+ littermates as assessed in: 1) a cognitive test (the Y-maze test), 2) two anxiety-like behavioral tests (the elevated plus-maze and the open-field) and 3) two tests of depressive-like behavior (the tail suspension test and the forced swim test). After completion of the whole behavioral tests, mice were killed by CO2 inhalation and blood samples were immediately collected via cardiac puncture into EDTA (10%)-coated chilled tubes. After centrifugation (10 min, 3000 g, 4°C), aliquots of plasma were stored at -80°C until assayed for determination of cytokine and hormone levels. Mice were perfused with PBS at 4°C via the ascending aorta to remove all traces of blood from tissues. Brains were also rapidly extracted from the skulls and carefully dissected on glass plate over ice by a trained person to immediately collect the hippocampus, as previously described (Dunn, 1988a, b; Glowinski et al., 1966; Glowinski and Iversen, 1966a; Glowinski and Iversen, 1966b) and routinely performed in our laboratory (Castanon et al., 2004; Laye et al., 1994). After collection, the hippocampus were immediately dry frozen and stored at -80°C for subsequent determination of cytokines and IDO mRNA levels. Test of novelty recognition: The Y-maze was used to assess novelty recognition as previously described (Palin et al., 2004). This task has been shown to require cognitive processes involving the hippocampus (Conrad et al., 1996). The apparatus was a Y-shaped maze made of gray acryl plastic. Each arm was 34 cm long, 8 cm wide and 14 cm high. The floor was covered with corn cob litter which was mixed between each trial in order to remove olfactory cues. Visual cues were placed in the testing room and kept constant during the whole test. In the first trial of the test, one arm of the Y-maze was closed with a guillotine door and mice were allowed to freely visit two arms of the Y-maze for 5 min. The position of the closed arm was chosen randomly. At the end of this first trial, mice returned to their home cages. After a 2-min inter-trial interval (ITI), mice were placed back in the start arm for the retrieval phase and allowed free access to 179 the three arms for 5 min. The duration of visits to each arm was recorded for each trial. Arm entries were defined as entry of all four paws into the arm. The index of recognition was calculated as the ratio of the time spent in the novel arm / (novel + adjacent) arms during the retrieval phase. Tests of anxiety-like behavior: The elevated plus-maze (EPM) test is a well-accepted tests of anxiety-like behavior based on a conflicting situation between the drive to explore a novel environment and the natural aversion for elevated, open spaces (Belzung and Griebel, 2001). The apparatus was a plus shaped acryl maze with two opposite open arms (30 cm in length and 8 cm in width) and two opposite closed arms (30 cm in length, 8 cm width, and 15 cm in height), extending out from a central platform (8 cm × 8 cm). The whole apparatus was elevated 120 cm above the floor. Each mouse was individually placed in the center of the maze, facing an open-arm, and the number of arm entries, as well as the cumulative time spent in open vs. enclosed arms, was assessed during a 5-min period. An entry was scored as such only when the mouse placed all four limbs into any given arm. The time spent in the open arms is considered as an “anxiety-like” index, independent of locomotor activity (Pellow et al., 1985). The open-field (OF) was used here as a rodent model of anxiety-like behavior as previously described (Prut and Belzung, 2003). Mice were exposed to an unknown brightly illuminated environment from which escape is prevented by surrounding walls. The apparatus made of wood and colored white was a square area (40 x 40 cm) with 16 cm high walls. The floor was divided into 16 squares (10 x 10 cm); 4 squares were defined as the central area and the 12 squares along the walls as the periphery. At the beginning of the test, each mouse was placed in the central area and allowed to freely explore the OF for 10 min. Parameters recorded to evaluate anxiety-like behavior were the percent of time spent in the central area. The total number of squares crossed is an indicator of locomotor activity. The open-field was thoroughly cleaned with 70% ethanol and dried with paper towels to remove olfactory cues between each mouse. Tests of depressive-like behavior: The tail suspension test (TST) was carried out as previously described (Moreau et al., 2008a; Steru et al., 1985). Briefly, an adhesive tape was fixed to the mouse tail (distance from the tip of the tail = 2 cm) and hooked to a horizontal ring stand bar placed 30 cm above the 180 floor. The test was conducted for a period of 6 min in a visually isolated area. The apparatus was cleaned thoroughly after each mouse. Mice demonstrated several escape attempts interspersed with immobility periods during which they hung passively and completely motionless. Depressive-like behavior was inferred from increased duration of immobility (Steru et al., 1985). The forced swim test (FST) was conducted as described by Frenois et al (2007). Briefly, each mouse was placed individually in a cylinder (diameter: 16 cm; height: 31 cm) containing 15 cm of water maintained at 25 ± 1°C. The water was changed and the cylinders were cleaned thoroughly between testing sessions. Mice were tested for 6 min and then returned to their home cage. The duration of immobility, swimming and climbing was evaluated during the 5 last min of the test. A mouse was judged to be immobile when it stopped struggling and moved only slowly to remain floating in the water, keeping its head above water. Increased duration of immobility of rodents in the FST has been proposed to reflect a state of helplessness that is reduced by antidepressants (Porsolt, 2000). Measurement of plasma levels of hormones and cytokines: In order to evaluate the consequences of obesity and related comorbidities on hormone levels and peripheral inflammation, leptin, insulin, resistin, Il-1β, IL-6, TNFα and IFNγ were measured in plasma with the mouse adipokine and cytokine LINCOplex kits (Linco research, Inc., St. Charles, MO, USA) following the manufacturer’s instructions as previously described (Moreau et al., 2008b). Plasma corticosterone concentrations were also measured, as an index of HPA axis activity, using an ImmuChem Double Antibody Corticosterone RIA Kit from Diasorin (Antony, France) according to the manufacturer’s instructions (Apter and Eriksson, 2006). All samples were run in duplicate. Reverse transcription and real time PCR: Central inflammation was evaluated in the hippocampus using RT-PCR for cytokines (IL-6, TNFα, IL1β and IFNγ) and IDO. Total RNA from hippocampus samples was extracted with Trizol as previously described (O'Connor et al., 2008). Reverse transcription was performed using oligo dT primers added 2 µg of RNA. The oligo dT primer/RNA mix was then inactivated at 65°C for 5 min and chilled on ice. Reverse transcription was performed at 55°C for 45 min. The reaction was terminated by heat (70°C for 15 min). To minimize interassay variation all RNA samples from a single experimental group were reverse transcribed 181 simultaneously. Resultant first-strand cDNA was amplified by the Taqman Universal PCR Master Mix with sequence-specific primers and the FAM-labeled Taqman MBG probe assay mix (Applied Biosystems). The assay IDs for the target genes in the assay mix were: IL-6 (Mm00446190_m1), IL-1β (Mm00434228_m1), TNFα (Mm00443258_m1), IFNγ (Mm 00801778_m1) and IDO (Mm00492586_m1), and for the house-keeping gene β2 microglobulin (Mm00437762_m1) as previously used (O'Connor et al., 2008). Real time PCR was performed on the ABI Prism 7700 under the following conditions: 50°C for 2 min, 95°C for 10 min, followed by 40-cycles amplification phase of 95°C for 15 sec and 60°C for 1 min. Results were normalized with the β2 microglobulin endogenous control and the relative quantitative evaluation of the amplification products was performed using the comparative threshold cycle method, as described elsewhere (Applied Biosystems user bulletin n°2). Experiment 2: In order to complete results collected in the first experiment, the second one aimed at assessing, in both db/db and db/+ mice, the reactivity of the innate immune system to an acute LPS challenge. Peripheral LPS administration enhances production of proinflammatory cytokines, which are responsible of physiological and behavioral symptoms of sickness (Dantzer et al., 2008). Therefore, we assessed LPS-induced peripheral cytokine production and brain IDO activation, as well as the resultant body weight loss and behavioral alterations in the FST. Mice were injected i.p. with sterile physiological saline or LPS (5 µg/mouse) and were immediately returned to their home cage. Body weight loss was assessed by weighing mice just before the LPS treatment and at 6 and 24 h after, in order to control the efficiency of the response to LPS. Mice were exposed to the FST 23 h after treatment, as described in the first experiment. One hour after completion of the FST session, they were sacrificed by CO2 inhalation. Blood samples were immediately collected and processed following the protocol detailed for the experiment 1. After perfusion with PBS at 4°C via the ascending aorta, brains were rapidly extracted from the skulls and kept at -80°C until IDO assay. Measurement of brain concentrations of KYN and TRP: Brain kynurenine (KYN) and tryptophan (TRP) levels were determined as previously described (Moreau et al., 2005). The KYN/TRP ratio served to assess brain IDO activity. Briefly, brains were homogenized using ice cold potassium 0.14 M KCl, 20 mM phosphate buffer pH 7.0 with an UltraTurrax T25 homogenizer at 1000 rpm. Homogenates were then 182 centrifuged at 14,000 g for 30 min at 4°C. 200 µl of supernatants were precipitated in trichloroacetic acid (2 mM) and then centrifuged twice (15 and 5 min) at 1300 g at 4°C. Supernatants were injected onto a 5-µm C18 HPLC column (Lichrospher, Alltech, Deerfield, IL, USA) at a flow rate of 1.0 ml/min with mobile phase containing 0.1 M ammonium acetate/acetic acid buffer and 5 % acetonitrile (pH 4.65). Levels of KYN were evaluated by UV absorbency at 360 nm. Levels of TRP were detected by fluorescent detector at 285 nm excitation and 365 nm emission wavelengths. Statistical analysis: All results are presented as mean ± SEM and were analyzed using a one-way (strain), a two-way (strain x time) or a three-way (strain x time x treatment) ANOVA followed by a post-hoc pair wise multiple comparison procedure using the Fischer’s LSD method, if the interaction was significant. Results As expected, db/db mice presented a marked increase in food intake (data not shown) compared to db/+ mice and were clearly obese, their body weight being 47 % above db/+ controls (F(1,26) = 220.01, p < .0001). Moreover, the significant increase of plasma levels of leptin (F(1,11) = 266.15, p < .0001) and insulin (F(1,11) = 21.14, p < .001), together with reduced levels of resistin (F(1,11) = 13.41, p < .01), measured in db/db mice compared to their db/+ littermates confirmed the presence of a morbid obesity, with diabetic complications (data not shown). These mice represent therefore a useful model to assess the consequences of morbid obesity on behavioral reactivity and inflammatory status. 1) Obese db/db mice present cognitive deficit and anxiety-like behavior, but no depressivelike behavior In order to thoroughly characterize the profile of behavioral reactivity of morbidly obese db/db mice compared to their db/+ littermates, they were exposed to different wellestablished and validated behavioral tests aiming at evaluating cognitive dysfunction (Ymaze), anxiety-like behavior (EPM and OF) and depressive-like behavior (TST and FST). Abilities of both db/db and db/+ mice to recognize novelty were tested in the Y maze apparatus that requires cognitive processes involving the hippocampus (Conrad et al., 1996). 183 In accordance with the experimental procedure described for this test (Dellu et al., 2000), mice were submitted to the Y-maze with an inter-trial interval (ITI) of 2 min. During the first session of free exploration of two arms out of three, the number of visits and the time spent in each open arm did not differ (data not shown), indicating that there was no impairment of spontaneous alternation and exploration in db/db mice. During the second session (retrieval phase) carried out 2 min later, discrimination of the new arm was evaluated by measuring the duration of visits of this arm compared to the time spent exploring the previously seen arms. An index of recognition was calculated as the ratio of the time spent in [the novel arm x 100 / (novel + adjacent) arms]. A significant difference between this index of recognition and the chance level (50 %) attests of novel arm recognition. In the present experiment, db/db mice were not able to discriminate the new arm from the already observed arms, as shown by their index of recognition which was not different from chance (Fig. 1). On the contrary, db/+ mice clearly recognized the new arm, their recognition index being significantly different from chance (t(11) = 187, p< .001). Figure 1: Dinel A.L. et al, Evaluation of behavioral performances in Y maze test. 80 db/+ Recognition index % 70 *** db/db 60 50 Random choice 40 30 20 10 0 The EPM is a very classical test of anxiety-like behavior based on the exposure of rodents to unfamiliar and therefore anxiogenic aversive places, as represented by the open arms of the maze (Belzung and Griebel, 2001). Although both db/db and db/+ mice spent the same proportion of time exploring the closed and non-anxiogenic arms (F(1,23) = 220.01, p> 184 .1), db/db mice spent less time in the open anxiogenic arms (F(1,23) = 20.37, p< .001) (Fig. 2B). Since the general level of locomotor activity did not differ between both groups, as manifested by similar number of total arm entries (F(1,23) = 2.85, p> .1), db/db mice clearly exhibited a typical anxiety-like behavior in the EPM. As a further confirmation that db/db mice exhibited greater anxiety, both db/db and db/+ mice were subjected to the OF, another test allowing to assess anxiety-like behavior by measuring the time spent in the central area of the OF (Prut and Belzung, 2003). Whereas no significant differences of exploration of this anxiogenic area were found between db/db and db/+ mice during the first 5 min of the test (a period during which stress response to novelty can interfere with anxiety) (Fig. 2A), db/db mice clearly spent less time in the center of the OF over the 5 last min of the test than db/+ mice (F(1,23) = 6.53, p< .05). Moreover, when we analyzed behavior of mice during the course of the entire 10-min session by measuring the number of entries in the center of the arena, we found that this number progressively increased over time in db/+ mice (time: F(1,99) = 4.72, p< .001) (Fig. 2A). By contrast, it was particularly low in db/db mice during the first few minutes and remained unchanged during the 10-min session. Importantly, our results are not likely to be caused by a decrease in general locomotor activity of db/db mice since there is no difference in total movement time between both groups (F(1,23) = 7.79, p> .1). Thus, results obtained from the EMP and OF paradigms both demonstrated greater anxiety-like behavior in db/db mice. In the TST and the FST, two classical tests of depressive-like behavior, an increased duration of immobility is used as an index of depressive-like behavior (Moreau et al., 2008a). As shown in Fig. 2C, both groups spent the same amount of time immobile in the TST (F(1,23) = 1.65, p> .1). Importantly, this result was confirmed in the FST, since both db/db and db/+ mice exhibited similar behavioral reactivity in this test (data not shown). Taken together, these results show that cognitive dysfunction, anxiety-like behavior, but not depressive-like behavior, were found in diabetic obese db/db mice in basal conditions. 185 Figure 2: Dinel A.L. et al, Evaluation of mood disorders in OF, EMP and TST. A: Open Field Time (s) 60 * db/+ db/db a ** ** * 50 4 3,5 * * 3 2,5 40 b 30 2 1,5 20 1 10 0,5 0 0 First 5 min Last 5 min 1 2 3 4 5 c db/+ db/db 160 Time of immobility (s) c 250 Time (s) 8 9 10 C: Tail Suspension Test 300 200 150 50 7 Time (min) B: Elevated Plus Maze 100 6 Number of entry in center area 70 a b db/+ db/db 140 120 100 80 60 40 20 0 0 Open arm Closed arm 2) Altered profile of behavioral reactivity observed in db/db mice is associated with peripheral and brain inflammation In order to determine whether the impaired profile of behavioral reactivity observed in db/db mice was associated with inflammation, we measured in both strains peripheral levels and brain expression of inflammation markers. Mice from db/db strain presented a peripheral inflammation, as manifested by exacerbated plasma production of IL-6 (F(1,23) = 7.03, p< .05) and IFNγ (F(1,23) = 3.72, p< .05) (data not shown). On the contrary, IL-1β levels were undetectable whatever the group, whereas basal levels of TNFα were detectable but similar in both strains (data not shown). Interestingly, this peripheral inflammation was associated with neuroinflammation, as shown by the elevated mRNA expression of IL-6 (F(1,11) = 7.05, p< .05), IL-1β (F(1,11) = 6.82, p< .05) and TNFα (F(1,11) = 7.43, p< .05) observed in the hippocampus of db/db mice compared to lean animals (Fig. 3A-C). On the contrary, hippocampus mRNA expression of IFNγ and IDO was undetectable in both groups (data not shown). In summary, db/db mice 186 exhibited a basal peripheral and central inflammation mostly affecting IL-6 that was associated with alterations of cognitive performances and anxiety-like behavior, but not depressive-like behavior. Figure 3: Dinel A.L. et al, Hippocampic cytokine mRNA in db/db and db/+ mice. B A 2,5 2 1,5 1 0,5 2 1,5 1 0,5 0 0 db/+ db/db 2,5 * * TNFα ∆ mRNA * IL-1β β ∆ mRNA IL-6 ∆ mRNA 2,5 C 2 1,5 1 0,5 0 4) Obese db/db mice present altered behavioral and physiological reactivity to systemic LPS injection Severe obesity has been associated with increased susceptibility to infection (Amar et al., 2007a, b). Similarly, db/db mice have been shown to exhibit increased and prolonged sickness behavior in response to LPS (O’Connor et al., 2005). We have recently shown in aged mice that protracted sickness behavior can elicit exacerbation of the depressive-like behavioral changes observed in the FST from 24 h after LPS treatment (Godbout et al., 2008). Altered susceptibility to infection may therefore potentially facilitate development of inflammationrelated comorbidities, including depressive symptomatology. Taken together, these findings prompted us to measure the effects of LPS treatment on behavioral reactivity in the FST and its neurobiochemical correlates in both db/db and db/+ mice. In order to verify the effectiveness of LPS treatment, we first measured in saline- and LPS-treated mice the time course of body weight loss compared to pre-treatment body weight (Fig. 4). As expected, LPS induced a progressive and sustained decrease in body weight in all treated mice compared to saline-treated controls (treatment: F(1,23) = 36.13, p< .0001; strain: F(1,23) = 8.12, p< .01; time x treatment: F(1,23) = 12.98, p< .01). These results confirm therefore the full efficacy of LPS in the present study in both db/db and db/+ mice. 187 Figure 4: Dinel A.L. et al, Effect of LPS on body weight change. 1,00 db/+ - Sal a' Body weight change 0,50 db/+ - LPS a' db/db - Sal 0,00 db/db - LPS a -0,50 a c -1,00 c' b -1,50 -2,00 b' -2,50 6h 24h In accordance with the results found in the first experiment, saline-treated db/db mice presented higher plasma levels of IL-6 (strain: F(1,23) = 7.03, p< .05) and IFNγ (strain: F(1,23) = 3.73, p= .06), but similar levels of TNFα, than db/+ mice (Table 1). Moreover, no circulating IL-1β was detected in unstimulated conditions whatever the strain (data not shown). By the time of sacrifice 24 h after treatment, the increase of plasma levels of proinflammatory cytokines classically observed in the few hours post-LPS (Dantzer, 2001) was not anymore visible for IL-1β that was undetectable in all groups (data not shown). Similarly, plasma IL-6 levels were not significantly increased 24 h post-LPS treatment (F(1,23) = .93, p> .1), although they were still higher in db/db than db/+ mice (Table 1). On the contrary, LPS-induced increase of plasma TNFα concentrations was significant in both db/db and db/+ mice (treatment: F(1,23) = 8.39, p< .01), whereas the increase of IFNγ was only significant in db/+ mice (treatment: F(1,23) = 11.9, p< .01; treatment x strain: F(1,23) = 10.44, p< .01) (Table 1). Concerning metabolic mediators (Table 1), circulating levels of leptin and resistin were again significantly different between db/db and db/+ mice in basal conditions (p< .001). Moreover, they were selectively increased by LPS in db/db mice (treatment x strain: F(1,23) = 7.06, p< .05 and F(1,23) = 6.32, p< .05 respectively). Plasma insulin levels were significantly higher in db/db mice (strain : F(1,23) = 70.36, p< .0001) as 188 shown in the first experiment, irrespective of treatment. Similarly, circulating levels of corticosterone were drastically increased in db/db compared to db/+ mice (strain: F(1,23) = 17.87, p< .001), independently of their treatment. Although the main effect of LPS treatment was not significant (F(1,23) = 0.7, p> .1), LPS-treated db/+ mice exhibited higher plasma concentrations of corticosterone than their saline-treated controls (F(1,23) = 17.87, p< .01), whereas no difference was observed between saline- and LPS-treated db/db mice. In summary, the whole peripheral markers of inflammation, including in that case corticosterone, that are already increased in db/db mice in basal unstimulated conditions are not affected by the additional LPS challenge. On the contrary, the metabolic mediators leptin and resistin are still responsive to this innate immune challenge. Table 1: Dinel A.L. et al, Plasma adipokines and cytokines levels measured 24 h after LPS injection. db/+ Plasma db/db saline LPS saline LPS Insulin (pg/ml) 971,1 ± 251 a 626,1 ± 102 a 4184,7 ± 393 b 3738,9 ± 582 b Leptin (pg/ml) 2625,0 ± 332 a 1719,0 ± 356 a 18458,0 ± 988 b 23546,0 ± 1935 c Resistin (pg/ml) 1988,6 ± 112,1 a 1620,3 ± 272,1 a,b 1265,7 ± 94,9 b 1975,8 ± 276,1 a 11,7 ± 5,3 a 48,8 ± 10,1 b 115,6 ± 53,3 c 155,2 ± 60,2 c TNFα (pg/ml) 4,2 ± 0,7 a 8,6 ± 1,8 b 3,4 ± 0,7 a 12,2 ± 3,8 b IFNγ (pg/ml) 0,4 ± 0,15 a 2,8 ± 0,76 b 0,9 ± 0,33 c 0,9 ± 0,3 c 26,2 ± 6,14 a 66,1 ± 8,94 b 148,2 ± 38,61 c 150,5 ± 31,82 c IL-6 (pg/ml) Corticosterone (ng/ml) In the FST, LPS treatment induced a significant increase of the duration of immobility in db/+ mice compared to their respective saline controls (F(1,23) = 4.8, p< .05) (Fig. 5A). On the contrary, this treatment did not alter the duration of immobility performed by db/db mice, suggesting the lack of LPS-induced depressive-like behavior in these mice. We have recently demonstrated that IDO activation induced by LPS mediates development of depressive-like behavior in the FST (O’Connor et al 2008). An interference of obesity and/or related comorbidities, particularly diabetes, with these inductions may therefore explain the altered effect of LPS on behavioral reactivity of db/db mice to the FST exposure. In order to test this possibility, LPS-induced brain IDO activity were measured 1 h after completion of the FST. Brain IDO activity was assessed by calculation of the KYN/TRP ratio as previously 189 described (André et al 2008). The ANOVA analysis reveals a main effect of strain (F(1,23) = 84.56, p< .0001) and treatment (F(1,23) = 84.56, p< .0001), with a significant interaction between both factors (strain x treatment: F(1,23) = 16.50, p< .001). Basal brain IDO activity was similar in both strains (Fig. 5B). As expected, LPS treatment induced a significant increase of brain IDO activity in all treated mice, but this induction was significantly attenuated in db/db mice compared to db/+ mice (LPS: db/+ vs. db/db, F(1,23) = 16.50, p< .001). In conclusion, the lack of LPS-induced depressive-like behavior exhibited by db/db mice was associated with a selective abolishment of the increase of peripheral inflammation and HPA axis activity, as well as attenuated brain IDO activation. Figure 5: Dinel A.L. et al, Effect of LPS on behavioral performances in FST and on IDO activity. A: Forced Swim Test db/+ - Sal db/+ - LPS db/db - Sal db/db - LPS 250 Time of immobility (s) b 200 a,b 150 a,b a 100 50 0 B: IDO activity db/+ - Sal db/+ - LPS db/db - Sal db/db - LPS 0,35 b Brain KYN/TRP 0,30 0,25 0,20 c 0,15 0,10 a a 0,05 0,00 Discussion Although mounting evidence suggests a functional link between inflammation and development of mood and cognitive disorders in many medical illnesses that share chronic inflammation as a common denominator (Raison et al., 2006), the potential involvement of a similar link in the case of obesity still remains elusive (Brandacher et al., 2007). Similarly, 190 diabetes that has been shown to affect innate immune system reactivity (Shah and Hux, 2003) is also an important risk factor for mood disorders (Skilton et al., 2007) and cognitive dysfunctions (Messier, 2005). In the present study, the use of a murine model of morbid obesity that is associated with important comorbidities, particularly insulin resistance and diabetes, provides for the first time revealing behavioral and neurochemical data consistent with an association between metabolic and inflammatory mediators, cognitive dysfunctions and anxiety-like behavior. More specifically, diabetic obese db/db mice that present an inherited predisposition to severe obesity-associated metabolic syndrome (Chen et al., 1996) show here increased peripheral and brain cytokine production, together with anxiety-like behavior and alterations of immediate novelty recognition. The importance of this study is that they are the first to report an extensive description of the behavioral profile of these obese diabetic mice, assessed in complementary and well-validated behavioral tests, with the concomitant measure of neurobiochemical changes. These findings extend further those showing that db/db mice have impaired recovery from LPS-induced initiation of the innate immune response (O'Connor et al., 2005; O'Connor et al., 2007; Sherry et al., 2007). Importantly, our results show that basal changes of inflammatory status and/or diabetesrelated metabolic impairments already induce behavioral alterations. This findings are consistent with what is reported in humans suffering from severe forms of obesity (Cancello and Clement, 2006; Pickup et al., 2000). Morbid obesity is defined in humans by a huge increase of body mass index, associated with development of comorbid pathologies collectively referred to as metabolic syndrome (Kopelman, 2004). Although genetic alterations only account for a small fraction of obesity in humans (Gibson et al., 2004), the present findings show that db/db mice provides a very useful rodent model to study the neurobiological basis of mood and cognitive disorders in the context of morbid obesity with comorbid complications. The temporal association between the occurrence of behavioral alterations and the increase in brain and peripheral expression of inflammatory markers that is observed in the present study can be interpreted to suggest that these markers probably participate in the development of these specific behavioral alterations. In the present study, genetically obese and diabetic mice show altered cognitive abilities, as assessed in a hippocampus-dependant memory test, the Y-maze. The two-trial Y-maze task is a specific and sensitive test of spatial recognition memory in rodents (Dellu et al., 2000). It is based on the innate tendency of rodents to explore novel environments (Dellu et al., 2000). This paradigm does not require the learning of a rule, making it useful for studying memory 191 in rodents (Dellu et al., 1992). Given that this task is based on exploration of novelty, mice were first tested for novelty exploration, with a short ITI of 2 min. Interestingly, db/db mice already showed, in these conditions, significantly lower novel arm preference, as assessed by the recognition index, whereas a diet-induced model of moderate obesity only alters performances of mice in the Y-maze when the test conditions are much more stringent (ITI of 30 min) (Dinel et al, unpublished data). These data confirm clinical studies reporting a linear relationship between increase in body mass index and progressive development of cognitive disorders (Cournot et al., 2006). It is noteworthy that db/db mice also presented anxiety-like behavior in two classical and well-established tests of anxiety-like behavior. The EPM, based on a procedure used by Montgomery (Montgomery, 1955), showed that exposure to an elevated open alley evoked an approach-avoid conflict and that mice prefer the closed arms to the open ones. He postulated that this preference reflects an aversion towards the open arms likely caused by fear and anxiety. Consequently, the measure of open arm avoidance remains the primary sign of anxiety, while total and closed arms entries reflect general motor activity (Hilber et al., 2004). Therefore, mice spending less time in the open arms of the EPM, as shown here for db/db mice, are more anxious than those which do not avoid open arms. These results agree with clinical studies showing that prevalence of anxiety is obese subjects is much higher than in lean subjects (Becker et al., 2001). Both behavioral alterations were associated with increased peripheral secretion of IL-6 and brain expression of IL-6, TNFα and IL-1β, as found in the hippocampus, a key structure in cognitive processes (Winters et al., 2008) and that plays also an important role in the emotional reactivity. A clear relationship has been reported between neuroinflammation and development of impaired cognitive abilities (Noble et al., 2007). It has been recently shown that LPS-induced neuroinflammation participate in the development of cognitive disorders observed in Alzheimer diseases (Lee et al., 2008). Moreover, several experiments have shown that brain cytokines can alter synaptic plasticity, particularly in the hippocampus (Lynch, 1998), with obvious consequences on cognitive performances. Similar relationships have been reported between anxiety and inflammation (Capuron et al., 2001; Yirmiya et al., 2000). Although the causal role of increased neuroinflammation reported in db/db mice in development of their cognitive and anxiety-like disorders has not been directly assessed in the present study, the whole results obtained clearly support this hypothesis. 192 In addition to cytokines, other circulating factors also increased in basal conditions in db/db mice may play a key role in their cognitive and anxiety-like alterations. Db/db mice presented high basal levels of corticosterone. This result is confirmed by other findings obtained in genetically obese mice (Naeser, 1973) and in obese patients showing that a relationship exists between visceral obesity and hyperactivity of the HPA axis (Bjorntorp and Rosmond, 2000; Duclos et al., 1999; Pasquali et al., 1996; Rosmond and Bjorntorp, 1998). Leptin has been shown to inhibit glucocorticoid secretion. However, high levels of leptin are associated with high levels of glucocorticoid in obesity models. The lack of leptin receptor in db/db mice and the resulting leptino-resistance (Tataranni et al., 1996), could explain this hypersecretion of corticosterone. As shown by many studies, glucocorticoids are implicated in stress, cognition and anxiety disorders (Strohle and Holsboer, 2003). Reciprocal interactions exist between the amygdala and the hippocampus and the stress system, which stimulates these elements and is at its turn regulated by them. It has been shown that cytokines and other circulating mediators of inflammation are potent activators of the central stress response, constituting the afferent limb of a feedback loop through which the immune/inflammatory system and the central nervous system communicate (Tsigos and Chrousos, 2002). TNFα, IL1β and IL-6 can cause stimulation of the HPA axis individually, or synergistically (Tsigos et al., 1997). There is evidence to suggest that IL-6, the main endocrine cytokine, plays the major role in the immune stimulation of the HPA axis, especially in chronic inflammatory state (Tsigos and Chrousos, 2002). IL-6 and insulin are inhibitors of corticosterone-binding globulin (CBG) and their increase induces an elevation of free plasmatic corticosterone (Barat et al., 2008). Another important neurobiological intermediate between morbid obesity and alterations of behavioral reactivity may be the elevated levels of insulin since it has recently been shown that intraperitoneal injection of insulin leads, in mice, to the development of cognitive alterations (Akanmu et al., 2008). Although cognitive dysfunctions and anxiety-like behavior were associated with neuroinflammation in db/db mice, no depressive-like behavior has been detected either in basal conditions or after an LPS challenge, whereas a classical increase of immobility was observed in db/+ mice, as previously shown in normal mice (Frenois et al., 2007; O’Connor et al., 2008). This result suggests that cognition and anxiety on one hand, and depression on the other hand, may be underlined by distinct neurobiological mechanisms in a context of inflammation. We have recently shown that LPS-induced depressive like behavior is mediated by activation of the tryptophan-catabolizing enzyme IDO (O'Connor et al., 2008). The present 193 results associating the lack of induction of depressive-like behavior in the FST with significantly reduced brain IDO activation agree with these previously published data. Moreover, these results also suggest that, on the contrary, the role of this enzyme in the induction of cognitive disorders and anxiety-like behavior in the context of a morbid obesity, may be probably not much important. In conclusion, the data presented in the present study showed that morbid obesity induces, in addition of a peripheral inflammation, a neuroinflammation as manifested by amplified brain IL-6, IL-1β and TNFα production. Moreover morbid obese mice present anxiety-like symptoms and develop important cognitive disorders since their short-term memory was affected. Furthermore, although only correlative and with the limitation inherent to the measurement of neurobehavioral consequences of obesity in rodents, the present findings support a role or the neuroinflammation observed in the hippocampus in the development of anxiety and cognitive disorders. These results may stimulate important considerations regarding the role of biological systems in mood and cognitive disorders associated with obesity. Acknowledgment ALD was supported by a doctoral fellowship from the Institut Danone. The authors thank Dr. F Dellu for her advices about the Y maze test. 194 REFERENCES Akanmu, M.A., Nwabudike, N.L., Ilesanmi, O.R., 2008. Analgesic, learning and memory and anxiolytic effects of insulin in mice. Behavioural brain research. Amar, S., Zhou, Q., Shaik-Dasthagirisaheb, Y., Leeman, S., 2007a. Diet-induced obesity in mice causes changes in immune responses and bone loss manifested by bacterial challenge. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 104, 20466-20471. Apter, S.J., Eriksson, C.J., 2006. The role of social isolation in the effects of alcohol on corticosterone and testosterone levels of alcohol-preferring and non-preferring rats. Alcohol and alcoholism (Oxford, Oxfordshire) 41, 33-38. Baran, H., Jellinger, K., Deecke, L., 1999. Kynurenine metabolism in Alzheimer's disease. J Neural Transm 106, 165-181. Barat, P., Duclos, M., Moisan, M.P., Mormede, P., 2008. [Involvement of hypothalamopituitary adrenal axis in abdominal obesity]. Arch Pediatr 15, 170-178. Becker, E.S., Margraf, J., Turke, V., Soeder, U., Neumer, S., 2001. Obesity and mental illness in a representative sample of young women. Int J Obes Relat Metab Disord 25 Suppl 1, S5-9. Belzung, C., Griebel, G., 2001. Measuring normal and pathological anxiety-like behaviour in mice: a review. Behavioural brain research 125, 141-149. Bjorntorp, P., Rosmond, R., 2000. Obesity and cortisol. Nutrition (Burbank, Los Angeles County, Calif 16, 924936. Braddon, F.E., Rodgers, B., Wadsworth, M.E., Davies, J.M., 1986. Onset of obesity in a 36 year birth cohort study. British medical journal (Clinical research ed 293, 299-303. Brandacher, G., Hoeller, E., Fuchs, D., Weiss, H.G., 2007. Chronic immune activation underlies morbid obesity: is IDO a key player? Current drug metabolism 8, 289-295. Cancello, R., Clement, K., 2006. Is obesity an inflammatory illness? Role of low-grade inflammation and macrophage infiltration in human white adipose tissue. Bjog 113, 1141-1147. Capuron, L., Ravaud, A., Dantzer, R., 2001. Timing and specificity of the cognitive changes induced by interleukin-2 and interferon-alpha treatments in cancer patients. Psychosomatic medicine 63, 376-386. Carroll, L., Voisey, J., van Daal, A., 2004. Mouse models of obesity. Clinics in dermatology 22, 345-349. 195 Castanon, N., Medina, C., Mormede, C., Dantzer, R., 2004. Chronic administration of tianeptine balances lipopolysaccharide-induced expression of cytokines in the spleen and hypothalamus of rats. Psychoneuroendocrinology 29, 778-790. Conrad, C.D., Galea, L.A., Kuroda, Y., McEwen, B.S., 1996. Chronic stress impairs rat spatial memory on the Y maze, and this effect is blocked by tianeptine pretreatment. Behavioral neuroscience 110, 1321-1334. Cournot, M., Marquie, J.C., Ansiau, D., Martinaud, C., Fonds, H., Ferrieres, J., Ruidavets, J.B., 2006. Relation between body mass index and cognitive function in healthy middle-aged men and women. Neurology 67, 12081214. Cunningham, C., Campion, S., Lunnon, K., Murray, C.L., Woods, J.F., Deacon, R.M., Rawlins, J.N., Perry, V.H., 2008. Systemic Inflammation Induces Acute Behavioral and Cognitive Changes and Accelerates Neurodegenerative Disease. Biological psychiatry. Dandona, P., Aljada, A., Bandyopadhyay, A., 2004. Inflammation: the link between insulin resistance, obesity and diabetes. Trends in immunology 25, 4-7. Dantzer, R., 2001. Cytokine-induced sickness behavior: where do we stand? Brain, behavior, and immunity 15, 7-24. Dantzer, R., O'Connor, J.C., Freund, G.G., Johnson, R.W., Kelley, K.W., 2008. From inflammation to sickness and depression: when the immune system subjugates the brain. Nat Rev Neurosci 9, 46-56. De Souza, C.T., Araujo, E.P., Bordin, S., Ashimine, R., Zollner, R.L., Boschero, A.C., Saad, M.J., Velloso, L.A., 2005. Consumption of a fat-rich diet activates a proinflammatory response and induces insulin resistance in the hypothalamus. Endocrinology 146, 4192-4199. Dellu, F., Contarino, A., Simon, H., Koob, G.F., Gold, L.H., 2000. Genetic differences in response to novelty and spatial memory using a two-trial recognition task in mice. Neurobiol Learn Mem 73, 31-48. Dellu, F., Mayo, W., Cherkaoui, J., Le Moal, M., Simon, H., 1992. A two-trial memory task with automated recording: study in young and aged rats. Brain Res 588, 132-139. Duclos, M., Corcuff, J.B., Etcheverry, N., Rashedi, M., Tabarin, A., Roger, P., 1999. Abdominal obesity increases overnight cortisol excretion. Journal of endocrinological investigation 22, 465-471. Dunn, A.J., 1988a. Stress-related changes in cerebral catecholamine and indoleamine metabolism: lack of effect of adrenalectomy and corticosterone. J Neurochem 51, 406-412. 196 Dunn, A.J., 1988b. Systemic interleukin-1 administration stimulates hypothalamic norepinephrine metabolism parallelling the increased plasma corticosterone. Life sciences 43, 429-435. Friedman, J.M., Halaas, J.L., 1998. Leptin and the regulation of body weight in mammals. Nature 395, 763-770. Gibson, W.T., Farooqi, I.S., Moreau, M., DePaoli, A.M., Lawrence, E., O'Rahilly, S., Trussell, R.A., 2004. Congenital leptin deficiency due to homozygosity for the Delta133G mutation: report of another case and evaluation of response to four years of leptin therapy. J. Clin. Endocrinol. Metab 89, 4821-4826. Glowinski, J., Axelrod, J., Iversen, L.L., 1966. Regional studies of catecholamines in the rat brain. IV. Effects of drugs on the disposition and metabolism of H3-norepinephrine and H3-dopamine. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics 153, 30-41. Glowinski, J., Iversen, L., 1966a. Regional studies of catecholamines in the rat brain. 3. Subcellullar distribution of endogenous and exogenous catecholamines in various brain regions. Biochemical pharmacology 15, 977-987. Godbout, J.P., Moreau, M., Lestage, J., Chen, J., Sparkman, N.L., J, O.C., Castanon, N., Kelley, K.W., Dantzer, R., Johnson, R.W., 2008. Aging exacerbates depressive-like behavior in mice in response to activation of the peripheral innate immune system. Neuropsychopharmacology 33, 2341-2351. Heyes, M.P., Rubinow, D., Lane, C., Markey, S.P., 1989. Cerebrospinal fluid quinolinic acid concentrations are increased in acquired immune deficiency syndrome. Annals of neurology 26, 275-277. Hilber, P., Lorivel, T., Delarue, C., Caston, J., 2004. Stress and anxious-related behaviors in Lurcher mutant mice. Brain research 1003, 108-112. Kopelman, P., 2004. The metabolic syndrome as a clinical problem. Nestle Nutrition workshop series 9, 77-88; discussion 88-92. Kopelman, P.G., 2000. Obesity as a medical problem. Nature 404, 635-643. Lacosta, S., Merali, Z., Anisman, H., 1998. Influence of interleukin-1beta on exploratory behaviors, plasma ACTH, corticosterone, and central biogenic amines in mice. Psychopharmacology 137, 351-361. Laye, S., Parnet, P., Goujon, E., Dantzer, R., 1994. Peripheral administration of lipopolysaccharide induces the expression of cytokine transcripts in the brain and pituitary of mice. Brain Res Mol Brain Res 27, 157-162. 197 Lee, J.W., Lee, Y.K., Yuk, D.Y., Choi, D.Y., Ban, S.B., Oh, K.W., Hong, J.T., 2008. Neuro-inflammation induced by lipopolysaccharide causes cognitive impairment through enhancement of beta-amyloid generation. Journal of neuroinflammation 5, 37. Lestage, J., Verrier, D., Palin, K., Dantzer, R., 2002. The enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase is induced in the mouse brain in response to peripheral administration of lipopolysaccharide and superantigen. Brain, behavior, and immunity 16, 596-601. Lynch, M.A., 1998. Age-related impairment in long-term potentiation in hippocampus: a role for the cytokine, interleukin-1 beta? Progress in neurobiology 56, 571-589. Montgomery, K.C., 1955. The relation between fear induced by novel stimulation and exploratory behavior. Journal of comparative and physiological psychology 48, 254-260. Mora, S., Pessin, J.E., 2002. An adipocentric view of signaling and intracellular trafficking. Diabetes/metabolism research and reviews 18, 345-356. Moreau, M., Andre, C., O'Connor, J.C., Dumich, S.A., Woods, J.A., Kelley, K.W., Dantzer, R., Lestage, J., Castanon, N., 2008a. Inoculation of Bacillus Calmette-Guerin to mice induces an acute episode of sickness behavior followed by chronic depressive-like behavior. Brain, behavior, and immunity 22, 1087-1095. Moreau, M., Lestage, J., Verrier, D., Mormede, C., Kelley, K.W., Dantzer, R., Castanon, N., 2005. Bacille Calmette-Guerin inoculation induces chronic activation of peripheral and brain indoleamine 2,3-dioxygenase in mice. J Infect Dis 192, 537-544. Naeser, P., 1973. Effects of adrenalectomy on the obese-hyperglycemic syndrome in mice (gene symbol ob). Diabetologia 9, 376-379. Noble, F., Rubira, E., Boulanouar, M., Palmier, B., Plotkine, M., Warnet, J.M., Marchand-Leroux, C., Massicot, F., 2007. Acute systemic inflammation induces central mitochondrial damage and mnesic deficit in adult Swiss mice. Neuroscience letters 424, 106-110. O'Connor, J.C., Lawson, M.A., Andre, C., Moreau, M., Lestage, J., Castanon, N., Kelley, K.W., Dantzer, R., 2008. Lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior is mediated by indoleamine 2,3-dioxygenase activation in mice. Molecular psychiatry. O'Connor, J.C., Satpathy, A., Hartman, M.E., Horvath, E.M., Kelley, K.W., Dantzer, R., Johnson, R.W., Freund, G.G., 2005. IL-1beta-mediated innate immunity is amplified in the db/db mouse model of type 2 diabetes. J Immunol 174, 4991-4997. 198 Pasquali, R., Anconetani, B., Chattat, R., Biscotti, M., Spinucci, G., Casimirri, F., Vicennati, V., Carcello, A., Labate, A.M., 1996. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity and its relationship to the autonomic nervous system in women with visceral and subcutaneous obesity: effects of the corticotropin-releasing factor/argininevasopressin test and of stress. Metabolism: clinical and experimental 45, 351-356. Pellow, S., Chopin, P., File, S.E., Briley, M., 1985. Validation of open:closed arm entries in an elevated plusmaze as a measure of anxiety in the rat. Journal of neuroscience methods 14, 149-167. Perry, V.H., Cunningham, C., Holmes, C., 2007. Systemic infections and inflammation affect chronic neurodegeneration. Nature reviews 7, 161-167. Pickup, J.C., Chusney, G.D., Thomas, S.M., Burt, D., 2000. Plasma interleukin-6, tumour necrosis factor alpha and blood cytokine production in type 2 diabetes. Life sciences 67, 291-300. Pomara, N., Greenberg, W.M., Branford, M.D., Doraiswamy, P.M., 2003. Therapeutic implications of HPA axis abnormalities in Alzheimer's disease: review and update. Psychopharmacology bulletin 37, 120-134. Porsolt, R.D., 2000. Animal models of depression: utility for transgenic research. Rev Neurosci 11, 53-58. Prut, L., Belzung, C., 2003. The open field as a paradigm to measure the effects of drugs on anxiety-like behaviors: a review. European journal of pharmacology 463, 3-33. Rivest, S., 2003. Molecular insights on the cerebral innate immune system. Brain, behavior, and immunity 17, 13-19. Rosmond, R., Bjorntorp, P., 1998. The interactions between hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity, testosterone, insulin-like growth factor I and abdominal obesity with metabolism and blood pressure in men. Int J Obes Relat Metab Disord 22, 1184-1196. Ryden, A., Sullivan, M., Torgerson, J.S., Karlsson, J., Lindroos, A.K., Taft, C., 2004. A comparative controlled study of personality in severe obesity: a 2-y follow-up after intervention. Int J Obes Relat Metab Disord 28, 1485-1493. Steru, L., Chermat, R., Thierry, B., Simon, P., 1985. The tail suspension test: a new method for screening antidepressants in mice. Psychopharmacology 85, 367-370. Strohle, A., Holsboer, F., 2003. Stress responsive neurohormones in depression and anxiety. Pharmacopsychiatry 36 Suppl 3, S207-214. Tataranni, P.A., Larson, D.E., Snitker, S., Young, J.B., Flatt, J.P., Ravussin, E., 1996. Effects of glucocorticoids on energy metabolism and food intake in humans. The American journal of physiology 271, E317-325. 199 Toni, R., Malaguti, A., Castorina, S., Roti, E., Lechan, R.M., 2004. New paradigms in neuroendocrinology: relationships between obesity, systemic inflammation and the neuroendocrine system. Journal of endocrinological investigation 27, 182-186. Tsigos, C., Chrousos, G.P., 2002. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis, neuroendocrine factors and stress. Journal of psychosomatic research 53, 865-871. Tsigos, C., Papanicolaou, D.A., Defensor, R., Mitsiadis, C.S., Kyrou, I., Chrousos, G.P., 1997. Dose effects of recombinant human interleukin-6 on pituitary hormone secretion and energy expenditure. Neuroendocrinology 66, 54-62. Vachharajani, V., Russell, J.M., Scott, K.L., Conrad, S., Stokes, K.Y., Tallam, L., Hall, J., Granger, D.N., 2005. Obesity exacerbates sepsis-induced inflammation and microvascular dysfunction in mouse brain. Microcirculation 12, 183-194. Wadden, T.A., Butryn, M.L., Sarwer, D.B., Fabricatore, A.N., Crerand, C.E., Lipschutz, P.E., Faulconbridge, L., Raper, S.E., Williams, N.N., 2006. Comparison of psychosocial status in treatment-seeking women with class III vs. class I-II obesity. Obesity (Silver Spring, Md 14 Suppl 2, 90S-98S. Winters, B.D., Saksida, L.M., Bussey, T.J., 2008. Object recognition memory: neurobiological mechanisms of encoding, consolidation and retrieval. Neuroscience and biobehavioral reviews 32, 1055-1070. Yirmiya, R., Pollak, Y., Morag, M., Reichenberg, A., Barak, O., Avitsur, R., Shavit, Y., Ovadia, H., Weidenfeld, J., Morag, A., Newman, M.E., Pollmacher, T., 2000. Illness, cytokines, and depression. Annals of the New York Academy of Sciences 917, 478-487. 200 LEGENDS Figure 1: Evaluation of cognitive disorders in Y maze test. Index of recognition of novelty after a 2min ITI. Data are represented as means ± SEM (n=12). ***, p<0.001, each group is compared to hazard (0.5) Figure 2: Mood disorders were evaluated in db/db mice. (A) In the OF, db/db mice explore less the center of the field than db/+ mice. First graph represent time of exploration of center area during the first 5 min and the last 5 min. Second graph represent number of entry in center area of db/db mice compared to db/+ mioce. Data are represented as means ± SEM (n=12). Means with different letters are significantly different from each other. (B) In the EPM, db/db mice present an high anxiety level as shown by the anxiety index. Data are represented as means ± SEM (n=12). Means with different letters are significantly different from each other. (C) In the TST, there is no significative difference of immobility between both group Figure 3: Hippocampic cytokines mRNA in db/db and db/+ mice. Bars represent means ± SEM (n=6). (A) IL-6 mRNA expression. * p<0.05 (B) IL-1β mRNA expression. * p<0.05 (C) TNFα mRNA expression. * p<0.05 Figure 4: Effect of LPS (5µg/mouse) in body weight measured 24 h after injection. Data represent means ± SEM (n=6). Means with different letters are significantly different from each other. Figure 5: (A) Behavioral reactivity in the forced swim test (FST) measured 24 h after LPS (5µg/mouse) in db/db and db/+ mice. (B) Brain IDO activity assessed by KYN/TRP ratio. Bars represent means ± SEM (n=6). Means with different letters are significantly different from each other. Table 1: Plasma adipokines and cytokines levels measured 24 h after LPS (5µg/mouse) or saline injection in db/db and db/+ mice. Values represent means ± SEM (n=6). 201 202 Discussion générale 203 204 Synthèse des principaux résultats De nombreuses études menées chez l’homme ont montré que l’obésité est associée à un état inflammatoire chronique caractérisé par une augmentation de la sécrétion de nombreuses molécules dont la leptine et des cytokines inflammatoires comme le TNF-α et l’IL-6 (Clement et al., 2004). Des données récentes suggèrent que cette inflammation périphérique pourrait également présenter une composante au niveau cérébral se caractérisant notamment par une augmentation de l’expression de différentes cytokines inflammatoires (IL-6, TNF-α, IL-1β…) et de l’activation de leurs voies de signalisation intracellulaire (augmentation de l’activité cJun-N-terminal kinase et de NFkB) (De Souza et al., 2005). De plus, l’intensité de la situation inflammatoire semble être liée au degré d’obésité. Ainsi, il est possible de distinguer différentes situations d’obésité : une obésité modérée qui ne s’accompagne pas forcément de pathologies comorbides et une obésité morbide associée à différents types de complications comme des maladies cardio-vasculaires, de l’hypertension artérielle ou un diabète de type 2. L’obésité s’accompagne également d’une forte prévalence de troubles de l’humeur (anxiété, dépression) et de la cognition. Notre laboratoire a été un des pionniers dans l’étude de l’expression et de l’action des cytokines au niveau central et de leurs conséquences, tant comportementales que neurobiologiques. Cette relation entre système de l'immunité innée et cerveau a particulièrement été étudiée dans le cadre du comportement de maladie regroupant un ensemble de symptômes non spécifiques (fièvre, activations neuroendocriniennes, anorexie, anhédonie, repli sur soi, perte d’intérêt pour l’environnement…) observés chez les individus malades et pouvant être reproduits chez l’animal en réponse à l’injection d’un inducteur de cytokines tel que le lipopolysaccharide (LPS) (Dantzer, 2001). Dans le cas d’une exposition prolongée ou non régulée de l’activation du réseau de cytokines, le comportement de maladie peut laisser place à de véritables troubles de l’humeur et de la cognition associés à une chute des taux circulants de tryptophane, un acide aminé essentiel servant de précurseur et de facteur limitant à la synthèse de sérotonine. Il a été montré que l'indoléamine 2,3-dioxygénase (IDO), une enzyme dégradant le tryptophane en réponse aux cytokines (Lestage et al., 2002; Moreau et al., 2005) est impliquée dans l’induction des symptômes de type dépressif observés notamment suite à la production soutenue de cytokines et que cette action serait dépendante du catabolisme du tryptophane via la voie de la kynurenine (O'Connor et al., 2008). L’activation de l’IDO en situation inflammatoire aboutit à la production de dérivés neurotoxiques (3-OH-kynurénine, acide quinolinique) se comportant comme des agonistes 205 des récepteurs glutamatergiques de type NMDA (Taylor and Feng, 1991), au dépend de la production de sérotonine. Ainsi, l’activation de l’IDO par les cytokines pourrait jouer un rôle dans l’apparition de troubles cognitifs associés aux états inflammatoires via l’altération de la neurotransmission sérotoninergique et/ou glutamatergique. Ces mêmes mécanismes pourraient également sous-tendre le développement des troubles de l’humeur et de la cognition couramment observés chez les personnes obèses. L’ensemble des études réalisées dans ce travail de thèse a donc eu pour objectif général de déterminer chez la souris si l’inflammation chronique à bas bruit qui est associée à un état d’obésité entraînait le développement de troubles de l’humeur et de la cognition. De plus, afin d’identifier au mieux les bases neurobiologiques potentielles à l’origine de ces troubles, nous avons choisi de nous placer dans deux situations différentes : un état d’obésité modérée induit par l’administration d’un régime enrichi mais n’entraînant pas le développement de pathologies co-morbides graves, et un état d’obésité morbide d’origine génétique associé à d’autres pathologies notamment un diabète de type 2. Dans les deux cas, les conséquences de cette obésité sur l’état d’activation inflammatoire et les altérations neurochimiques et comportementales qui en découlent ont été étudiées en détail. Nos résultats montrent que : 1) l’intensité de la perturbation du système immunitaire est corrélée au degré d’obésité puisqu’une obésité modérée est associée à une altération de la capacité du système immunitaire à répondre à une infection, tandis qu’une obésité morbide entraîne la mise en place d’un état inflammatoire, même en conditions non stimulées. 2) les modifications physiopathologiques induites par le développement d’un état d’obésité altèrent le système immunitaire, comme en témoignent l’activation accrue de la production de cytokines périphériques et cérébrales, en particulier l’IL-6, l’exacerbation des réponses neurochimiques (stimulation de l’IDO pulmonaire et cérébrale) et neuroendocriniennes (sur-activation de l’axe HPA) et de leurs conséquences sur la réactivité comportementale. 3) les souris obèses présentent des altérations de leurs capacités cognitives, des troubles de type anxieux, ainsi qu’une modulation de leur réponse émotionnelle dont la mise en place dans le temps semble se faire de façon indépendante, selon des modalités qui restent à préciser. 206 OBESITE modérée Médiateurs métaboliques morbide LPS ip LPS ip Leptine Insuline Inflammation périphérique Inflammation périphérique centrale centrale centrale Activation HPA Activation IDO Activation HPA Activation HPA Atténuation IDO Inflammation périphérique Troubles de type : cognitifs Oui Oui Oui Oui anxieux Oui ? Oui ? dépressif Non Non Non Non Figure 10 : Obé Obésité sité – Inflammation - Troubles En conclusion, ces résultats originaux permettent de mettre en évidence le rôle clé de l’inflammation associée à l’obésité dans le développement des troubles de l’humeur et de la cognition (figure 10). Ce travail pourrait ainsi contribuer à l’identification de cibles moléculaires potentielles pour le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques ou nutritionnelles visant à améliorer la qualité de vie des patients obèses et prévenir au mieux le développement des pathologies co-morbides associées à l’obésité. Choix des modèles expérimentaux Dans nos sociétés, l’obésité est le plus souvent le résultat d’interactions entre des prédispositions génétiques et l’environnement (Archer and Mercer, 2007; Tschop and Heiman, 2001). En effet, les modes de vie ont changé faisant place à une sédentarité, une diminution de l’activité physique et surtout une forte augmentation de la consommation de nourriture très énergétique, à haute teneur en sucres et en graisses. Tout ceci favorise la mise en place d’une balance énergétique très positive (Drewnowski, 2007; Friedman, 2000). Ainsi, 207 l’utilisation de modèles d’obésité basés sur la consommation de régime enrichi en graisse et/ou en sucre semble être pertinente pour reproduire l’obésité communément observée chez l’homme. Afin de reproduire au mieux les habitudes alimentaires humaines occidentales, nous avons donc choisi d’utiliser un régime de type « cafétéria » qui consiste en un mélange d’aliments du commerce riche en graisse et en sucre (Berraondo et al., 1997; Groubet et al., 2003). Nous avons choisi de ne pas utiliser un régime fortement hyperlipidique afin d’éviter le risque d’une inflammation locale de la barrière intestinale induite par le pool de lipides excédentaires (Cabre and Gassull, 2003). La consommation du régime hypercalorique pendant au minimum 20 semaines favorise la mise en place d’une obésité chez la souris se caractérisant par une forte prise de poids, une hypertrophie de la masse adipeuse, ainsi qu’une forte induction des taux de leptine dans le plasma et le tissu adipeux (chapitre 1, 2 et 3). Ce modèle d’obésité est donc proche des situations réelles d’obésité rencontrées dans nos sociétés puisqu’elle est due à l’augmentation de la charge calorique de la prise alimentaire, et à la consommation d’un régime déséquilibré. Mais, dans ce modèle, l’obésité observée est une obésité « modérée » associée à une augmentation de la production de leptine. L’utilisation de ces régimes enrichies n’entrainent pas classiquement d’insulino-resistance et de diabète de type 2 chez les animaux (Berraondo et al., 1997) mais l’absence de ces pathologies comorbides devra être vérifiée, notamment par des mesures d’indice glycémique. De plus, dans cette situation d’obésité modérée, nous ne mettons pas en place une inflammation chronique à bas bruit, bien que nous perturbions tout de même la réponse inflammatoire. En effet, nous avons montré que l’exposition au régime hypercalorique entraîne l’exacerbation de la réponse inflammatoire induite par une infection systémique, mais le statut inflammatoire des animaux obèses en situation basale n’est pas significativement affecté (chapitre 1 et 2). Or, la prévalence des troubles de l’humeur et de la cognition observés chez les patients obèses augmente avec la sévérité de l’obésité. Afin de se placer dans un contexte plus propice à l’observation de certains troubles, nous avons donc également réalisé nos différentes études sur un modèle d’obésité génétique. La découverte du gène ob/ob codant pour la leptine, hormone dite de la « satiété » impliquée dans la régulation de la prise alimentaire, a permis de développer des modèles génétiques d’obésité dont les plus couramment utilisés sont les souris ob/ob et db/db, respectivement déficientes pour le gène de la leptine ou de son récepteur (Carroll et al., 2004). Il a été décrit que la mutation de gènes impliqués dans la régulation de la balance énergétique et connus pour être essentiels au maintien d’un poids corporel optimal, entraîne le 208 développement d’une obésité chez l’animal de laboratoire, ainsi que chez un petit nombre de patients (Hebebrand et al., 2003). Ces mutations sont principalement observées sur le gène de la leptine, la POMC, ainsi que les récepteurs de l’α-MSH dont MC4R (Carroll et al., 2004; Clement et al., 1998; Krude et al., 1998). Contrairement au modèle ob/ob, la souris db/db exprime le gène de la leptine. Cette production de leptine présente divers avantages : tout d’abord, elle limite les phénomènes de compensation qui peuvent apparaître lorsque le gène de la leptine n’est plus exprimé, et d’autre part, elle est le reflet de l’état sécrétoire du tissu adipeux et donc de l’intensité de l’obésité. L’utilisation du modèle d’obésité génétique db/db, bien qu’il ne soit pas un reflet de la réalité puisque l’obésité génétique est une pathologie rare chez l’homme, présente l’avantage de créer une situation d’obésité morbide (chapitre 4). Les animaux développent des pathologies associées comme un diabète de type 2, une insulinorésistance et des problèmes cardio-vasculaires. De plus, ce travail a mis en évidence chez ces animaux une inflammation chronique à bas bruit périphérique et centrale. Ainsi, l’utilisation de ces deux modèles a permis d’une part de se placer dans une situation d’obésité modérée et donc avant l’apparition des pathologies co-morbides associées à l’obésité, et d’autre part dans une situation d’obésité morbide. Ainsi ces modèles, souris DIO et souris db/db apparaissent comme deux approches parfaitement complémentaires pour étudier l’impact de l’inflammation sur les troubles de l’humeur (anxiété et dépression) et de la cognition associés à l’obésité. L’étude de ces deux situations constitue une étape importante vers l’identification de nouveaux outils de diagnostic et de nouvelles stratégies pharmacologiques pour la prévention de ces troubles. Conséquence de l’obésité sur la réaction inflammatoire Il est désormais bien établi que les formes d’obésité sévères sont associées à un état inflammatoire chronique caractérisé par la présence de facteurs inflammatoires au sein de la circulation sanguine et du tissu adipeux, ainsi que l’existence d’une infiltration de macrophages dans le tissu adipeux (Cancello and Clement, 2006). Quelques études ont également proposé que l’inflammation périphérique présente une composante centrale et plus particulièrement dans l’hypothalamus où la consommation d’un régime riche en graisse induit l’expression de cytokines inflammatoires (IL-1β, TNFα) et l’activation des voies de signalisation intracellulaires associées (JNK, NFκB) chez le rat (De Souza et al., 2005). 209 Dans le cas de notre modèle DIO, le régime enrichi n’affecte pas les taux d’IL-6, de TNFα et de MCP-1 mesurés dans le plasma et le tissu adipeux en conditions basales, ainsi que l’expression du TNFα, de l’IL-6 ou de l’IFNγ dans l’hypothalamus et l’hippocampe des souris obèses comparée aux animaux consommant la nourriture standard (chapitre 1 et 2). Ce résultat est en accord avec plusieurs études récentes montrant l’absence de modifications de taux plasmatiques d’IL-6 et/ou de TNFα chez des rongeurs soumis à un régime enrichi (Amar et al., 2007a; Bedoui et al., 2005; Huang et al., 2007). Dans notre modèle, la consommation du régime « cafétéria » n’entraîne pas d’altérations de la sécrétion d’insuline ce qui serait en relation avec l’absence d’insulinorésistance chez les souris obèses comme précédemment décrit (Lopez et al., 2003) mais des mesures de glycémie permettant d’évaluer l’insulinorésistance doivent être réalisées pour confirmer cette donnée. De plus il a été montré que l’absence d’altérations des taux plasmatiques d’IL-6 et de TNFα chez des souris soumises à un régime enrichi à 60 % en graisse pendant 16 semaines pouvait être corrélée à l’absence de diabète (Amar et al., 2007a). Enfin, la plupart des études décrivant le développement d’une inflammation comme conséquence de la consommation d’un régime enrichi, utilise un régime à haute teneur en graisse (60 %) (Ellacott et al., 2007; Xu et al., 2003b), tandis que les études utilisant un régime à teneur plus modérée (35 %) montrent des résultats similaires aux nôtres (Bedoui et al., 2005). Ainsi l’avantage de l’utilisation de ce régime enrichi est de pouvoir se placer dans une situation où l’obésité n’est pas encore associée aux pathologies communément décrites dans l’obésité morbide. Cependant, cet état d’obésité ne semble pas non plus associé à une inflammation à bas bruit décelable au travers des mesures que nous avons utilisées. Les facteurs inflammatoires mesurés dans notre étude, qui sont ceux fortement induits lors d’une stimulation aiguë du SI, semblent en effet peu sensibles dans ces conditions. Ainsi, l’évaluation de marqueurs de l’inflammation potentiellement plus sensibles à des stimulations du SI faibles en amplitude mais soutenues dans le temps apparaît comme une approche plus adaptée. Une autre mesure pertinente pour évaluer l’effet du régime enrichi sur le fonctionnement du SI consiste à étudier sa capacité d’activation. Dans cette optique, nous avons choisi de tester sa réactivité à une stimulation aiguë via l’administration de LPS (chapitre 1 et 2). Parallèlement, nous avons également décidé d’évaluer le statut inflammatoire des animaux dans une situation d’obésité morbide. Dans ce deuxième modèle, la mutation du 210 récepteur du gène de la leptine affecte les taux d’IL-6 et de MCP-1 mesurés en condition basale au niveau plasmatique mais également dans le tissu adipeux (figure complémentaire). db/+ Adipose tissue saline db/db LPS Insulin (pg/ml) 43,7 ± 8,2 a 44,2 ± 7,8 a Leptin (pg/ml) 948,3 ± 112 a 1046,8 ± 143 a MCP-1 (pg/ml) 10,8 ± 6,1 a 143,1 ± 24,2 b Resistin (pg/ml) 3688,3 ± 348,1 a 3378,7 ± 272,3 a 3,6 ± 1 a 6,5 ± 0,8 b IL-6 (pg/ml) saline 23,52 ± 0 ± 0,54 a 5228,8 ± 383 b 44,7 ± 8,8 a 1058,8 ± 191 b 3,1 ± 0,4 a LPS 30,24 ± 6,7 a 5760,2 ± 427 b 167 ± 46,8 b 853,2 ± 107,8 b 8,3 ± 1,7 b Figure complé complémentaire Concentrations en cytokines et adipokines évaluées dans le tissu adipeux par Luminex. Les valeurs représentées sont les moyennes ± SEM (n=6). Des moyennes avec des lettres différentes sont significativement différentes les unes des autres. De plus, l’expression hippocampique d’IL-6, d’IL-1β et de TNFα est exacerbée chez les souris obèses par rapport à celle des souris minces (chapitre 4). Ces résultats sont en accord avec les résultats d’études portant sur des souris db/db de 25 semaines et qui montrent une augmentation de la concentration plasmatique de MCP-1. Mais cette étude, réalisée sur des souris plus âgées, ne montre pas d’augmentation de la concentration plasmatique d’IL-6 et de TNFα (Guo et al., 2008). Une autre étude réalisée sur des souris âgées de 12 semaines comme dans notre protocole confirme l’augmentation des taux plasmatiques d’IL-6 que nous observons chez les souris db/db (Yang et al., 2008) mais ne montre pas d’augmentation de MCP-1 et de TNFα. De plus, aucune étude ne semble avoir mis en évidence une inflammation à bas bruit en central chez les animaux db/db. Une étude menée par O’Connor et al a mis en évidence l’exacerbation de la réponse inflammatoire des animaux db/db en réponse à une injection de LPS via l’expression d’IL-1β, d’IL-1ra et la modulation de la réponse comportementale, mais ces modifications d’expression n’ont pas été mise en évidence en conditions basales (O'Connor et al., 2005). Ainsi, nos résultats ont permis de mettre en évidence une inflammation chronique à bas bruit en périphérie mais également en central chez les animaux db/db. Cette exacerbation de l’expression de cytokines en central peut être la conséquence de l’augmentation de la production de cytokines inflammatoires périphériques, mais il est également interessant de s’interroger sur le rôle de l’insuline. En effet, dans notre modèle d’obésité morbide, les taux plasmatiques d’insuline sont fortement augmentés. Or, il a été montré que si des augmentations périodiques de concentration en insuline ont un effet 211 bénéfique, la production exacerbée et chronique d’insuline plasmatique entraîne la production de cytokines pro-inflammatoires (Iwasaki et al., 2008). De plus, il a également été mis en évidence que la production chronique d’insuline chez des souris db/db inhibe la voie de signalisation de l’interleukine-4, une cytokine au fort potentiel anti-inflammatoire (Hartman et al., 2004). Ces données suggèrent que, dans notre modèle d’obésité morbide, l’augmentation des taux d’insuline et donc le diabète de type 2 qui y est associé, soient impliqués dans l’inflammation observée. En conclusion, nous avons mis en évidence que l’intensité de la situation inflammatoire est corrélée à l’intensité de l’obésité. En effet, un état d’obésité modérée ne semble pas associé à une inflammation à bas bruit décelable au travers des mesures que nous avons utilisées. Les facteurs inflammatoires mesurés dans notre étude, fortement induits lors d’une stimulation aiguë du SI, semblent en effet peu sensibles dans nos conditions. Ainsi, une mesure pertinente pour évaluer l’effet du régime enrichi sur le fonctionnement du SI consiste à étudier sa capacité d’activation. Dans cette optique, nous avons choisi de tester sa réactivité à une stimulation aiguë via l’administration de LPS. Par contre, dans une situation d’obésité morbide, nous avons mis en évidence une inflammation à bas bruit périphérique et centrale. Dans cette situation, l’obésité est plus marquée, le développement du tissu adipeux est plus important et est associé à des pathologies communément décrites dans l’obésité morbide qui pourraient être impliqués dans la mise en place de l’état inflammatoire observé. Il semble tout de même intéressant d’étudier la réponse inflammatoire suite à une injection de LPS dans cette situation d’inflammation à bas bruit. Obésité et vulnérabilité à une infection Malgré l’absence de signes visibles d’une inflammation à bas bruit, notre régime « cafétéria » entraîne une activation exacerbée du SI en réponse au LPS (chapitre 1 et 2), suggérant la mise en place de modifications responsables d’une plus grande vulnérabilité face à une infection, comme cela a précédemment été décrit chez l’homme (Mannino et al., 2006; Tracey et al., 1971). En effet, il a été décrit que l’obésité favoriserait le développement de l’asthme et en aggraverait la sévérité (Mannino et al., 2006; Shore, 2008). De plus, les sujets obèses seraient plus sensibles aux septicémies, probablement du fait d’une augmentation de 212 l’inflammation microvasculaire et de l’activation des cellules endothéliales (Vachharajani et al., 2005). Enfin, quelques études montrent une réponse immunitaire altérée chez des souris soumises à un régime enrichi en graisse, en réponse à une infection bactérienne par Porphyromonas gingivalis (Amar et al., 2007a) ou encore au virus de la grippe (Smith et al., 2007). Cependant, nous n’observons pas cette exacerbation de la réponse inflammatoire en périphérie chez les souris db/db, 24 h après l’injection de LPS (chapitre 4). Seule la sécrétion de leptine plasmatique est exacerbée suite à l’administration de LPS. Mais, bien que le choix de l’étude des animaux 24 h après l’injection soit justifié pour observer la réponse comportementale (Frenois et al., 2007), il est probable que la réaction inflammatoire ne soit plus observable. Il serait intéressant de réaliser de nouveau cette étude 2 h après l’injection de LPS. En effet, l’utilisation de modèles génétiques d’obésité a permis de mettre en évidence une augmentation de la réponse immunitaire entraînant un comportement de maladie exacerbé en réponse au LPS de 2 à 8 h après l’injection chez la souris db/db (O'Connor et al., 2005), tandis que la microinfusion d’IL-1β provoque une augmentation de la fièvre chez des rats fa/fa avec un pic 3 h après l’infusion (Plata-Salaman et al., 1998). De plus, la déficience en leptine observée dans les modèles génétiques d’obésité pourrait également contribuer à la suppression des défenses de l’organisme lors d’une infection pulmonaire (Mancuso et al., 2002). Dans notre étude, nous avons tenté d’identifier par quels mécanismes un régime enrichi pouvait interférer avec la réponse immunitaire normalement induite lors d’une infection bactérienne, aussi bien au niveau périphérique que central. Ainsi, nous avons montré que l’augmentation des taux plasmatiques d’IL-6 et de TNFα induite par l’administration de LPS est exacerbée par la consommation d’un régime enrichi (Andre et al., 2008b), en accord avec une étude précédente (Huang et al., 2007). De plus, le régime « cafétéria » potentialise l’augmentation d’expression hypothalamique de l’ARNm de l’IL-6 induite par le LPS, alors qu’il est sans effet significatif sur l’expression du TNFα et de l’IFNγ dans cette même structure cérébrale (chapitre 1). Ces résultats étayent l’hypothèse de l’implication majeure de l’IL-6 dans le développement de l’obésité (Yudkin et al., 2000) en agissant directement au niveau hypothalamique où ses récepteurs sont exprimés, afin de moduler les dépenses énergétiques (Shizuya et al., 1998). De plus, si les souris déficientes pour le gène de l’IL-6 développent une obésité, à l’inverse, l’administration centrale de l’IL-6 modifie cet état en diminuant la masse adipeuse et augmentant les dépenses énergétiques (Wallenius et al., 2002). 213 Enfin, l’IL-6 agit sur les cellules cibles en activant la voie de transduction du signal JAK/STAT, permettant ainsi la transcription d’un grand nombre de gènes dont SOCS-3. L’augmentation de l’expression à la fois de SOCS-3 et de l’IL-6 dans l’hypothalamus 2 h après l’administration de LPS est exacerbée chez les souris obèses. Etant donné que l’implication sélective de l’IL-6 dans l’induction cérébrale de SOCS-3 par le LPS a été démontrée (Lebel et al., 2000), nos résultats sont donc en faveur d’une relation directe entre le développement de l’obésité induite par un régime enrichi et l’exacerbation de l’induction de l’IL-6 et de SOCS-3 par le LPS. Nous avons également mis en évidence que cette neuroinflammation est structuredépendante. En effet, la surexpression d’IL-6 n’est pas visible dans l’hippocampe alors que dans cette structure, l’injection de LPS entraîne une exacerbation de l’expression du TNFα et de l’IFNγ (chapitre 2). En plus de la présence de facteurs inflammatoires dans la circulation sanguine et le tissu adipeux, l’obésité est associée à une infiltration des macrophages contribuant à la production de ces molécules inflammatoires (Cancello and Clement, 2006; Wellen and Hotamisligil, 2003). Ainsi, une augmentation de l’expression de l’ARNm et de la protéine plasmatique MCP-1 a été décrite dans un modèle d’obésité génétique, la souris ob/ob (Zhou et al., 2007), ainsi que lors de l’utilisation de régime fortement enrichi en graisse (60 %) (Chen et al., 2005). Dans notre modèle db/db, la sécrétion de MCP-1 est exacerbée en conditions basales dans le tissu adipeux et dans le plasma, ce qui confirme les résultats obtenus dans d’autres études (chapitre 4) (Sartipy and Loskutoff, 2003). Par contre, l’injection de LPS n’exacerbe pas la production de MCP-1 chez les souris obèses par rapport aux témoins, que ce soit dans le tissu adipeux ou dans le plasma. Il a pourtant été mis en évidence que le LPS exacerbe la production de MCP-1 par le tissu adipeux chez les souris obèses ob/ob, mais ces données ont été obtenues in vitro après addition de LPS sur des cultures de tissu adipeux (Zhou et al., 2007). Dans notre modèle DIO, les taux plasmatiques de MCP-1 ne sont pas modulés par le régime en conditions basales ce qui confirme le statut d’obésité modérée. Par contre, le LPS entraîne une forte augmentation des concentrations circulantes de MCP-1 24 h posttraitement, en accord avec l’étude de (Bobrowski et al., 2005) et potentialisée par le régime (chapitre 1 et 2). Nous avons également montré dans les deux modèles (obésité modérée et obésité morbide) que les taux de leptine plasmatiques sont plus importants chez les animaux obèses que chez les standards, et dans ces deux situations l’administration de LPS entraîne 214 une augmentation 24 h post-traitement, comme précédemment décrit (Sarraf et al., 1997). De plus, si le LPS induit une perte de poids d’environ 12 % (3-4 g) chez les animaux consommant la nourriture standard (Andre et al., 2008b), cette perte est réduite de moitié chez les souris obèses. Un effet de la leptine a été proposé car en plus de son rôle classiquement décrit dans la régulation de la prise alimentaire et des dépenses énergétiques (Meyers and Gokce, 2007), elle serait potentiellement impliquée dans l’anorexie et la perte de poids consécutive à l’administration de cytokines inflammatoires (Luheshi et al., 1999). De plus, il a été suggéré que la forte induction d’expression de SOCS-3 pouvait être le résultat d’une augmentation des taux plasmatiques de leptine induite par le LPS (Howard and Flier, 2006) et que le taux d’expression de SOCS-3 dans l’hypothalamus était un facteur essentiel à la mise en place de la leptinorésistance classiquement associée à l’obésité (Howard and Flier, 2006; Mori et al., 2004; Munzberg et al., 2004). Ainsi, le développement d’une leptinorésistance dans notre modèle d’obésité modérée pourrait expliquer l’atténuation de la perte de poids induite par le LPS chez les souris obèses comparées à celles consommant de la nourriture standard. Cette hypothèse est confirmée par les résultats obtenus chez les souris db/db. En effet, chez ces animaux qui présentent une leptinorésistance du fait de l’absence de récepteur à la leptine, le même profil de perte de poids est observé. Une forte induction de résistine est également observée chez les souris obèses DIO et db/db 24h post-LPS. Ceci est en accord avec les résultats montrant que l’expression de résistine est stimulée par les cytokines pro-inflammatoires (Kaser et al., 2003). Mais, si les souris db/db présentent une diminution des taux plasmatiques de résistine en conditions basales, ce qui confirme des données déjà obtenues dans d’autres études (Maebuchi et al., 2003; Way et al., 2001), les souris DIO n’ont pas de diminution des taux de résistine en basal. Il a été montré chez des souris C57Bl/6 ayant consommé un régime riche en lipides, une diminution des taux plasmatiques de résistine (Maebuchi et al., 2003). Ces résultats semblent donc confirmer l’état d’obésité modérée de notre modèle puisque notre régime enrichi n’entraîne pas de diminution des taux circulants de résistine contrairement au régime hyperlipidique, mais il entraîne tout de même une augmentation des taux de leptine. La forte induction des taux plasmatiques de leptine et de résistine observée chez les souris obèses, quelle que soit l’intensité de leur obésité, 24 h après-LPS, n’est cependant pas visible au sein du tissu adipeux contrairement à certaines études reportant une induction de l’expression de leptine 16 h après l’administration de LPS (Berkowitz et al., 1998; Faggioni et al., 1998). Néanmoins, si ces dernières études montrent un effet du LPS au niveau 215 transcriptionnel, aucune modification au niveau protéique n’a été décrite, suggérant un turnover rapide de la protéine ou encore une sécrétion de la leptine vers la circulation sanguine plutôt que localisée au sein du tissu adipeux. Il est également envisageable que les modifications des taux de leptine induites par le LPS soient précoces et donc plus observables 24 h post-traitement. En résumé, selon l’intensité de l’obésité, la sensibilisation du système de l’immunité innée, dont les bases neurobiologiques restent à définir, ne se ferait pas de la même façon. En effet, dans une situation d’obésité modérée, cet état latent particulier ne serait pas visible à l’état basal, mais favoriserait le développement d’une réponse inflammatoire exacerbée lors de l’infection de l’organisme par un agent pathogène. Par contre, dans une situation d’obésité morbide, le système de l’immunité innée est activé en basal. Il est possible que sous l’effet d’une infection, une exacerbation de la réponse puisse être observée, comme le suggère les données obtenues avec la leptine et la résistine, mais il faudrait se placer 2 h après l’injection de LPS pour pouvoir observer une exacerbation de la réponse cytokinergique. Obésité et troubles du comportement et de la cognition Ce travail de thèse a permis de mettre en évidence la présence de troubles du comportement (anxiété) et de la cognition chez les animaux obèses. De plus, la double approche obésité modérée – obésité morbide nous a permis d’une part d’identifier un schéma temporel d’apparition des troubles, même si les modalités qui le sous-tendent, restent à préciser, et d’autre part de corréler l’intensité de l’obésité à l’intensité des troubles. La prise excessive de poids, et l’obésité qui peut en découler, induisent chez les animaux étudiés des déficits mnésiques. Le test du labyrinthe en Y a été utilisé afin d’évaluer la mémoire de travail des animaux. Ce test, qui met en jeu l’hippocampe (Conrad et al., 1996), est basé sur l’attirance spontanée des souris pour les endroits nouveaux. Il présente divers avantages dont celui de ne pas nécessiter d’apprentissage de la part des animaux, et celui de ne pas exposer les souris à des conditions expérimentales trop stressantes. Ce test se décompose en deux séquences séparées l’une de l’autre par un délai de 1 semaine. Le premier test permet d’évaluer la capacité de réponse à la nouveauté des animaux (Dellu et al., 2000). Dans ce paradigme, le délai de rétention entre l’acquisition (première exploration du 216 labyrinthe) et la restitution (retour dans le labyrinthe avec la possibilité d’explorer le bras nouveau) est de 2 min. Ce délai court permet d’évaluer la motivation à la nouveauté des animaux. Dans le cas d’une obésité modérée, les animaux obèses ne présentent pas de troubles lors de la réalisation de ce test, ce qui permet de conclure que les animaux n’ont pas d’altération de leur capacité de reconnaissance (chapitre 2). Par contre, les souris ayant développées une obésité morbide ne sont plus capables de reconnaître le bras nouveau après un délai de rétention de 2 min. L’obésité morbide paraît donc entraîner des troubles cognitifs plus sévères que ceux associés à une obésité modérée (chapitre 4). En effet, les animaux ayant obtenu une réponse normale lors du premier test (ITI de 2 min) sont de nouveau placés dans le labyrinthe en Y, mais cette fois afin d’étudier leur mémoire de travail. Le délai de rétention dans ce paradigme est alors de 30 min. Dans cette nouvelle situation, les animaux DIO présentent des troubles de la mémoire de travail (chapitre 2). Ces résultats confirment les données obtenues dans différentes études. Il a en effet été démontré que des rats recevant un régime hyperlipidique présentent des altérations de leur capacité cognitive dans des tests mettant en jeu la mémoire spatiale, mais également la mémoire procédurale et celle à court et long terme (Winocur and Greenwood, 1999). Plus récemment, des études réalisées chez l’homme ont montré une relation linéaire entre l'excès de poids et certaines capacités cognitives (Cournot et al., 2006). Ainsi, notre travail confirme les études reliant obésité et troubles cognitifs, mais il permet en plus de mettre en évidence une relation entre l’intensité de l’obésité et l’intensité des troubles cognitifs. Dans une situation d’obésité modérée, nous n’observons pas de signes visibles d’une inflammation à bas bruit. Seule la concentration plasmatique de leptine est exacerbée chez les souris ayant consommé un régime enrichi. Il a été démontré que la leptine n’aurait pas qu’un rôle dans les fonctions de régulation de la prise alimentaire, mais elle serait également impliquée dans la modulation des performances comportementales liées à l’apprentissage et à la mémoire (Oomura et al., 2006), ainsi qu’à la réactivité émotionelle (Lu et al., 2006). De plus, il a récémment été montré que l’injection intrapéritonéale d’insuline chez des souris entraîne l’apparition de troubles cognitifs (Akanmu et al., 2008). Par contre, les souris db/db présentent un état inflammatoire à la fois en périphérie mais également en central, notamment au niveau hippocampique. De plus, l’altération de leur fonction cognitive est plus importante. L’inflammation hippocampique observée dans cette situation d’obésité morbide pourrait être à l’origine des troubles cognitifs comme certaines études l’ont montré. En effet, la neuroinflammation consécutive à l’administration de LPS participerait à la mise en place de troubles cognitifs dans le cas de la pathologie d’Alzheimer (Lee et al., 2008). De plus, un des mécanismes pouvant expliquer 217 l’action des cytokines cérébrales sur les performances cognitives est leur action sur la plasticité synaptique. Ainsi, le TNFα affecte également la plasticité synaptique puisque l’administration de TNFα au sein d’une tranche d’hippocampe inhibe la PLT au niveau du champ CA1 (Tancredi et al., 1992) et du gyrus dentelé de façon similaire à l’effet de l’IL-1β et du LPS (Cunningham et al., 1996). Enfin, il a récemment été montré que l’activation de la microglie dans l’hippocampe et la production de TNFα induite par une inflammation périphérique altérent la réactivité du système nerveux central (Riazi et al., 2008). Cette activation microgliale, sous-tendue par la production de TNFα, et exacerbant l’excitabilité du cerveau, a été proposé comme un mécanisme potentiel pouvant expliquer les changements neurobiologiques associées à l’inflammation chronique (Riazi et al., 2008). D’autres études seraient nécessaires pour vérifier si un mécanisme similaire pourrait expliquer les altérations cognitives associées à l’obésité. De plus, une injection de LPS entraîne des déficits mnésiques chez des souris minces et pourrait aggraver les troubles déjà observés chez les souris obèses, une hypotyhèse qu’il faudrait confirmer en utilisannt des tests d’ évaluation de la mémoire plus spécifique (chapitre 2). Or, l’injection de LPS entraîne une neuroinflammation associée à la production de cytokines inflammatoires notamment au niveau hippocampique. Cette production de cytokines est exacerbée chez les souris obèses ayant recu une injection de LPS. Ces résultats vont donc dans le sens de l’hypothèse d’un rôle des cytokines inflammatoires sur l’apparition des troubles cognitifs. En effet, les cytokines, en activant l’IDO pourraient entraîner la production de dérivés neurotoxiques, comme l’acide quinolinique, potentiellement impliqués dans la mise en place d’altérations de la mémoire spatiale (Dairam et al., 2007). Ainsi, l’excès de poids entraîne le développement de troubles cognitifs de façon précoce. Ces troubles sont maintenus lors de la mise en place d’une obésité modérée et s’aggravent lorsque l’intensité de l’obésité, et de la réaction inflammatoire associée, augmente. Bien que le labyrinthe en Y soit un test efficace, simple, rapide et minimisant les éventuelles interférences liées à des différences de motivation ou de réactivité émotionelle, il serait également intéressant de compléter ces études en utilisant d’autres tests cognitifs, par exemple le labyrinthe aquatique de Morris qui permet d’évaluer différents aspects de la cognition dont les capacités d’apprentissage (Chen et al., 2000). Un certain nombre de données convergentes suggère que les modifications physiologiques induites par l’obésité pourraient contribuer à modifier la réactivité 218 comportementale provoquée par un stimulus émotionnel. En effet, si une forte prévalence des troubles de l’humeur, ainsi qu’une réduction des taux plasmatiques de Trp, ont été décrites chez des sujets obèses (Breum et al., 2003; McElroy et al., 2004; Scott et al., 2008), il a été aussi montré que des modifications des concentrations de Trp altéraient l’état émotionnel des patients (Sandyk, 1992). De plus, la déplétion aiguë en Trp par ingestion d’une boisson appauvrie en Trp entraîne d’une part l’apparition d’altérations de l’humeur chez l’homme, ainsi qu’une plus grande irritabilité ou agressivité (Young and Leyton, 2002), et d’autre part le développement de troubles cognitifs (Lieben et al., 2004; Uchida et al., 2007). Notre travail montre qu’en plus de troubles cognitifs, l’obésité participe à l’instauration de symptômes de type anxieux chez les animaux (chapitre 3 et 4). Un lien entre obésité et anxiété a récemment été montré via une étude réalisée sur des femmes obèses qui montre que les sujets présentant une obésité sévère avaient déjà eu au cours de leur vie des épisodes dépressifs et anxieux (Wadden et al., 2006). De plus, le risque de développer des troubles de type anxieux est deux fois plus élevé chez des femmes obèses que chez des femmes avec un faible IMC (Becker et al., 2001). Nos résultats vont donc dans le sens de ces études puisque nous n’observons pas de symptômes de type anxieux chez les souris en surpoids, mais seulement chez les animaux obèses. Il est donc intéressant de constater que ces symptômes semblent se développer plus tardivement que les troubles cognitifs. Néanmoins, bien que ces épisodes de type anxieux soient présents à la fois dans une situation d’obésité modérée et d’obésité morbide, ils se mettent en place indépendamment de la présence concomittante d’une situation inflammatoire à bas bruit. Dans le cadre de l’obésité modérée, comme dans celle de l’obésité morbide, la leptinoresistance qui se développe chez les sujets obèses pourrait participer à la mise en place des troubles anxieux. En effet, des études ont démontré qu’une injection de leptine chez des souris ob/ob, qui ne possèdent donc pas le gène codant pour la leptine, diminue l’anxiété chez ces souris (Asakawa et al., 2003). De plus, l’insuline pourait également jouer un rôle dans la mise en place des troubles anxieux puisque l’injection intrapéritonéale d’insuline chez des souris entraîne l’apparition de troubles de type anxieux (Akanmu et al., 2008). La neuroinflammation qui apparaît ensuite dans l’obésité morbide pourrait, via la production de cytokines inflammatoires et l’activation de l’IDO, faciliter le maintien de ces troubles. Dans nos deux modèles, nous n’observons pas d’épisodes de type dépressif contrairement à ce qui est classiquement décrit dans la littérature (chapitre 1 et 4) (Stunkard et al., 2003). La consommation du régime « cafétéria » n’entraîne pas de troubles 219 locomoteurs, comparé aux souris non obèses lors d’un test d’activité locomotrice effectué dans un environnement très similaire à leur cage d’hébergement et donc peu stressant. Par contre, les souris DIO obèses soumises au FST ont tendance à rester moins immobiles que les animaux contrôles (chapitre 1). Les souris db/db présentent le même profil de réactivité émotionnel que les souris DIO dans ce test (chapitre 4). L’exposition au FST est un paradigme stressant pour les animaux (Cryan et al., 2002) et la diminution de l’immobilité des souris obèses pourraient être le reflet d’une plus grande réactivité au stress induit par le test. De plus, une hyperactivité similaire dans le FST reportée chez des souris soumises à un régime carencé en Trp, étaye cette hypothèse (Uchida et al., 2005). L’administration de LPS chez les animaux consommant la nourriture standard n’induit pas l’augmentation d’immobilité habituellement décrite 24 h post-traitement et témoignant de la mise en place de symptômes de type dépressif (Frenois et al., 2007; O'Connor et al., 2008). Puisqu’une procédure identique a été respectée pour l’ensemble de ces études, une telle divergence pourrait être due à l’utilisation de souches différentes de souris (souris consanguine : C57Bl/6J vs souche non consanguine : CD-1), puisqu’il a été démontré que la mise en place des symptômes de type dépressif dans le FST, ainsi que la sensibilité aux anti-dépresseurs, dépendaient fortement de la souche utilisée (Lucki et al., 2001). De plus, des souris C57Bl/6J stressées et exposées au FST présentent une diminution de l’immobilité comparée aux animaux non stressés (Thoeringer et al., 2007). L’ensemble de ces données conforte l’hypothèse selon laquelle le comportement particulier des souris dans notre étude reflèterait plus une altération de la réactivité émotionnelle au stress induit par le test et/ou à la stimulation immune par le LPS, qu’un comportement de type dépressif qui pourrait apparaître peut être plus tardivement, après plusieurs expositions au test (Renault and Aubert, 2006). Cette hypothèse est confortée par le fait que cette souche de souris (C57Bl/6J) possède une faible sensibilité aux anti-dépresseurs (Lucki et al., 2001). De plus, il a été montré dans le laboratoire que l’induction d’IDO 24 h post-traitement chez la souris CD-1 était responsable du développement des symptômes de type dépressif induit par le LPS (O'Connor et al., 2008). Néanmoins, l’absence d’augmentation de l’activité cérébrale de l’IDO 24 h post-injection chez la souris C57Bl/6J mince pourrait expliquer que les symptômes de type dépressif ne soient pas encore mis en place. Ainsi, l’obésité est associée à un certain nombre de troubles du comportement et de la cognition qui apparaissent consécutivement, mais qui s’ajoutent les uns aux autres. Ainsi, les troubles cognitifs, qui se développent avec le surpoids, s’aggravent avec l’intensité de 220 l’obésité et s’accompagnent alors de la mise en place d’épisodes de type anxieux. Bien que nous n’ayons pas pu mettre en évidence de troubles de type dépressif, mais seulement une altération de la réactivité émotionnelle dans le protocole expérimental choisi, il se peut que notre schéma expérimental ne laisse pas le temps aux troubles dépressifs de se mettre en place. En effet, les épisodes dépressifs, souvent consécutifs aux épisodes anxieux (Capuron et al., 2001), pourraient apparaître plus tardivement (figure 11). 30 25 Obésité morbide Obésité modérée Surpoids IMC 40 Troubles cognitifs Troubles cognitifs Troubles cognitifs altération de la mémoire spatiale altération de la mémoire spatiale pas de reconnaissance immédiate Troubles anxieux Troubles anxieux Pas de troubles anxieux Troubles dépressifs ? Figure 11 : Ciné Cinétique de l’l’apparition des troubles Les acteurs biologiques mis en jeu Implication de l’IDO Une diminution des taux plasmatiques de Trp, fréquemment décrite chez des patients souffrant d’un certain nombre d’infections, de maladies autoimmunes ou de cancers (Schrocksnadel et al., 1996), a également été observée chez des sujets atteints d’obésité morbide (Breum et al., 2003), suggérant une activation de l’IDO dans la pathologie de 221 l’obésité (Brandacher et al., 2007; Brandacher et al., 2006). Dans notre étude, l’activité enzymatique périphérique de l’IDO, reflétée par le rapport KYN/Trp mesuré dans le poumon, n’est pas modifiée chez les souris ayant consommé le régime « cafétéria » comparé aux souris contrôles, bien qu’on observe néanmoins une réduction non significative des taux de Trp chez les souris obèses (données non montrées) (chapitre 1). Par contre, chez les souris db/db, le rapport KYN/Trp évalué dans les poumons est diminué, tandis que ce même rapport mesuré dans le foie est augmenté (chapitre 4). Ces résultats semblent refléter une diminution de l’activité enzymatique de l’IDO dans les poumons, mais cette modulation de l’activité de l’IDO périphérique n’a pas de conséquences centrales, puisque le rapport KYN/Trp mesuré dans le cerveau est le même chez les souris db/db et chez les souris témoins. Ainsi, si nos modèles ne permettent pas de mettre en évidence une augmentation de l’activité de l’IDO en conditions basales, la consommation du régime « cafétéria » potentialise la forte augmentation de l’activité de l’IDO induite par le LPS et précédemment décrite dans le poumon et le cerveau (Andre et al., 2008b; O'Connor et al., 2008). Elle entraîne également une forte expression cérébrale de l’ARNm de l’IDO 24 h post-traitement, alors que cette expression n’est pas détectable chez les animaux consommant la nourriture standard (chapitre 1 et 2). Etonnement, cette exacerbation de l’activité de l’IDO dans le cerveau et le poumon ne se retrouve pas chez les animaux db/db ayant reçu une injection de LPS (données non montrées), mais il est possible d’envisager que, de façon similaire à la mise en place de troubles de type dépressifs, l’activation de l’IDO soit plus tardive. Afin de vérifier cette hypothèse, il serait nécessaire de réaliser une cinétique détaillée d’activation de l’IDO après une infection systémique chez ces souris db/db. Par contre, chez les souris présentant une obésité modérée, l’expression de l’IDO est fortement induite 2 h après administration de LPS dans l’hypothalamus, structure jouant un rôle clé dans la régulation de la balance énergétique via l’action de la leptine (Friedman, 2002; Shizuya et al., 1998) et important site de production de cytokines cérébrales lors de l’activation périphérique du SI (Castanon et al., 2004; Dantzer et al., 2008; Laye et al., 1994), mais également dans l’hippocampe, structure impliquée dans les processus d’apprentissage et de mémorisation (Gluck et al., 2003; Wirth et al., 2003). Des études récentes ont montré que la réponse immunitaire systémique d’enfants obèses était déviée vers une réponse de type Th1, favorisant la production d’IFNγ et corrélée au développement d’une insulinorésistance (Pacifico et al., 2006). De même, en plus de son rôle dans le contrôle du poids, la leptine est capable de moduler le phénotype des cellules T CD4+ 222 vers un phénotype Th1 (Farooqi et al., 2002), suggérant l’implication de l’IFNγ dans l’activation de l’IDO dans l’obésité. Cependant, tandis que l’injection périphérique de LPS entraîne une forte induction de l’expression de l’ARNm du TNFα, de l’IFNγ et de l’IL-6 comme précédemment décrit (Andre et al., 2008b), cette dernière est la seule cytokine dont l’expression est exacerbée par le régime « cafétéria » dans l’hypothalamus, suggérant donc un rôle particulier de l’IL-6 dans l’induction de l’IDO dans cette structure (chapitre 1). Par contre, ces trois cytokines ont une expression hippocampique exacerbée dans le modèle d’obésité morbide et ceci en situation non stimulée (chapitre 4). L’étude, au sein du laboratoire, des profils d’expression de ces différentes cytokines a permis de suggérer un rôle potentiel de l’IL-1β et du TNFα plutôt que de l’IL-6, dont l’expression très transitoire semble peu compatible avec son implication dans l’induction de l’IDO par le LPS (Andre et al., 2008b). Cependant, une association entre les concentrations soutenues d’IL-6 plasmatiques chez les souris âgées et l’activation cérébrale de l’IDO en réponse au LPS a récemment été montrée (Godbout et al., 2008), étayant ainsi l’hypothèse de l’implication de cette cytokine dans l’induction de l’IDO dans certaines conditions d’inflammation chronique. Une action synergique des cytokines inflammatoires dont l’IL-1β, le TNFα et l’IL-6 dans l’induction de l’IDO par le LPS ou l’IFNγ a également été proposée in vitro (Fujigaki et al., 2006; Robinson et al., 2003). Ainsi, dans l’hypothalamus, l’IL-6 semble être la cytokine majoritairement impliquée dans l’activation de l’IDO par le LPS dans une situation d’obésité modérée (chapitre 1). Par contre, l’induction de l’IDO dans l’hippocampe serait quant à elle dépendante d’autres cytokines, puisque l’expression de l’IL-6 dans l’hippocampe n’est pas exacerbée chez les souris DIO. Si l’IFNγ est considérée comme la principale cytokine impliquée dans l’activation de l’IDO, des études ont proposé que son induction par le LPS soit sous-tendue par un mécanisme indépendant de l’IFNγ mais impliquant le TNFα (Fujigaki et al., 2001; Saito and Heyes, 1996), qui lui a une expression hippocampique exacerbée en situation d’obésité modérée (chapitre 2). Enfin, dans l’obésité morbide, bien que nous n’observions pas d’activation exacerbée de l’IDO dans l’hippocampe, il est envisageable qu’une action synergique des différentes cytokines étudiées puisse activer l’IDO, et cela peut être dans une autre structure comme l’hypothalamus (chapitre 4). Ainsi, ce travail a permis de montrer que dans une situation d’obésité modérée, une infection systémique va entraîner une exacerbation de l’activité et de l’expression de l’IDO périphérique et central. De plus, bien qu’il ait déjà été démontré l’implication de l’IFNγ et du TNFα dans l’activation de l’enzyme, notre étude permet d’une part d’identifier une 223 expression différentielle selon les structures, et d’autre part de mettre en évidence le rôle de l’IL-6 dans l’expression de l’IDO hypothalamique des animaux obèses. Enfin, en situation d’obésité morbide, l’activité de l’IDO ne semble pas être exacerbée mais il serait nécessaire d’approfondir les études portant sur la réactivité du système à une infection, notamment en évaluant la cinétique d’expression de l’IDO après injection. In vitro, de fortes concentrations de glucocorticoïdes stimulent l’activation de l’IDO induite par l’IFNγ, favorisant ainsi son activité anti-microbienne (Turck et al., 2005). Chez les souris ayant une obésité modérée, la forte production plasmatique de corticostérone pourrait, de façon similaire, être impliquée dans l’induction exacerbée de l’IDO (chapitre 1). Dans la situation d’obésité morbide, l’hypercorticostéronémie observée n’est pas associée à une activation exacerbée de l’IDO cérébrale (chapitre 4), mais une étude par structure permettrait de confirmer ou de moduler ce résultat. Il a été montré que l’administration de LPS entraîne chez des rats surrénalectomisés, une mortalité supérieure aux animaux sham (Nakano et al., 1987), suggérant donc l’implication des glucocorticoïdes dans la forte sensibilité aux infections chez les souris obèses. Ainsi, le régime « cafétéria » semble interférer avec la capacité du SI à répondre de façon appropriée lors d’une infection bactérienne, mimée par l’administration de LPS, en entraînant une production centrale et périphérique exacerbée de cytokines inflammatoires, qui en activant l’IDO pourrait être responsable de la mise en place des troubles de l’humeur et de la cognition associés à l’obésité (Baran et al., 1999; McElroy et al., 2004; Scott et al., 2008). En effet, il a été montré que la diminution des concentrations en tryptophane et donc en 5-HT induisait la mise en place de troubles de type anxieux, de type dépressifs et de troubles cognitifs (Lieben et al., 2004; Olivier et al., 2008; Uchida et al., 2007). De plus, les dérivés neurotoxiques produits par l’activation de l’IDO comme la QUIN pourrait également participer à l’établissement de tels troubles (Baran et al., 1999; Heyes et al., 1989; Ogawa et al., 1992). Dans notre modèle d’obésité DIO, la diminution de concentration en 5-HT exacerbe les troubles cognitifs observés en conditions basales, confirmant les données de la littérature. Mais l’établissement de ces troubles cognitifs, ainsi que des troubles anxieux, semble indépendant de l’activation de l’IDO, suggérant l’implication d’autres vois moléculaires comme celle de la leptine. Dans le cas de l’obésité morbide, la situation inflammatoire qui se met en place en conditions basales, pourrait elle aussi moduler l’activité de l’IDO, bien que cette action soit moins clairement établie. 224 Implication de l’axe HPA Chez l’homme, l’obésité est associée à un grand nombre de pathologies co-morbides dont le syndrome de Cushing, se caractérisant par un excès de sécrétion de glucocorticoïdes (Fraser et al., 1999; Marin et al., 1992; Salehi et al., 2005). La réduction significative de la masse adipeuse chez des souris ob/ob surrénalectomisées (Dubuc et al., 1986) suggère une relation étroite entre l’axe HPA et le développement du tissu adipeux. La consommation du régime « cafétéria » n’entraîne pas d’altérations des taux plasmatiques de corticostérone en conditions non stimulées (chapitre 1 et 2), contrairement à ce que l’on observe chez les souris db/db (chapitre 4). Cette hyperactivation de l’axe HPA dans une situation d’obésité morbide est confirmée par certaines études précédentes réalisées chez des patients souffrant d’obésité morbide (Duclos et al., 2005; Marin et al., 1992) ou chez l’animal consommant un régime enrichi entraînant une obésité associée à une insulinorésistance (Moraes et al., 2003). Toutefois, la forte sécrétion de glucocorticoïdes induite par une injection de LPS (Wolf, 2002) est exacerbée chez les souris consommant le régime « cafétéria » (chapitre 1 et 2), suggérant une plus grande réactivité de l’axe HPA aux infections. Cette plus grande activation de l’axe HPA pourrait être induite en réponse à la forte augmentation des taux plasmatiques de l’IL-6 observée chez les souris obèses (chapitre 1 et 2). En effet, un certain nombre d’études décrit une relation étroite entre l’activation de l’axe HPA et la production de cytokines. Il a notamment été décrit que l’activation chronique de l’axe HPA favoriserait le développement d’une obésité viscérale, entraînant ainsi la production de cytokines inflammatoires par le tissu adipeux. Réciproquement, la libération excessive de ces cytokines stimule l’axe HPA, formant ainsi un cercle vicieux délétère (Kyrou et al., 2006). L’activation de l’axe HPA par les cytokines inflammatoires résulte en la sécrétion de corticostérone qui réduit les concentrations plasmatiques d’IL-6 chez l’homme, ainsi que l’expression de son ARNm induite par le LPS (Schobitz et al., 1993). De plus, la forte production de leptine pourrait également contribuer à l’hyperactivation de l’axe HPA. En effet, il a été montré que l’ablation des glandes surrénales réduit les taux plasmatiques de leptine chez le rat, tandis que l’effet est supprimé par l’administration de corticostérone (Spinedi and Gaillard, 1998). Réciproquement, l’hypercortisolémie observée chez des souris ob/ob (Garthwaite et al., 1980) peut être inhibée par l’administration de leptine (Stephens et al., 1995). Ainsi, l’ensemble de ces données soutient fortement l’existence d’une relation bidirectionnelle entre l’axe HPA et le tissu adipeux sécrétant les cytokines et la leptine. Ainsi, la dérégulation du SI entraînerait une hyperactivation de l’axe HPA, une des cibles d’action des facteurs 225 inflammatoires, et ceci en réponse à une infection dans le cas d’une obésité modérée ou en situation basale lors d’une obésité morbide. Ainsi, les souris obèses présentent une production exacerbée de cytokines inflammatoires et de corticostérone et ceci de façon corrélée à l’intensité de l’obésité. En effet, dans le cas d’une obésité modérée, cette exacerbation apparaît en réponse au LPS, tandis que cette situation inflammatoire est observée en situation basale dans le cas d’obésité morbide. Cet hyperactivation des cytokines et de l’axe HPA pourrait être responsable d’une plus grande vulnérabilité pouvant aboutir au développement de processus pathologiques tels que l’apparition de troubles de l’humeur en réponse à un stress ou à une infection supplémentaire (Bale, 2006; Firk and Markus, 2007) ou de troubles de la cognition (Baran et al., 1999; King et al., 2008; Pomara et al., 2003). En conclusion, l’ensemble de ces résultats indique que les modulations immunes et comportementales observées dans l’obésité sont corrélées à l’intensité de l’obésité, c'est-àdire l’importance de la prise de poids et de ces conséquences neurobiologiques et à l’apparition de pathologies comorbides (figure 12). Obésité modérée Obésité morbide LPS ip Inflammation Pas activation HPA Pas activation IDO Activation HPA Activation IDO LPS ip Inflammation Activation HPA Pas activation IDO Inflammation Activation HPA Atténuation IDO Figure 12 : L’ L’inflammation est associé associée à des modifications neuroendocrines et neurochimiques 226 Malgré l’absence d’inflammation à bas bruit classiquement associée à l’obésité morbide décrite chez l’homme, l’obésité induite par notre régime enrichi interfère avec la capacité du SI à répondre de façon appropriée à une infection. Par contre, les souris db/db présentent une inflammation à bas bruit, confirmant ce que l’on observe habituellement dans les obésités morbides. Ces données sont à rapprocher des études réalisées sur des modèles animaux de maladies neurodégénératives telles que la maladie d’Alzheimer ou le prion. Dans de tels modèles, l’inflammation cérébrale est sous-tendue par l’activation chronique de la microglie et se caractérise par une expression des cytokines cérébrales faible ou inexistante en conditions basales (Walsh et al., 2001). Néanmoins, lorsque ces animaux sont soumis à une injection de LPS, ces cellules induisent une production exacerbée de ces mêmes cytokines (Cunningham et al., 2005). Ces résultats sont également observés chez des animaux âgés dont la situation inflammatoire est assez similaire à la situation observée dans le cas de l’obésité (Cunningham et al., 2008). Ce phénomène est appelé « priming »: lors de l’apparition d’une pathologie à composante inflammatoire chronique, la microglie cérébrale sensibilisée par la faible production de cytokines qui en résulte, peut alors basculer dans un état d’inflammation actif et entraîner la production accrue de cytokines. Afin de déterminer si un tel phénomène a lieu dans nos deux modèles d’obésité, il serait nécessaire de poursuivre par une étude de l’état d’activation de la microglie. La mise en évidence de ce phénomène pourrait constituer un facteur prédictif pour la prévention du développement des pathologies associées à l’obésité. 227 228 Conclusion et perspectives 229 230 Conclusion et perspectives Au cours de ce travail de thèse, nous avons mis en évidence le rôle clé de l’inflammation associée à l’obésité dans le développement des troubles de l’humeur et de la cognition. Nous avons pu montré que l’intensité de la perturbation du système immunitaire est corrélée au degré d’obésité, puisqu’une obésité modérée est associée à une altération de la capacité du système immunitaire à répondre à une infection (chapitre 1 et 2), tandis qu’une obésité morbide entraîne la mise en place d’un état inflammatoire même en conditions non stimulées (chapitre 4). De plus, les modifications physiopathologiques induites par le développement d’un état d’obésité altèrent le système immunitaire, comme en témoignent l’activation accrue de la production de cytokines périphériques et cérébrales, en particulier l’IL-6, l’exacerbation des réponses neurochimiques (stimulation de l’IDO pulmonaire et cérébrale) et neuroendocriniennes (sur-activation de l’axe HPA) et de leurs conséquences sur la réactivité comportementale. Enfin, les souris obèses présentent des altérations de leurs capacités cognitives (chapitre 2 et 4), des troubles de type anxieux (chapitre 3 et 4), ainsi qu’une modulation de leur réponse émotionnelle (chapitre 1 et 4) dont la mise en place dans le temps semble se faire de façon indépendante, selon des modalités qui restent à préciser (figure 13). Nous avons montré que l’obésité est associée à une modulation du système immunitaire. Lorsque l’obésité est modérée, nous n’observons pas d’inflammation à bas bruit mais le système va répondre de façon exagérée à une infection. Quand la gravité de l’obésité augmente, comme dans les obésités morbides, l’inflammation à bas bruit est alors visible sans qu’aucune infection ne soit venue restimuler le système. 231 Troubles de l’humeur Troubles de la cognition - Trp 5-HT IDO SNC QUIN 3OH-KYN KYN Cytokines Inflammatoires Trp - IL-6 IFNγ TNFα IDO Cytokines Inflammatoires Périphérie ? insuline Surpoids - Infection Obésité modérée Obésité morbide TA Figure 13 : Sché Schéma ré récapitulatif 3OH-KYN: 3-hydroxykynurénine, 5-HT: Sérotonine, IDO: Indoléamine 2,3-dioxygénase, QUIN: Acide quinolinique, TA: Tissu adipeux, Trp: Tryptophane, SI: Système immunitaire, SNC: Système nerveux central L’inflammation chronique associée aux maladies neurodégénératives telles que la maladie d’Alzheimer ou du prion, le diabète de type 2, pourrait être responsable du développement des troubles de l’humeur lors d’une stimulation aiguë périphérique du SI par un processus de « priming ». En effet, il a été montré que ces pathologies étaient associées à une augmentation du nombre de cellules microgliales cérébrales (Perry et al., 2007) qui, sensibilisées par l’inflammation chronique, basculent dans un état d’inflammation actif et induisent alors une production accrue de cytokines inflammatoires. Par exemple, les 232 macrophages exposés à l’IFNγ seront alors dans un état « latent » se caractérisant par une exacerbation de l’expression membranaire des récepteurs de la famille des TLRs et de l’activation des voies de signalisation associées (Dantzer et al., 2008). Ainsi, un second stimulus tel que le LPS entraînera l’activation des cellules et une réponse inflammatoire exacerbée. Dans ces conditions inflammatoires chroniques, une décompensation des mécanismes régulant le comportement de maladie pourrait avoir lieu, entraînant la mise en place d’une symptomatologie dépressive. Il serait donc intéressant de déterminer si un tel processus pourrait être envisagé dans notre contexte d’obésité modérée où nous avons mis en évidence une plus grande vulnérabilité des animaux aux infections, mais également dans notre modèle d’obésité morbide qui s’accompagne de pathologies comme le diabète de type 2. L’étude de l’activation microgliale cérébrale chez les souris consommant le régime enrichi et chez les souris db/db serait une suite logique et nécessaire à l’identification des mécanismes impliqués dans la sensibilisation du SI. Des premiers résultats portant sur l’expression hippocampique de TLR4 et TLR2 montrent que dans notre modèle d’obésité modérée, l’expression des récepteurs est la même chez les souris obèses et chez les souris minces, que ce soit en basal ou 24 h après l’injection de LPS (chapitre 4), mais il serait nécessaire de regarder cette expression des récepteurs d’une part dans les 2 h qui suivent l’infection et d’autre part dans une autre structure comme l’hypothalamus. En situation d’obésité morbide, nous ne mettons pas en évidence de différence d’expression des récepteurs en situation basale mais il reste à étudier leur expression après une infection sytémique induisant une forte activation de la microglie. De plus, l’inflammation centrale observée peut être le résultat de l’exacerbation de l’inflammation périphérique et donc de l’augmentation de la production de cytokines périphériques. Afin d’évaluer l’impact de l’inflammation périphérique sur l’expression centrale des cytokines, il serait interesser d’évaluer l’expression centrale des récepteurs de l’IL-6, la cytokine principalement produite dans nos modèles d’obésité. Enfin, il serait interessant d’évaluer la concentration plasmatique et l’expression du récepteur p75 soluble du TNF puisque de récentes données montrent qu’il est un des premiers marqueurs inflammatoires affectés dans une situation d’inflammation chronique (Morlat et al., 2008). Cette mesure nous permettrait éventuellement d’identifier la mise en place d’un état inflammatoire dans un contexte d’obésité modérée. 233 Nous avons également montré que ces situations d’obésité s’accompagnent d’une activation de l’IDO et de l’axe HPA, ainsi que de troubles de l’humeur et de la cognition. Or l’activation de l’IDO va entraîner d’une part la dégradation du Trp au détriment de la sérotonine, mais d’autre part la production de composés neuroactifs issus de la dégradation du Trp tels que le QUIN et le 3OH-KYN. Il a été montré que ces composés neurotoxiques favoriseraient la libération de radicaux libres entraînant la mort neuronale décrite dans les pathologies neurodégénératives telles que la maladie d’Alzheimer, la malaria, le VIH (Burudi et al., 2002; Guillemin et al., 2005b; Hansen et al., 2000). Ainsi, l’administration de KYN entraîne la mise en place de troubles de l’humeur, de façon dose-dépendante (O'Connor et al., 2008). De plus, le QUIN est un agoniste des récepteurs glutamatergiques NMDA et un certain nombre d’études indique une perturbation de la neurotransmission glutamatergique dans la symptomatologie dépressive (Muller and Schwarz, 2007). Ainsi, l’administration de MK-801, antagoniste des récepteurs NMDA et connu pour diminuer la durée d’immobilité dans le FST (Maj et al., 1992), pourrait être envisagée pour vérifier le rôle du QUIN dans l’apparition des troubles de l’humeur lors d’une stimulation du SI. De plus, il a été montré que les cerveaux des patients atteints de maladie d’Alzheimer présentent un métabolisme de la kynurénine élevé. Le blocage des récepteurs NMDA par la KYNA pourrait être responsable de l’altération de la mémoire, de l’apprentissage et de la cognition chez les patients atteints d’Alzheimer (Baran et al., 1999). Afin de vérifier l’implication des différents composés neuroactifs issus de la dégradation du Trp dans le développement des troubles de l’humeur et de la cognition, il serait intéressant de mesurer l’état d’activation et d’expression des différentes enzymes impliquées dans la voie de la KYN telles que la kynurenine 3hydroxylase ou la kynurenine aminotransférase dans nos différents modèles, ainsi que les conséquences potentielles de leur blocage sur la mise en place des différents troubles comportementaux associés à l’obésité. Des données préliminaires semblent indiquer une augmentation de l’expression de kynurenine 3-hydroxylase, plutôt neurotoxique, au détriment de celle de kynurenine aminotransférase, neuroprotectrice (Connor et al., 2008). Enfin, nous avons montré que l’intensité des troubles du comportement observés était corrélée à l’intensité de l’obésité et que ces troubles apparaissaient selon un décours temporel particulier dont les modalités restent à préciser. Afin de mieux appréhender cette évolution des troubles, il serait intéressant de réaliser une étude cinétique en analysant les paramètres immunitaires, neuroendocriniens et neurochimiques à différents moments clés du développement. De plus, comme l’intensité de l’obésité a un impact sur le développement des 234 troubles, l’étude des conséquences de l'obésité et de l'inflammation au cours du développement pré- et post-natal sur l'humeur et les performances cognitives de la descendance semble être particulièrement intéressante. En effet, au cours de la période néonatale, le cerveau du foetus est particulièrement sensible aux infections et surexprime dans ce cas des cytokines inflammatoires. Ce taux anormalement élevé de cytokines inflammatoires altère l’activité de nombreux systèmes de neurotransmission jouant un rôle clé lors du développement (Barkhudaryan and Dunn, 1999). Il a également un effet neurotoxique (Cai et al., 2000; Hagberg and Mallard, 2005; Urakubo et al., 2001) notamment via l’établissement d’une boucle d’amplification impliquant les radicaux libres oxygénés (Malek et al., 2001) auxquels le cerveau est particulièrement sensible puisqu’il est pauvre en enzyme anti-oxydante (Nishida et al., 1994). De plus, il a été montré que les cerveaux de rats nouveaux-nés étaient sensibles à l’action d’inhibiteur de la kynurenine 3-hydroxylase favorisant alors la production d’acide kynurénique (Ceresoli-Borroni et al., 2007). Les premiers résultats que nous avons obtenus dans ce type d’expériences montrent que chez des souris issues de mères obèses ayant reçu un régime enrichi, des troubles cognitifs se mettent en place précocement chez les souris mâles, mais pas chez les femelles. De plus, dans l’état actuel de nos résultats, nous n’observons pas de troubles de type anxieux ce qui laisse suggérer que, comme nous l’avons décrit dans ce travail de thèse, les symptômes de type anxieux apparaissent plus tardivement. En conclusion, ces résultats originaux permettent de mettre en évidence le rôle clé de l’inflammation associée à l’obésité dans le développement des troubles de l’humeur et de la cognition. L’élargissement de cette étude par les perspectives évoquées précédemment pourrait ainsi contribuer à l’identification de cibles moléculaires potentielles pour le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques ou nutritionnelles visant à améliorer la qualité de vie des patients obèses et prévenir au mieux le développement des pathologies comorbides associées à l’obésité. 235 236 Bibliographie 237 238 Abraham, W.C., Williams, J.M., 2008. LTP maintenance and its protein synthesis-dependence. Neurobiology of learning and memory 89, 260-268. Ader, R., Cohen, N., Felten, D., 1995. Psychoneuroimmunology: interactions between the nervous system and the immune system. Lancet 345, 99-103. Aderka, D., Le, J.M., Vilcek, J., 1989. IL-6 inhibits lipopolysaccharide-induced tumor necrosis factor production in cultured human monocytes, U937 cells, and in mice. J Immunol 143, 3517-3523. Ahima, R.S., Flier, J.S., 2000a. Adipose tissue as an endocrine organ. Trends Endocrinol Metab 11, 327-332. Ahima, R.S., Flier, J.S., 2000b. Leptin. Annual review of physiology 62, 413-437. Akanmu, M.A., Nwabudike, N.L., Ilesanmi, O.R., 2008. Analgesic, learning and memory and anxiolytic effects of insulin in mice. Behavioural brain research. Akira, S., Hirano, T., Taga, T., Kishimoto, T., 1990. Biology of multifunctional cytokines: IL 6 and related molecules (IL 1 and TNF). Faseb J 4, 2860-2867. Aloisi, F., 2001. Immune function of microglia. Glia 36, 165-179. Amar, S., Zhou, Q., Shaik-Dasthagirisaheb, Y., Leeman, S., 2007a. Diet-induced obesity in mice causes changes in immune responses and bone loss manifested by bacterial challenge. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 104, 20466-20471. Amar, S., Zhou, Q., Shaik-Dasthagirisaheb, Y., Leeman, S., 2007b. Diet-induced obesity in mice causes changes in immune responses and bone loss manifested by bacterial challenge. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A 104, 20466-20471. Anand, B.K., Brobeck, J.R., 1951. Localization of a "feeding center" in the hypothalamus of the rat. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. Society for Experimental Biology and Medicine (New York, N.Y 77, 323-324. Anderson, S.E., Cohen, P., Naumova, E.N., Jacques, P.F., Must, A., 2007. Adolescent obesity and risk for subsequent major depressive disorder and anxiety disorder: prospective evidence. Psychosomatic medicine 69, 740-747. Andre, C., Dinel, A.L., Layé, S., Castanon, N., 2008a. Diet-induced obesity in mice exacerbates neuroinflammation and sickness elicited by systemic infection. Submitted. Andre, C., O'Connor, J.C., Kelley, K.W., Lestage, J., Dantzer, R., Castanon, N., 2008b. Spatiotemporal differences in the profile of murine brain expression of proinflammatory cytokines and indoleamine 2,3-dioxygenase in response to peripheral lipopolysaccharide administration. Journal of neuroimmunology 200, 90-99. Appolinario, J.C., Bueno, J.R., Coutinho, W., 2004. Psychotropic drugs in the treatment of obesity: what promise? CNS drugs 18, 629-651. Apter, S.J., Eriksson, C.J., 2006. The role of social isolation in the effects of alcohol on corticosterone and testosterone levels of alcohol-preferring and non-preferring rats. Alcohol and alcoholism (Oxford, Oxfordshire) 41, 33-38. 239 Arango, V., Underwood, M.D., Gubbi, A.V., Mann, J.J., 1995. Localized alterations in pre- and postsynaptic serotonin binding sites in the ventrolateral prefrontal cortex of suicide victims. Brain research 688, 121-133. Archer, Z.A., Mercer, J.G., 2007. Brain responses to obesogenic diets and diet-induced obesity. The Proceedings of the Nutrition Society 66, 124-130. Armario, A., Hernandez, J., Bluethmann, H., Hidalgo, J., 1998. IL-6 deficiency leads to increased emotionality in mice: evidence in transgenic mice carrying a null mutation for IL-6. Journal of neuroimmunology 92, 160-169. Asakawa, A., Inui, A., Inui, T., Katsuura, G., Fujino, M.A., Kasuga, M., 2003. Leptin treatment ameliorates anxiety in ob/ob obese mice. Journal of diabetes and its complications 17, 105-107. Ashley, D.V., Fleury, M.O., Golay, A., Maeder, E., Leathwood, P.D., 1985. Evidence for diminished brain 5-hydroxytryptamine biosynthesis in obese diabetic and non-diabetic humans. The American journal of clinical nutrition 42, 1240-1245. Atkins, E., 1960. Pathogenesis of fever. Physiological reviews 40, 580-646. Avitsur, R., Pollak, Y., Yirmiya, R., 1997. Administration of interleukin-1 into the hypothalamic paraventricular nucleus induces febrile and behavioral effects. Neuroimmunomodulation 4, 258-265. Backhed, F., Ding, H., Wang, T., Hooper, L.V., Koh, G.Y., Nagy, A., Semenkovich, C.F., Gordon, J.I., 2004. The gut microbiota as an environmental factor that regulates fat storage. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 101, 15718-15723. Backhed, F., Manchester, J.K., Semenkovich, C.F., Gordon, J.I., 2007. Mechanisms underlying the resistance to diet-induced obesity in germ-free mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 104, 979-984. Badawy, A.A., Evans, M., 1981. Inhibition of rat liver tryptophan pyrrolase activity and elevation of brain tryptophan concentration by administration of antidepressants. Biochemical pharmacology 30, 1211-1216. Baddeley, A., 2000. The episodic buffer: a new component of working memory? Trends in cognitive sciences 4, 417-423. Bado, A., Levasseur, S., Attoub, S., Kermorgant, S., Laigneau, J.P., Bortoluzzi, M.N., Moizo, L., Lehy, T., Guerre-Millo, M., Le Marchand-Brustel, Y., Lewin, M.J., 1998. The stomach is a source of leptin. Nature 394, 790-793. Baldwin, D., Rudge, S., 1995. The role of serotonin in depression and anxiety. International clinical psychopharmacology 9 Suppl 4, 41-45. Bale, T.L., 2006. Stress sensitivity and the development of affective disorders. Hormones and behavior 50, 529-533. Ballou, S.P., Lozanski, G., 1992. Induction of inflammatory cytokine release from cultured human monocytes by C-reactive protein. Cytokine 4, 361-368. 240 Banki, C.M., Bissette, G., Arato, M., O'Connor, L., Nemeroff, C.B., 1987. CSF corticotropin-releasing factor-like immunoreactivity in depression and schizophrenia. The American journal of psychiatry 144, 873-877. Banks, W.A., Kastin, A.J., Gutierrez, E.G., 1994. Penetration of interleukin-6 across the murine bloodbrain barrier. Neuroscience letters 179, 53-56. Banks, W.A., Ortiz, L., Plotkin, S.R., Kastin, A.J., 1991. Human interleukin (IL) 1 alpha, murine IL-1 alpha and murine IL-1 beta are transported from blood to brain in the mouse by a shared saturable mechanism. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics 259, 988-996. Baran, H., Jellinger, K., Deecke, L., 1999. Kynurenine metabolism in Alzheimer's disease. J Neural Transm 106, 165-181. Barat, P., Duclos, M., Moisan, M.P., Mormede, P., 2008. [Involvement of hypothalamopituitary adrenal axis in abdominal obesity]. Arch Pediatr 15, 170-178. Barkhudaryan, N., Dunn, A.J., 1999. Molecular mechanisms of actions of interleukin-6 on the brain, with special reference to serotonin and the hypothalamo-pituitary-adrenocortical axis. Neurochemical research 24, 1169-1180. Barrett-Connor, E., Edelstein, S., Corey-Bloom, J., Wiederholt, W., 1998. Weight loss precedes dementia in community-dwelling older adults. The journal of nutrition, health & aging 2, 113-114. Barrientos, R.M., Higgins, E.A., Biedenkapp, J.C., Sprunger, D.B., Wright-Hardesty, K.J., Watkins, L.R., Rudy, J.W., Maier, S.F., 2006. Peripheral infection and aging interact to impair hippocampal memory consolidation. Neurobiology of aging 27, 723-732. Basdevant, A., Laville, M., Ziegler, O., 2002. Recommendations for the diagnosis, the prevention and the treatment of obesity. Diabetes Metab 28, 146-150. Baskin, D.G., Hahn, T.M., Schwartz, M.W., 1999. Leptin sensitive neurons in the hypothalamus. Hormone and metabolic research. Hormon- und Stoffwechselforschung 31, 345-350. Bastard, J.P., Jardel, C., Bruckert, E., Vidal, H., Hainque, B., 2000. Variations in plasma soluble tumour necrosis factor receptors after diet-induced weight loss in obesity. Diabetes, obesity & metabolism 2, 323-325. Bastard, J.P., Jardel, C., Delattre, J., Hainque, B., Bruckert, E., Oberlin, F., 1999. Evidence for a link between adipose tissue interleukin-6 content and serum C-reactive protein concentrations in obese subjects. Circulation 99, 2221-2222. Batchelor, B.R., Penner, J., Hirsch, J., Stern, J.S., 1976. Effects of hypophysectomy and acute growth hormone treatment upon glucose metabolism in adipose tissues and isolated adipocytes of rats. Hormone and metabolic research. Hormon- und Stoffwechselforschung 8, 24-33. Baumann, H., Gauldie, J., 1994. The acute phase response. Immunology today 15, 74-80. Baumann, H., Morella, K.K., White, D.W., Dembski, M., Bailon, P.S., Kim, H., Lai, C.F., Tartaglia, L.A., 1996. The full-length leptin receptor has signaling capabilities of interleukin 6-type cytokine 241 receptors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 93, 8374-8378. Baybutt, H.N., Holsboer, F., 1990. Inhibition of macrophage differentiation and function by cortisol. Endocrinology 127, 476-480. Bear, M.F., Malenka, R.C., 1994. Synaptic plasticity: LTP and LTD. Current opinion in neurobiology 4, 389-399. Becker, E.S., Margraf, J., Turke, V., Soeder, U., Neumer, S., 2001. Obesity and mental illness in a representative sample of young women. Int J Obes Relat Metab Disord 25 Suppl 1, S5-9. Bedoui, S., Velkoska, E., Bozinovski, S., Jones, J.E., Anderson, G.P., Morris, M.J., 2005. Unaltered TNF-alpha production by macrophages and monocytes in diet-induced obesity in the rat. Journal of inflammation (London, England) 2, 2. Bellinger, F.P., Madamba, S., Siggins, G.R., 1993. Interleukin 1 beta inhibits synaptic strength and long-term potentiation in the rat CA1 hippocampus. Brain research 628, 227-234. Bellinger, F.P., Madamba, S.G., Campbell, I.L., Siggins, G.R., 1995. Reduced long-term potentiation in the dentate gyrus of transgenic mice with cerebral overexpression of interleukin-6. Neuroscience letters 198, 95-98. Belzung, C., Griebel, G., 2001. Measuring normal and pathological anxiety-like behaviour in mice: a review. Behavioural brain research 125, 141-149. Benveniste, E.N., Tang, L.P., Law, R.M., 1995. Differential regulation of astrocyte TNF-alpha expression by the cytokines TGF-beta, IL-6 and IL-10. Int J Dev Neurosci 13, 341-349. Berczi, I., Bertok, L., Chow, D.A., 2000. Natural immunity and neuroimmune host defense. Annals of the New York Academy of Sciences 917, 248-257. Berkenbosch, F., van Oers, J., del Rey, A., Tilders, F., Besedovsky, H., 1987. Corticotropin-releasing factor-producing neurons in the rat activated by interleukin-1. Science (New York, N.Y 238, 524-526. Berkowitz, D.E., Brown, D., Lee, K.M., Emala, C., Palmer, D., An, Y., Breslow, M., 1998. Endotoxin-induced alteration in the expression of leptin and beta3-adrenergic receptor in adipose tissue. The American journal of physiology 274, E992-997. Berraondo, B., Bonafonte, A., Fernandez-Otero, M.P., Martinez, J.A., 1997. Effects on energy utilization of a beta3-adrenergic agonist in rats fed on a cafeteria diet. Eat Weight Disord 2, 130-137. Berthoud, H.R., 2002. Multiple neural systems controlling food intake and body weight. Neuroscience and biobehavioral reviews 26, 393-428. Besedovsky, H.O., del Rey, A., Klusman, I., Furukawa, H., Monge Arditi, G., Kabiersch, A., 1991. Cytokines as modulators of the hypothalamus-pituitary-adrenal axis. The Journal of steroid biochemistry and molecular biology 40, 613-618. Bjorbaek, C., Elmquist, J.K., Frantz, J.D., Shoelson, S.E., Flier, J.S., 1998. Identification of SOCS-3 as a potential mediator of central leptin resistance. Molecular cell 1, 619-625. 242 Bjorntorp, P., Rosmond, R., 2000. Obesity and cortisol. Nutrition (Burbank, Los Angeles County, Calif 16, 924-936. Blouin, K., Boivin, A., Tchernof, A., 2008. Androgens and body fat distribution. The Journal of steroid biochemistry and molecular biology 108, 272-280. Bluthe, R.M., Beaudu, C., Kelley, K.W., Dantzer, R., 1995. Differential effects of IL-1ra on sickness behavior and weight loss induced by IL-1 in rats. Brain research 677, 171-176. Bluthe, R.M., Dantzer, R., Kelley, K.W., 1992. Effects of interleukin-1 receptor antagonist on the behavioral effects of lipopolysaccharide in rat. Brain research 573, 318-320. Bluthe, R.M., Dantzer, R., Kelley, K.W., 1997. Central mediation of the effects of interleukin-1 on social exploration and body weight in mice. Psychoneuroendocrinology 22, 1-11. Bluthe, R.M., Laye, S., Michaud, B., Combe, C., Dantzer, R., Parnet, P., 2000a. Role of interleukin1beta and tumour necrosis factor-alpha in lipopolysaccharide-induced sickness behaviour: a study with interleukin-1 type I receptor-deficient mice. The European journal of neuroscience 12, 4447-4456. Bluthe, R.M., Michaud, B., Kelley, K.W., Dantzer, R., 1996a. Vagotomy attenuates behavioural effects of interleukin-1 injected peripherally but not centrally. Neuroreport 7, 1485-1488. Bluthe, R.M., Michaud, B., Kelley, K.W., Dantzer, R., 1996b. Vagotomy blocks behavioural effects of interleukin-1 injected via the intraperitoneal route but not via other systemic routes. Neuroreport 7, 2823-2827. Bluthe, R.M., Michaud, B., Poli, V., Dantzer, R., 2000b. Role of IL-6 in cytokine-induced sickness behavior: a study with IL-6 deficient mice. Physiology & behavior 70, 367-373. Bluthe, R.M., Pawlowski, M., Suarez, S., Parnet, P., Pittman, Q., Kelley, K.W., Dantzer, R., 1994. Synergy between tumor necrosis factor alpha and interleukin-1 in the induction of sickness behavior in mice. Psychoneuroendocrinology 19, 197-207. Bobrowski, W.F., McDuffie, J.E., Sobocinski, G., Chupka, J., Olle, E., Bowman, A., Albassam, M., 2005. Comparative methods for multiplex analysis of cytokine protein expression in plasma of lipopolysaccharide-treated mice. Cytokine 32, 194-198. Bonaccorso, S., Puzella, A., Marino, V., Pasquini, M., Biondi, M., Artini, M., Almerighi, C., Levrero, M., Egyed, B., Bosmans, E., Meltzer, H.Y., Maes, M., 2001. Immunotherapy with interferon-alpha in patients affected by chronic hepatitis C induces an intercorrelated stimulation of the cytokine network and an increase in depressive and anxiety symptoms. Psychiatry research 105, 45-55. Boulant, J.A., 2000. Role of the preoptic-anterior hypothalamus in thermoregulation and fever. Clin Infect Dis 31 Suppl 5, S157-161. Braddon, F.E., Rodgers, B., Wadsworth, M.E., Davies, J.M., 1986. Onset of obesity in a 36 year birth cohort study. British medical journal (Clinical research ed 293, 299-303. Braida, D., Sacerdote, P., Panerai, A.E., Bianchi, M., Aloisi, A.M., Iosue, S., Sala, M., 2004. Cognitive function in young and adult IL (interleukin)-6 deficient mice. Behavioural brain research 153, 423-429. 243 Brandacher, G., Hoeller, E., Fuchs, D., Weiss, H.G., 2007. Chronic immune activation underlies morbid obesity: is IDO a key player? Current drug metabolism 8, 289-295. Brandacher, G., Winkler, C., Aigner, F., Schwelberger, H., Schroecksnadel, K., Margreiter, R., Fuchs, D., Weiss, H.G., 2006. Bariatric surgery cannot prevent tryptophan depletion due to chronic immune activation in morbidly obese patients. Obes Surg 16, 541-548. Breum, L., Rasmussen, M.H., Hilsted, J., Fernstrom, J.D., 2003. Twenty-four-hour plasma tryptophan concentrations and ratios are below normal in obese subjects and are not normalized by substantial weight reduction. The American journal of clinical nutrition 77, 1112-1118. Broberger, C., Johansen, J., Johansson, C., Schalling, M., Hokfelt, T., 1998. The neuropeptide Y/agouti gene-related protein (AGRP) brain circuitry in normal, anorectic, and monosodium glutamate-treated mice. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 95, 15043-15048. Brochu, S., Olivier, M., Rivest, S., 1999. Neuronal activity and transcription of proinflammatory cytokines, IkappaBalpha, and iNOS in the mouse brain during acute endotoxemia and chronic infection with Trypanosoma brucei brucei. Journal of neuroscience research 57, 801-816. Brouckaert, P., Libert, C., Everaerdt, B., Takahashi, N., Cauwels, A., Fiers, W., 1993. Tumor necrosis factor, its receptors and the connection with interleukin 1 and interleukin 6. Immunobiology 187, 317329. Brown, R.R., Lee, C.M., Kohler, P.C., Hank, J.A., Storer, B.E., Sondel, P.M., 1989. Altered tryptophan and neopterin metabolism in cancer patients treated with recombinant interleukin 2. Cancer research 49, 4941-4944. Brugman, S., Klatter, F.A., Visser, J.T., Wildeboer-Veloo, A.C., Harmsen, H.J., Rozing, J., Bos, N.A., 2006. Antibiotic treatment partially protects against type 1 diabetes in the Bio-Breeding diabetesprone rat. Is the gut flora involved in the development of type 1 diabetes? Diabetologia 49, 2105-2108. Brunda, M.J., 1994. Interleukin-12. Journal of leukocyte biology 55, 280-288. Buhot, M.C., Malleret, G., Segu, L., 1999. Serotonin receptors and cognitive behaviour--an update. IDrugs 2, 426-437. Bullo, M., Garcia-Lorda, P., Megias, I., Salas-Salvado, J., 2003. Systemic inflammation, adipose tissue tumor necrosis factor, and leptin expression. Obes Res 11, 525-531. Burudi, E.M., Marcondes, M.C., Watry, D.D., Zandonatti, M., Taffe, M.A., Fox, H.S., 2002. Regulation of indoleamine 2,3-dioxygenase expression in simian immunodeficiency virus-infected monkey brains. Journal of virology 76, 12233-12241. Byrne, G.I., Lehmann, L.K., Landry, G.J., 1986. Induction of tryptophan catabolism is the mechanism for gamma-interferon-mediated inhibition of intracellular Chlamydia psittaci replication in T24 cells. Infection and immunity 53, 347-351. Cabre, E., Gassull, M.A., 2003. Nutritional and metabolic issues in inflammatory bowel disease. Current opinion in clinical nutrition and metabolic care 6, 569-576. 244 Cai, Z., Pan, Z.L., Pang, Y., Evans, O.B., Rhodes, P.G., 2000. Cytokine induction in fetal rat brains and brain injury in neonatal rats after maternal lipopolysaccharide administration. Pediatric research 47, 64-72. Cancello, R., Clement, K., 2006. Is obesity an inflammatory illness? Role of low-grade inflammation and macrophage infiltration in human white adipose tissue. Bjog 113, 1141-1147. Cani, P.D., Amar, J., Iglesias, M.A., Poggi, M., Knauf, C., Bastelica, D., Neyrinck, A.M., Fava, F., Tuohy, K.M., Chabo, C., Waget, A., Delmee, E., Cousin, B., Sulpice, T., Chamontin, B., Ferrieres, J., Tanti, J.F., Gibson, G.R., Casteilla, L., Delzenne, N.M., Alessi, M.C., Burcelin, R., 2007a. Metabolic endotoxemia initiates obesity and insulin resistance. Diabetes 56, 1761-1772. Cani, P.D., Delzenne, N.M., Amar, J., Burcelin, R., 2008. Role of gut microflora in the development of obesity and insulin resistance following high-fat diet feeding. Pathologie-biologie 56, 305-309. Cani, P.D., Neyrinck, A.M., Fava, F., Knauf, C., Burcelin, R.G., Tuohy, K.M., Gibson, G.R., Delzenne, N.M., 2007b. Selective increases of bifidobacteria in gut microflora improve high-fat-dietinduced diabetes in mice through a mechanism associated with endotoxaemia. Diabetologia 50, 23742383. Capuron, L., Dantzer, R., 2003. Cytokines and depression: the need for a new paradigm. Brain, behavior, and immunity 17 Suppl 1, S119-124. Capuron, L., Lamarque, D., Dantzer, R., Goodall, G., 1999. Attentional and mnemonic deficits associated with infectious disease in humans. Psychological medicine 29, 291-297. Capuron, L., Raison, C.L., Musselman, D.L., Lawson, D.H., Nemeroff, C.B., Miller, A.H., 2003. Association of exaggerated HPA axis response to the initial injection of interferon-alpha with development of depression during interferon-alpha therapy. The American journal of psychiatry 160, 1342-1345. Capuron, L., Ravaud, A., Dantzer, R., 2001. Timing and specificity of the cognitive changes induced by interleukin-2 and interferon-alpha treatments in cancer patients. Psychosomatic medicine 63, 376386. Capuron, L., Su, S., Miller, A.H., Bremner, J.D., Goldberg, J., Vogt, G.J., Maisano, C., Jones, L., Murrah, N.V., Vaccarino, V., 2008. Depressive symptoms and metabolic syndrome: is inflammation the underlying link? Biological psychiatry 64, 896-900. Carlin, J.M., Borden, E.C., Sondel, P.M., Byrne, G.I., 1989. Interferon-induced indoleamine 2,3dioxygenase activity in human mononuclear phagocytes. Journal of leukocyte biology 45, 29-34. Carpenter, K.M., Hasin, D.S., Allison, D.B., Faith, M.S., 2000. Relationships between obesity and DSM-IV major depressive disorder, suicide ideation, and suicide attempts: results from a general population study. American journal of public health 90, 251-257. Carroll, L., Voisey, J., van Daal, A., 2004. Mouse models of obesity. Clinics in dermatology 22, 345349. 245 Castanon, N., Medina, C., Mormede, C., Dantzer, R., 2004. Chronic administration of tianeptine balances lipopolysaccharide-induced expression of cytokines in the spleen and hypothalamus of rats. Psychoneuroendocrinology 29, 778-790. Castonguay, T.W., Dallman, M.F., Stern, J.S., 1986. Some metabolic and behavioral effects of adrenalectomy on obese Zucker rats. The American journal of physiology 251, R923-933. Cavaillon, J.M., 1993. [Contribution of cytokines to inflammatory mechanisms]. Pathologie-biologie 41, 799-811. Cavaillon, J.M., Haeffner-Cavaillon, N., 1993. [Cytokines and inflammation]. La Revue du praticien 43, 547-552. Ceresoli-Borroni, G., Guidetti, P., Amori, L., Pellicciari, R., Schwarcz, R., 2007. Perinatal kynurenine 3-hydroxylase inhibition in rodents: pathophysiological implications. Journal of neuroscience research 85, 845-854. Chai, Z., Gatti, S., Toniatti, C., Poli, V., Bartfai, T., 1996. Interleukin (IL)-6 gene expression in the central nervous system is necessary for fever response to lipopolysaccharide or IL-1 beta: a study on IL-6-deficient mice. The Journal of experimental medicine 183, 311-316. Chantry, D., Turner, M., Abney, E., Feldmann, M., 1989. Modulation of cytokine production by transforming growth factor-beta. J Immunol 142, 4295-4300. Chaouloff, F., Berton, O., Mormede, P., 1999. Serotonin and stress. Neuropsychopharmacology 21, 28S-32S. Charles, M.A., Eschwege, E., Basdevant, A., 2008. Monitoring the Obesity Epidemic in France: The Obepi Surveys 1997-2006. Obesity (Silver Spring, Md. Charnay, Y., Cusin, I., Vallet, P.G., Muzzin, P., Rohner-Jeanrenaud, F., Bouras, C., 2000. Intracerebroventricular infusion of leptin decreases serotonin transporter binding sites in the frontal cortex of the rat. Neuroscience letters 283, 89-92. Chen, A., Mumick, S., Zhang, C., Lamb, J., Dai, H., Weingarth, D., Mudgett, J., Chen, H., MacNeil, D.J., Reitman, M.L., Qian, S., 2005. Diet induction of monocyte chemoattractant protein-1 and its impact on obesity. Obes Res 13, 1311-1320. Chen, G., Chen, K.S., Knox, J., Inglis, J., Bernard, A., Martin, S.J., Justice, A., McConlogue, L., Games, D., Freedman, S.B., Morris, R.G., 2000. A learning deficit related to age and beta-amyloid plaques in a mouse model of Alzheimer's disease. Nature 408, 975-979. Chen, J., Buchanan, J.B., Sparkman, N.L., Godbout, J.P., Freund, G.G., Johnson, R.W., 2008. Neuroinflammation and disruption in working memory in aged mice after acute stimulation of the peripheral innate immune system. Brain, behavior, and immunity 22, 301-311. Chen, Q., Carroll, H.P., Gadina, M., 2006. The newest interleukins: recent additions to the evergrowing cytokine family. Vitamins and hormones 74, 207-228. 246 Chourbaji, S., Urani, A., Inta, I., Sanchis-Segura, C., Brandwein, C., Zink, M., Schwaninger, M., Gass, P., 2006. IL-6 knockout mice exhibit resistance to stress-induced development of depression-like behaviors. Neurobiology of disease 23, 587-594. Chrousos, G.P., Kino, T., 2007. Glucocorticoid action networks and complex psychiatric and/or somatic disorders. Stress (Amsterdam, Netherlands) 10, 213-219. Clement, K., Vaisse, C., Lahlou, N., Cabrol, S., Pelloux, V., Cassuto, D., Gourmelen, M., Dina, C., Chambaz, J., Lacorte, J.M., Basdevant, A., Bougneres, P., Lebouc, Y., Froguel, P., Guy-Grand, B., 1998. A mutation in the human leptin receptor gene causes obesity and pituitary dysfunction. Nature 392, 398-401. Clement, K., Viguerie, N., Poitou, C., Carette, C., Pelloux, V., Curat, C.A., Sicard, A., Rome, S., Benis, A., Zucker, J.D., Vidal, H., Laville, M., Barsh, G.S., Basdevant, A., Stich, V., Cancello, R., Langin, D., 2004. Weight loss regulates inflammation-related genes in white adipose tissue of obese subjects. Faseb J 18, 1657-1669. Coleman, D.L., Burkart, D.L., 1977. Plasma corticosterone concentrations in diabetic (db) mice. Diabetologia 13, 25-26. Collier, G.H., 1985. Satiety: an ecological perspective. Brain research bulletin 14, 693-700. Collin, M., Hakansson-Ovesjo, M.L., Misane, I., Ogren, S.O., Meister, B., 2000. Decreased 5-HT transporter mRNA in neurons of the dorsal raphe nucleus and behavioral depression in the obese leptin-deficient ob/ob mouse. Brain Res Mol Brain Res 81, 51-61. Collison, L.W., Workman, C.J., Kuo, T.T., Boyd, K., Wang, Y., Vignali, K.M., Cross, R., Sehy, D., Blumberg, R.S., Vignali, D.A., 2007. The inhibitory cytokine IL-35 contributes to regulatory T-cell function. Nature 450, 566-569. Connor, T.J., Song, C., Leonard, B.E., Merali, Z., Anisman, H., 1998. An assessment of the effects of central interleukin-1beta, -2, -6, and tumor necrosis factor-alpha administration on some behavioural, neurochemical, endocrine and immune parameters in the rat. Neuroscience 84, 923-933. Connor, T.J., Starr, N., O'Sullivan, J.B., Harkin, A., 2008. Induction of indolamine 2,3-dioxygenase and kynurenine 3-monooxygenase in rat brain following a systemic inflammatory challenge: a role for IFN-gamma? Neuroscience letters 441, 29-34. Conrad, C.D., Galea, L.A., Kuroda, Y., McEwen, B.S., 1996. Chronic stress impairs rat spatial memory on the Y maze, and this effect is blocked by tianeptine pretreatment. Behavioral neuroscience 110, 1321-1334. Considine, R.V., Sinha, M.K., Heiman, M.L., Kriauciunas, A., Stephens, T.W., Nyce, M.R., Ohannesian, J.P., Marco, C.C., McKee, L.J., Bauer, T.L., et al., 1996. Serum immunoreactive-leptin concentrations in normal-weight and obese humans. The New England journal of medicine 334, 292295. Coppack, S.W., 2001. Pro-inflammatory cytokines and adipose tissue. The Proceedings of the Nutrition Society 60, 349-356. 247 Corbeau, J., 1992. Rituels alimentaires et mutations sociales. Cah Int Sociol XCII, 101-120. Cottam, D.R., Mattar, S.G., Barinas-Mitchell, E., Eid, G., Kuller, L., Kelley, D.E., Schauer, P.R., 2004. The chronic inflammatory hypothesis for the morbidity associated with morbid obesity: implications and effects of weight loss. Obes Surg 14, 589-600. Cournot, M., Marquie, J.C., Ansiau, D., Martinaud, C., Fonds, H., Ferrieres, J., Ruidavets, J.B., 2006. Relation between body mass index and cognitive function in healthy middle-aged men and women. Neurology 67, 1208-1214. Cowan, N., 2008. What are the differences between long-term, short-term, and working memory? Progress in brain research 169, 323-338. Cryan, J.F., Markou, A., Lucki, I., 2002. Assessing antidepressant activity in rodents: recent developments and future needs. Trends in pharmacological sciences 23, 238-245. Cryan, J.F., Mombereau, C., 2004. In search of a depressed mouse: utility of models for studying depression-related behavior in genetically modified mice. Molecular psychiatry 9, 326-357. Cunningham, A.J., Murray, C.A., O'Neill, L.A., Lynch, M.A., O'Connor, J.J., 1996. Interleukin-1 beta (IL-1 beta) and tumour necrosis factor (TNF) inhibit long-term potentiation in the rat dentate gyrus in vitro. Neuroscience letters 203, 17-20. Cunningham, C., Campion, S., Lunnon, K., Murray, C.L., Woods, J.F., Deacon, R.M., Rawlins, J.N., Perry, V.H., 2008. Systemic Inflammation Induces Acute Behavioral and Cognitive Changes and Accelerates Neurodegenerative Disease. Biological psychiatry. Cunningham, C., Deacon, R.M., Chan, K., Boche, D., Rawlins, J.N., Perry, V.H., 2005. Neuropathologically distinct prion strains give rise to similar temporal profiles of behavioral deficits. Neurobiology of disease 18, 258-269. Cuthbertson, D.P., 1982. The metabolic response to injury and other related explorations in the field of protein metabolism: an autobiographical account. Scottish medical journal 27, 158-171. Dairam, A., Muller, A.C., Daya, S., 2007. Non-steroidal anti-inflammatory agents, tolmetin and sulindac attenuate quinolinic acid (QA)-induced oxidative stress in primary hippocampal neurons and reduce QA-induced spatial reference memory deficits in male Wistar rats. Life sciences 80, 14311438. Dandona, P., Aljada, A., Bandyopadhyay, A., 2004. Inflammation: the link between insulin resistance, obesity and diabetes. Trends in immunology 25, 4-7. Dantzer, R., 1994. How do cytokines say hello to the brain? Neural versus humoral mediation. European cytokine network 5, 271-273. Dantzer, R., 2001. Cytokine-induced sickness behavior: where do we stand? Brain, behavior, and immunity 15, 7-24. Dantzer, R., 2006. Cytokine, sickness behavior, and depression. Neurologic clinics 24, 441-460. Dantzer, R., O'Connor, J.C., Freund, G.G., Johnson, R.W., Kelley, K.W., 2008. From inflammation to sickness and depression: when the immune system subjugates the brain. Nat Rev Neurosci 9, 46-56. 248 Dantzer, R., Wollman, E., Vitkovic, L., Yirmiya, R., 1999. Cytokines and depression: fortuitous or causative association? Molecular psychiatry 4, 328-332. de Kloet, E.R., de Jong, I.E., Oitzl, M.S., 2008. Neuropharmacology of glucocorticoids: focus on emotion, cognition and cocaine. European journal of pharmacology 585, 473-482. De Souza, C.T., Araujo, E.P., Bordin, S., Ashimine, R., Zollner, R.L., Boschero, A.C., Saad, M.J., Velloso, L.A., 2005. Consumption of a fat-rich diet activates a proinflammatory response and induces insulin resistance in the hypothalamus. Endocrinology 146, 4192-4199. Dellu, F., Contarino, A., Simon, H., Koob, G.F., Gold, L.H., 2000. Genetic differences in response to novelty and spatial memory using a two-trial recognition task in mice. Neurobiol Learn Mem 73, 3148. Dellu, F., Mayo, W., Cherkaoui, J., Le Moal, M., Simon, H., 1992. A two-trial memory task with automated recording: study in young and aged rats. Brain Res 588, 132-139. Dendorfer, U., Oettgen, P., Libermann, T.A., 1994. Multiple regulatory elements in the interleukin-6 gene mediate induction by prostaglandins, cyclic AMP, and lipopolysaccharide. Molecular and cellular biology 14, 4443-4454. Denicoff, K.D., Rubinow, D.R., Papa, M.Z., Simpson, C., Seipp, C.A., Lotze, M.T., Chang, A.E., Rosenstein, D., Rosenberg, S.A., 1987. The neuropsychiatric effects of treatment with interleukin-2 and lymphokine-activated killer cells. Annals of internal medicine 107, 293-300. Dinarello, C.A., Ikejima, T., Warner, S.J., Orencole, S.F., Lonnemann, G., Cannon, J.G., Libby, P., 1987. Interleukin 1 induces interleukin 1. I. Induction of circulating interleukin 1 in rabbits in vivo and in human mononuclear cells in vitro. J Immunol 139, 1902-1910. Dong, Y., Benveniste, E.N., 2001. Immune function of astrocytes. Glia 36, 180-190. Dray, A., Perkins, M., 1993. Bradykinin and inflammatory pain. Trends in neurosciences 16, 99-104. Drewnowski, A., 2007. The real contribution of added sugars and fats to obesity. Epidemiologic reviews 29, 160-171. Du, X., Poltorak, A., Silva, M., Beutler, B., 1999. Analysis of Tlr4-mediated LPS signal transduction in macrophages by mutational modification of the receptor. Blood cells, molecules & diseases 25, 328-338. Duclos, M., Corcuff, J.B., Etcheverry, N., Rashedi, M., Tabarin, A., Roger, P., 1999. Abdominal obesity increases overnight cortisol excretion. Journal of endocrinological investigation 22, 465-471. Duclos, M., Gatta, B., Corcuff, J.B., Rashedi, M., Pehourcq, F., Roger, P., 2001. Fat distribution in obese women is associated with subtle alterations of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity and sensitivity to glucocorticoids. Clinical endocrinology 55, 447-454. Duclos, M., Timofeeva, E., Michel, C., Richard, D., 2005. Corticosterone-dependent metabolic and neuroendocrine abnormalities in obese Zucker rats in relation to feeding. Am J Physiol Endocrinol Metab 288, E254-266. 249 Dunn, A.J., 1988a. Stress-related changes in cerebral catecholamine and indoleamine metabolism: lack of effect of adrenalectomy and corticosterone. J Neurochem 51, 406-412. Dunn, A.J., 1988b. Systemic interleukin-1 administration stimulates hypothalamic norepinephrine metabolism parallelling the increased plasma corticosterone. Life sciences 43, 429-435. Dunn, A.J., 2000. Effects of the IL-1 receptor antagonist on the IL-1- and endotoxin-induced activation of the HPA axis and cerebral biogenic amines in mice. Neuroimmunomodulation 7, 36-45. Dunn, A.J., Swiergiel, A.H., 2005. Effects of interleukin-1 and endotoxin in the forced swim and tail suspension tests in mice. Pharmacology, biochemistry, and behavior 81, 688-693. Dursun, S.M., Blackburn, J.R., Kutcher, S.P., 2001. An exploratory approach to the serotonergic hypothesis of depression: bridging the synaptic gap. Medical hypotheses 56, 235-243. Eison, A.S., Eison, M.S., 1994. Serotonergic mechanisms in anxiety. Progress in neuropsychopharmacology & biological psychiatry 18, 47-62. Ek, M., Kurosawa, M., Lundeberg, T., Ericsson, A., 1998. Activation of vagal afferents after intravenous injection of interleukin-1beta: role of endogenous prostaglandins. J Neurosci 18, 94719479. Elias, M.F., Elias, P.K., Sullivan, L.M., Wolf, P.A., D'Agostino, R.B., 2005. Obesity, diabetes and cognitive deficit: The Framingham Heart Study. Neurobiology of aging 26 Suppl 1, 11-16. Ellacott, K.L., Murphy, J.G., Marks, D.L., Cone, R.D., 2007. Obesity-induced inflammation in white adipose tissue is attenuated by loss of melanocortin-3 receptor signaling. Endocrinology 148, 61866194. Elmquist, J.K., Bjorbaek, C., Ahima, R.S., Flier, J.S., Saper, C.B., 1998. Distributions of leptin receptor mRNA isoforms in the rat brain. J Comp Neurol 395, 535-547. Elmquist, J.K., Breder, C.D., Sherin, J.E., Scammell, T.E., Hickey, W.F., Dewitt, D., Saper, C.B., 1997. Intravenous lipopolysaccharide induces cyclooxygenase 2-like immunoreactivity in rat brain perivascular microglia and meningeal macrophages. J Comp Neurol 381, 119-129. Elmquist, J.K., Elias, C.F., Saper, C.B., 1999. From lesions to leptin: hypothalamic control of food intake and body weight. Neuron 22, 221-232. Elmquist, J.K., Saper, C.B., 1996. Activation of neurons projecting to the paraventricular hypothalamic nucleus by intravenous lipopolysaccharide. J Comp Neurol 374, 315-331. Ericsson, A., Kovacs, K.J., Sawchenko, P.E., 1994. A functional anatomical analysis of central pathways subserving the effects of interleukin-1 on stress-related neuroendocrine neurons. J Neurosci 14, 897-913. Escriba, P.V., Ozaita, A., Garcia-Sevilla, J.A., 2004. Increased mRNA expression of alpha2Aadrenoceptors, serotonin receptors and mu-opioid receptors in the brains of suicide victims. Neuropsychopharmacology 29, 1512-1521. Faggioni, R., Fantuzzi, G., Fuller, J., Dinarello, C.A., Feingold, K.R., Grunfeld, C., 1998. IL-1 beta mediates leptin induction during inflammation. The American journal of physiology 274, R204-208. 250 Faggioni, R., Feingold, K.R., Grunfeld, C., 2001. Leptin regulation of the immune response and the immunodeficiency of malnutrition. Faseb J 15, 2565-2571. Fain, J.N., Bahouth, S.W., Madan, A.K., 2004. TNFalpha release by the nonfat cells of human adipose tissue. Int J Obes Relat Metab Disord 28, 616-622. Faith, M.S., Matz, P.E., Jorge, M.A., 2002. Obesity-depression associations in the population. Journal of psychosomatic research 53, 935-942. Fantuzzi, G., Faggioni, R., 2000. Leptin in the regulation of immunity, inflammation, and hematopoiesis. Journal of leukocyte biology 68, 437-446. Farooqi, I.S., Matarese, G., Lord, G.M., Keogh, J.M., Lawrence, E., Agwu, C., Sanna, V., Jebb, S.A., Perna, F., Fontana, S., Lechler, R.I., DePaoli, A.M., O'Rahilly, S., 2002. Beneficial effects of leptin on obesity, T cell hyporesponsiveness, and neuroendocrine/metabolic dysfunction of human congenital leptin deficiency. The Journal of clinical investigation 110, 1093-1103. Fattori, E., Cappelletti, M., Costa, P., Sellitto, C., Cantoni, L., Carelli, M., Faggioni, R., Fantuzzi, G., Ghezzi, P., Poli, V., 1994. Defective inflammatory response in interleukin 6-deficient mice. The Journal of experimental medicine 180, 1243-1250. Fei, H., Okano, H.J., Li, C., Lee, G.H., Zhao, C., Darnell, R., Friedman, J.M., 1997. Anatomic localization of alternatively spliced leptin receptors (Ob-R) in mouse brain and other tissues. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 94, 7001-7005. Fiers, W., 1991. Molecular biology approaches to cancer and to cancer therapy. Recent results in cancer research. Fortschritte der Krebsforschung 122, 1-8. Fiorentino, D.F., Zlotnik, A., Mosmann, T.R., Howard, M., O'Garra, A., 1991. IL-10 inhibits cytokine production by activated macrophages. J Immunol 147, 3815-3822. Firk, C., Markus, C.R., 2007. Review: Serotonin by stress interaction: a susceptibility factor for the development of depression? Journal of psychopharmacology (Oxford, England) 21, 538-544. Franklin, C.A., Karkeck, J., 1989. Weight loss and senile dementia in an institutionalized elderly population. Journal of the American Dietetic Association 89, 790-792. Fraser, R., Ingram, M.C., Anderson, N.H., Morrison, C., Davies, E., Connell, J.M., 1999. Cortisol effects on body mass, blood pressure, and cholesterol in the general population. Hypertension 33, 1364-1368. Frenois, F., Moreau, M., O'Connor, J., Lawson, M., Micon, C., Lestage, J., Kelley, K.W., Dantzer, R., Castanon, N., 2007. Lipopolysaccharide induces delayed FosB/DeltaFosB immunostaining within the mouse extended amygdala, hippocampus and hypothalamus, that parallel the expression of depressivelike behavior. Psychoneuroendocrinology 32, 516-531. Fried, S.K., Ricci, M.R., Russell, C.D., Laferrere, B., 2000. Regulation of leptin production in humans. J Nutr 130, 3127S-3131S. Friedman, J.M., 2000. Obesity in the new millennium. Nature 404, 632-634. 251 Friedman, J.M., 2002. The function of leptin in nutrition, weight, and physiology. Nutrition reviews 60, S1-14; discussion S68-84, 85-17. Friedman, J.M., Halaas, J.L., 1998. Leptin and the regulation of body weight in mammals. Nature 395, 763-770. Frommberger, U.H., Bauer, J., Haselbauer, P., Fraulin, A., Riemann, D., Berger, M., 1997. Interleukin-6-(IL-6) plasma levels in depression and schizophrenia: comparison between the acute state and after remission. European archives of psychiatry and clinical neuroscience 247, 228-233. Fujigaki, H., Saito, K., Fujigaki, S., Takemura, M., Sudo, K., Ishiguro, H., Seishima, M., 2006. The signal transducer and activator of transcription 1alpha and interferon regulatory factor 1 are not essential for the induction of indoleamine 2,3-dioxygenase by lipopolysaccharide: involvement of p38 mitogen-activated protein kinase and nuclear factor-kappaB pathways, and synergistic effect of several proinflammatory cytokines. Journal of biochemistry 139, 655-662. Fujigaki, S., Saito, K., Sekikawa, K., Tone, S., Takikawa, O., Fujii, H., Wada, H., Noma, A., Seishima, M., 2001. Lipopolysaccharide induction of indoleamine 2,3-dioxygenase is mediated dominantly by an IFN-gamma-independent mechanism. European journal of immunology 31, 23132318. Garthwaite, T.L., Martinson, D.R., Tseng, L.F., Hagen, T.C., Menahan, L.A., 1980. A longitudinal hormonal profile of the genetically obese mouse. Endocrinology 107, 671-676. Gatti, S., Bartfai, T., 1993. Induction of tumor necrosis factor-alpha mRNA in the brain after peripheral endotoxin treatment: comparison with interleukin-1 family and interleukin-6. Brain research 624, 291-294. Gaucher, E.A., Miyamoto, M.M., Benner, S.A., 2003. Evolutionary, structural and biochemical evidence for a new interaction site of the leptin obesity protein. Genetics 163, 1549-1553. Gautron, L., Mingam, R., Moranis, A., Combe, C., Laye, S., 2005. Influence of feeding status on neuronal activity in the hypothalamus during lipopolysaccharide-induced anorexia in rats. Neuroscience 134, 933-946. Gesta, S., Tseng, Y.H., Kahn, C.R., 2007. Developmental origin of fat: tracking obesity to its source. Cell 131, 242-256. Gibson, W.T., Farooqi, I.S., Moreau, M., DePaoli, A.M., Lawrence, E., O'Rahilly, S., Trussell, R.A., 2004a. Congenital leptin deficiency due to homozygosity for the Delta133G mutation: report of another case and evaluation of response to four years of leptin therapy. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 89, 4821-4826. Gibson, W.T., Farooqi, I.S., Moreau, M., DePaoli, A.M., Lawrence, E., O'Rahilly, S., Trussell, R.A., 2004b. Congenital leptin deficiency due to homozygosity for the Delta133G mutation: report of another case and evaluation of response to four years of leptin therapy. J. Clin. Endocrinol. Metab 89, 4821-4826. 252 Giusti, V., Panchaud, M., 2007. [Psychological profile of obese patients]. Revue medicale suisse 3, 846-849. Glowinski, J., Axelrod, J., Iversen, L.L., 1966. Regional studies of catecholamines in the rat brain. IV. Effects of drugs on the disposition and metabolism of H3-norepinephrine and H3-dopamine. The Journal of pharmacology and experimental therapeutics 153, 30-41. Glowinski, J., Iversen, L., 1966a. Regional studies of catecholamines in the rat brain. 3. Subcellullar distribution of endogenous and exogenous catecholamines in various brain regions. Biochemical pharmacology 15, 977-987. Glowinski, J., Iversen, L.L., 1966b. Regional studies of catecholamines in the rat brain. I. The disposition of [3H]norepinephrine, [3H]dopamine and [3H]dopa in various regions of the brain. J Neurochem 13, 655-669. Gluck, M.A., Meeter, M., Myers, C.E., 2003. Computational models of the hippocampal region: linking incremental learning and episodic memory. Trends in cognitive sciences 7, 269-276. Godbout, J.P., Moreau, M., Lestage, J., Chen, J., Sparkman, N.L., J, O.C., Castanon, N., Kelley, K.W., Dantzer, R., Johnson, R.W., 2008. Aging exacerbates depressive-like behavior in mice in response to activation of the peripheral innate immune system. Neuropsychopharmacology 33, 2341-2351. Goehler, L.E., Gaykema, R.P., Nguyen, K.T., Lee, J.E., Tilders, F.J., Maier, S.F., Watkins, L.R., 1999. Interleukin-1beta in immune cells of the abdominal vagus nerve: a link between the immune and nervous systems? J Neurosci 19, 2799-2806. Goujon, E., Parnet, P., Laye, S., Combe, C., Dantzer, R., 1996. Adrenalectomy enhances proinflammatory cytokines gene expression, in the spleen, pituitary and brain of mice in response to lipopolysaccharide. Brain Res Mol Brain Res 36, 53-62. Griffin, R., Nally, R., Nolan, Y., McCartney, Y., Linden, J., Lynch, M.A., 2006. The age-related attenuation in long-term potentiation is associated with microglial activation. Journal of neurochemistry 99, 1263-1272. Grill, H.J., Norgren, R., 1978. The taste reactivity test. II. Mimetic responses to gustatory stimuli in chronic thalamic and chronic decerebrate rats. Brain research 143, 281-297. Grohmann, U., Fallarino, F., Puccetti, P., 2003. Tolerance, DCs and tryptophan: much ado about IDO. Trends in immunology 24, 242-248. Gross, P.M., 1992. Circumventricular organ capillaries. Progress in brain research 91, 219-233. Groubet, R., Pallet, V., Delage, B., Redonnet, A., Higueret, P., Cassand, P., 2003. Hyperlipidic diets induce early alterations of the vitamin A signalling pathway in rat colonic mucosa. Endocrine regulations 37, 137-144. Grunfeld, C., Feingold, K.R., 1992. Tumor necrosis factor, interleukin, and interferon induced changes in lipid metabolism as part of host defense. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine. Society for Experimental Biology and Medicine (New York, N.Y 200, 224-227. 253 Grunfeld, C., Zhao, C., Fuller, J., Pollack, A., Moser, A., Friedman, J., Feingold, K.R., 1996. Endotoxin and cytokines induce expression of leptin, the ob gene product, in hamsters. The Journal of clinical investigation 97, 2152-2157. Guidetti, P., Bates, G.P., Graham, R.K., Hayden, M.R., Leavitt, B.R., MacDonald, M.E., Slow, E.J., Wheeler, V.C., Woodman, B., Schwarcz, R., 2006. Elevated brain 3-hydroxykynurenine and quinolinate levels in Huntington disease mice. Neurobiology of disease 23, 190-197. Guillaume-Gentil, C., Rohner-Jeanrenaud, F., Abramo, F., Bestetti, G.E., Rossi, G.L., Jeanrenaud, B., 1990. Abnormal regulation of the hypothalamo-pituitary-adrenal axis in the genetically obese fa/fa rat. Endocrinology 126, 1873-1879. Guillemin, G.J., Kerr, S.J., Brew, B.J., 2005a. Involvement of quinolinic acid in AIDS dementia complex. Neurotoxicity research 7, 103-123. Guillemin, G.J., Smythe, G., Takikawa, O., Brew, B.J., 2005b. Expression of indoleamine 2,3dioxygenase and production of quinolinic acid by human microglia, astrocytes, and neurons. Glia 49, 15-23. Guo, C., Ricchiuti, V., Lian, B.Q., Yao, T.M., Coutinho, P., Romero, J.R., Li, J., Williams, G.H., Adler, G.K., 2008. Mineralocorticoid receptor blockade reverses obesity-related changes in expression of adiponectin, peroxisome proliferator-activated receptor-gamma, and proinflammatory adipokines. Circulation 117, 2253-2261. Gustafson, D., Lissner, L., Bengtsson, C., Bjorkelund, C., Skoog, I., 2004. A 24-year follow-up of body mass index and cerebral atrophy. Neurology 63, 1876-1881. Gustafson, D., Rothenberg, E., Blennow, K., Steen, B., Skoog, I., 2003. An 18-year follow-up of overweight and risk of Alzheimer disease. Archives of internal medicine 163, 1524-1528. Haenschel, C., Vernon, D.J., Dwivedi, P., Gruzelier, J.H., Baldeweg, T., 2005. Event-related brain potential correlates of human auditory sensory memory-trace formation. J Neurosci 25, 10494-10501. Hagberg, H., Mallard, C., 2005. Effect of inflammation on central nervous system development and vulnerability. Current opinion in neurology 18, 117-123. Halaas, J.L., Gajiwala, K.S., Maffei, M., Cohen, S.L., Chait, B.T., Rabinowitz, D., Lallone, R.L., Burley, S.K., Friedman, J.M., 1995. Weight-reducing effects of the plasma protein encoded by the obese gene. Science (New York, N.Y 269, 543-546. Handley, S.L., McBlane, J.W., 1993. 5HT drugs in animal models of anxiety. Psychopharmacology 112, 13-20. Handley, S.L., Mithani, S., 1984. Effects of alpha-adrenoceptor agonists and antagonists in a mazeexploration model of 'fear'-motivated behaviour. Naunyn-Schmiedeberg's archives of pharmacology 327, 1-5. Hansen, A.M., Driussi, C., Turner, V., Takikawa, O., Hunt, N.H., 2000. Tissue distribution of indoleamine 2,3-dioxygenase in normal and malaria-infected tissue. Redox Rep 5, 112-115. 254 Hart, B.L., 1988. Biological basis of the behavior of sick animals. Neuroscience and biobehavioral reviews 12, 123-137. Hartman, M.E., O'Connor, J.C., Godbout, J.P., Minor, K.D., Mazzocco, V.R., Freund, G.G., 2004. Insulin receptor substrate-2-dependent interleukin-4 signaling in macrophages is impaired in two models of type 2 diabetes mellitus. The Journal of biological chemistry 279, 28045-28050. Hauner, H., Entenmann, G., Wabitsch, M., Gaillard, D., Ailhaud, G., Negrel, R., Pfeiffer, E.F., 1989. Promoting effect of glucocorticoids on the differentiation of human adipocyte precursor cells cultured in a chemically defined medium. The Journal of clinical investigation 84, 1663-1670. Havel, P.J., 2001. Peripheral signals conveying metabolic information to the brain: short-term and long-term regulation of food intake and energy homeostasis. Experimental biology and medicine (Maywood, N.J 226, 963-977. Hay-Schmidt, A., Helboe, L., Larsen, P.J., 2001. Leptin receptor immunoreactivity is present in ascending serotonergic and catecholaminergic neurons of the rat. Neuroendocrinology 73, 215-226. Hay, M., Meunier-Salaun, M.C., Brulaud, F., Monnier, M., Mormede, P., 2000. Assessment of hypothalamic-pituitary-adrenal axis and sympathetic nervous system activity in pregnant sows through the measurement of glucocorticoids and catecholamines in urine. Journal of animal science 78, 420428. Hayaishi, O., Hirata, F., Fujiwara, M., Senoh, S., Tokuyama, T., 1975. Indoleamine 2,3-dioxygenase. Note II. Biological function. Acta vitaminologica et enzymologica 29, 291-293. Hayaishi, O., Yoshida, R., 1978. Specific induction of pulmonary indoleamine 2,3-dioxygenase by bacterial lipopolysaccharide. Ciba Foundation symposium, 199-203. Hebebrand, J., Friedel, S., Schauble, N., Geller, F., Hinney, A., 2003. Perspectives: molecular genetic research in human obesity. Obes Rev 4, 139-146. Heinrich, P.C., Behrmann, I., Haan, S., Hermanns, H.M., Muller-Newen, G., Schaper, F., 2003. Principles of interleukin (IL)-6-type cytokine signalling and its regulation. The Biochemical journal 374, 1-20. Henry, C.J., Huang, Y., Wynne, A., Hanke, M., Himler, J., Bailey, M.T., Sheridan, J.F., Godbout, J.P., 2008. Minocycline attenuates lipopolysaccharide (LPS)-induced neuroinflammation, sickness behavior, and anhedonia. Journal of neuroinflammation 5, 15. Heyes, M.P., Rubinow, D., Lane, C., Markey, S.P., 1989. Cerebrospinal fluid quinolinic acid concentrations are increased in acquired immune deficiency syndrome. Annals of neurology 26, 275277. Heyser, C.J., Masliah, E., Samimi, A., Campbell, I.L., Gold, L.H., 1997. Progressive decline in avoidance learning paralleled by inflammatory neurodegeneration in transgenic mice expressing interleukin 6 in the brain. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 94, 1500-1505. 255 Higuchi, K., Hayaishi, O., 1967. Enzymic formation of D-kynurenine from D-tryptophan. Archives of biochemistry and biophysics 120, 397-403. Higuchi, M., Aggarwal, B.B., 1993. Okadaic acid induces down-modulation and shedding of tumor necrosis factor receptors. Comparison with another tumor promoter, phorbol ester. The Journal of biological chemistry 268, 5624-5631. Hilber, P., Lorivel, T., Delarue, C., Caston, J., 2004. Stress and anxious-related behaviors in Lurcher mutant mice. Brain research 1003, 108-112. Hirata, F., Nomiyama, S., Hayaishi, O., 1975. Indoleamine 2,3-dioxygenase. Note I. Catalytic and molecular properties. Acta vitaminologica et enzymologica 29, 288-290. Hopkins, S.J., Rothwell, N.J., 1995. Cytokines and the nervous system. I: Expression and recognition. Trends in neurosciences 18, 83-88. Hotamisligil, G.S., 2003. Inflammatory pathways and insulin action. Int J Obes Relat Metab Disord 27 Suppl 3, S53-55. Hotamisligil, G.S., Peraldi, P., Budavari, A., Ellis, R., White, M.F., Spiegelman, B.M., 1996. IRS-1mediated inhibition of insulin receptor tyrosine kinase activity in TNF-alpha- and obesity-induced insulin resistance. Science (New York, N.Y 271, 665-668. Hotamisligil, G.S., Shargill, N.S., Spiegelman, B.M., 1993. Adipose expression of tumor necrosis factor-alpha: direct role in obesity-linked insulin resistance. Science (New York, N.Y 259, 87-91. Howard, J.K., Flier, J.S., 2006. Attenuation of leptin and insulin signaling by SOCS proteins. Trends Endocrinol Metab 17, 365-371. Huang, H., Liu, T., Rose, J.L., Stevens, R.L., Hoyt, D.G., 2007. Sensitivity of mice to lipopolysaccharide is increased by a high saturated fat and cholesterol diet. Journal of inflammation (London, England) 4, 22. Hultgren, O.H., Tarkowski, A., 2001. Leptin in septic arthritis: decreased levels during infection and amelioration of disease activity upon its administration. Arthritis research 3, 389-394. Ihle, J.N., Witthuhn, B.A., Quelle, F.W., Yamamoto, K., Silvennoinen, O., 1995. Signaling through the hematopoietic cytokine receptors. Annual review of immunology 13, 369-398. Iwasaki, Y., Nishiyama, M., Taguchi, T., Asai, M., Yoshida, M., Kambayashi, M., Terada, Y., Hashimoto, K., 2008. Insulin exhibits short-term anti-inflammatory but long-term proinflammatory effects in vitro. Molecular and cellular endocrinology. Janeway, C.A., Chervonsky, A.V., Sant'Angelo, D., 1997. T-cell receptors: is the repertoire inherently MHC-specific? Curr Biol 7, R299-300. Jeffery, K.J., Morris, R.G., 1993. Cumulative long-term potentiation in the rat dentate gyrus correlates with, but does not modify, performance in the water maze. Hippocampus 3, 133-140. Jenkins, J.K., Arend, W.P., 1993. Interleukin 1 receptor antagonist production in human monocytes is induced by IL-1 alpha, IL-3, IL-4 and GM-CSF. Cytokine 5, 407-415. 256 Jessop, D.S., Harbuz, M.S., Lightman, S.L., 2001. CRH in chronic inflammatory stress. Peptides 22, 803-807. Jin, L., Burguera, B.G., Couce, M.E., Scheithauer, B.W., Lamsan, J., Eberhardt, N.L., Kulig, E., Lloyd, R.V., 1999. Leptin and leptin receptor expression in normal and neoplastic human pituitary: evidence of a regulatory role for leptin on pituitary cell proliferation. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 84, 2903-2911. Kabiersch, A., del Rey, A., Honegger, C.G., Besedovsky, H.O., 1988. Interleukin-1 induces changes in norepinephrine metabolism in the rat brain. Brain, behavior, and immunity 2, 267-274. Kaser, S., Kaser, A., Sandhofer, A., Ebenbichler, C.F., Tilg, H., Patsch, J.R., 2003. Resistin messenger-RNA expression is increased by proinflammatory cytokines in vitro. Biochem Biophys Res Commun 309, 286-290. Katsuki, H., Nakai, S., Hirai, Y., Akaji, K., Kiso, Y., Satoh, M., 1990. Interleukin-1 beta inhibits longterm potentiation in the CA3 region of mouse hippocampal slices. European journal of pharmacology 181, 323-326. Kelley, K.W., Bluthe, R.M., Dantzer, R., Zhou, J.H., Shen, W.H., Johnson, R.W., Broussard, S.R., 2003. Cytokine-induced sickness behavior. Brain, behavior, and immunity 17 Suppl 1, S112-118. Kelly, A., Vereker, E., Nolan, Y., Brady, M., Barry, C., Loscher, C.E., Mills, K.H., Lynch, M.A., 2003. Activation of p38 plays a pivotal role in the inhibitory effect of lipopolysaccharide and interleukin-1 beta on long term potentiation in rat dentate gyrus. The Journal of biological chemistry 278, 19453-19462. Kent, S., Bluthe, R.M., Dantzer, R., Hardwick, A.J., Kelley, K.W., Rothwell, N.J., Vannice, J.L., 1992. Different receptor mechanisms mediate the pyrogenic and behavioral effects of interleukin 1. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 89, 9117-9120. Kent, S., Bret-Dibat, J.L., Kelley, K.W., Dantzer, R., 1996. Mechanisms of sickness-induced decreases in food-motivated behavior. Neuroscience and biobehavioral reviews 20, 171-175. King, M.V., Marsden, C.A., Fone, K.C., 2008. A role for the 5-HT(1A), 5-HT(4) and 5-HT(6) receptors in learning and memory. Trends in pharmacological sciences. Kivipelto, M., Ngandu, T., Fratiglioni, L., Viitanen, M., Kareholt, I., Winblad, B., Helkala, E.L., Tuomilehto, J., Soininen, H., Nissinen, A., 2005. Obesity and vascular risk factors at midlife and the risk of dementia and Alzheimer disease. Archives of neurology 62, 1556-1560. Klebanoff, S.J., 1980. Oxygen metabolism and the toxic properties of phagocytes. Annals of internal medicine 93, 480-489. Kloppenborg, R.P., van den Berg, E., Kappelle, L.J., Biessels, G.J., 2008. Diabetes and other vascular risk factors for dementia: which factor matters most? A systematic review. European journal of pharmacology 585, 97-108. Kluger, M.J., 1991. Fever: role of pyrogens and cryogens. Physiological reviews 71, 93-127. 257 Kluger, M.J., Ringler, D.H., Anver, M.R., 1975. Fever and survival. Science (New York, N.Y 188, 166-168. Knox, W.E., Auerbach, V.H., 1955. The hormonal control of tryptophan peroxidase in the rat. The Journal of biological chemistry 214, 307-313. Koide, Y., Yoshida, A., 1994. The signal transduction mechanism responsible for gamma interferoninduced indoleamine 2,3-dioxygenase gene expression. Infection and immunity 62, 948-955. Konsman, J.P., Kelley, K., Dantzer, R., 1999. Temporal and spatial relationships between lipopolysaccharide-induced expression of Fos, interleukin-1beta and inducible nitric oxide synthase in rat brain. Neuroscience 89, 535-548. Konsman, J.P., Parnet, P., Dantzer, R., 2002. Cytokine-induced sickness behaviour: mechanisms and implications. Trends in neurosciences 25, 154-159. Konsman, J.P., Tridon, V., Dantzer, R., 2000. Diffusion and action of intracerebroventricularly injected interleukin-1 in the CNS. Neuroscience 101, 957-967. Konstantinides, S., Schafer, K., Koschnick, S., Loskutoff, D.J., 2001. Leptin-dependent platelet aggregation and arterial thrombosis suggests a mechanism for atherothrombotic disease in obesity. The Journal of clinical investigation 108, 1533-1540. Kopelman, P., 2004. The metabolic syndrome as a clinical problem. Nestle Nutrition workshop series 9, 77-88; discussion 88-92. Kopelman, P.G., 2000. Obesity as a medical problem. Nature 404, 635-643. Korte, S.M., 2001. Corticosteroids in relation to fear, anxiety and psychopathology. Neuroscience and biobehavioral reviews 25, 117-142. Kotake, Y., Masayama, T., 1936. Über den mechanismus der kynurenin-bildung aus tryptophan. Z Physiol. Chem. 243, 2.7-244. Krabbe, K.S., Reichenberg, A., Yirmiya, R., Smed, A., Pedersen, B.K., Bruunsgaard, H., 2005. Lowdose endotoxemia and human neuropsychological functions. Brain, behavior, and immunity 19, 453460. Kroder, G., Bossenmaier, B., Kellerer, M., Capp, E., Stoyanov, B., Muhlhofer, A., Berti, L., Horikoshi, H., Ullrich, A., Haring, H., 1996. Tumor necrosis factor-alpha- and hyperglycemia-induced insulin resistance. Evidence for different mechanisms and different effects on insulin signaling. The Journal of clinical investigation 97, 1471-1477. Krude, H., Biebermann, H., Luck, W., Horn, R., Brabant, G., Gruters, A., 1998. Severe early-onset obesity, adrenal insufficiency and red hair pigmentation caused by POMC mutations in humans. Nature genetics 19, 155-157. Kwidzinski, E., Bunse, J., Aktas, O., Richter, D., Mutlu, L., Zipp, F., Nitsch, R., Bechmann, I., 2005. Indolamine 2,3-dioxygenase is expressed in the CNS and down-regulates autoimmune inflammation. Faseb J 19, 1347-1349. 258 Kyrou, I., Chrousos, G.P., Tsigos, C., 2006. Stress, visceral obesity, and metabolic complications. Annals of the New York Academy of Sciences 1083, 77-110. Lacosta, S., Merali, Z., Anisman, H., 1998. Influence of interleukin-1beta on exploratory behaviors, plasma ACTH, corticosterone, and central biogenic amines in mice. Psychopharmacology 137, 351361. Lacosta, S., Merali, Z., Anisman, H., 1999. Behavioral and neurochemical consequences of lipopolysaccharide in mice: anxiogenic-like effects. Brain research 818, 291-303. Lacosta, S., Merali, Z., Zalcman, S., Anisman, H., 1994. Time-dependent in vivo mesolimbic dopamine variations following antigenic challenge. Brain research 664, 225-230. Lacroix, S., Rivest, S., 1998. Effect of acute systemic inflammatory response and cytokines on the transcription of the genes encoding cyclooxygenase enzymes (COX-1 and COX-2) in the rat brain. Journal of neurochemistry 70, 452-466. Laimer, M., Ebenbichler, C.F., Kaser, S., Sandhofer, A., Weiss, H., Nehoda, H., Aigner, F., Patsch, J.R., 2002. Markers of chronic inflammation and obesity: a prospective study on the reversibility of this association in middle-aged women undergoing weight loss by surgical intervention. Int J Obes Relat Metab Disord 26, 659-662. Landman, R.E., Puder, J.J., Xiao, E., Freda, P.U., Ferin, M., Wardlaw, S.L., 2003. Endotoxin stimulates leptin in the human and nonhuman primate. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 88, 1285-1291. Larson, S.J., Dunn, A.J., 2001. Behavioral effects of cytokines. Brain, behavior, and immunity 15, 371-387. Latner, J.D., Stunkard, A.J., 2003. Getting worse: the stigmatization of obese children. Obes Res 11, 452-456. Lau, J.Y., Goldman, D., Buzas, B., Fromm, S.J., Guyer, A.E., Hodgkinson, C., Monk, C.S., Nelson, E.E., Shen, P.H., Pine, D.S., Ernst, M., 2008. Amygdala Function and 5-HTT Gene Variants in Adolescent Anxiety and Major Depressive Disorder. Biological psychiatry. Laye, S., Gheusi, G., Cremona, S., Combe, C., Kelley, K., Dantzer, R., Parnet, P., 2000. Endogenous brain IL-1 mediates LPS-induced anorexia and hypothalamic cytokine expression. American journal of physiology 279, R93-98. Laye, S., Parnet, P., Goujon, E., Dantzer, R., 1994. Peripheral administration of lipopolysaccharide induces the expression of cytokine transcripts in the brain and pituitary of mice. Brain Res Mol Brain Res 27, 157-162. Lebel, E., Vallieres, L., Rivest, S., 2000. Selective involvement of interleukin-6 in the transcriptional activation of the suppressor of cytokine signaling-3 in the brain during systemic immune challenges. Endocrinology 141, 3749-3763. 259 Lee, J.W., Lee, Y.K., Yuk, D.Y., Choi, D.Y., Ban, S.B., Oh, K.W., Hong, J.T., 2008. Neuroinflammation induced by lipopolysaccharide causes cognitive impairment through enhancement of beta-amyloid generation. Journal of neuroinflammation 5, 37. Lennie, T.A., McCarthy, D.O., Keesey, R.E., 1995. Body energy status and the metabolic response to acute inflammation. The American journal of physiology 269, R1024-1031. Leonard, B.E., 2005. The HPA and immune axes in stress: the involvement of the serotonergic system. Eur Psychiatry 20 Suppl 3, S302-306. Lestage, J., Verrier, D., Palin, K., Dantzer, R., 2002. The enzyme indoleamine 2,3-dioxygenase is induced in the mouse brain in response to peripheral administration of lipopolysaccharide and superantigen. Brain, behavior, and immunity 16, 596-601. Levine, J., Barak, Y., Chengappa, K.N., Rapoport, A., Rebey, M., Barak, V., 1999. Cerebrospinal cytokine levels in patients with acute depression. Neuropsychobiology 40, 171-176. Levitsky, D.A., 2002. Putting behavior back into feeding behavior: a tribute to George Collier. Appetite 38, 143-148. Ley, R.E., Backhed, F., Turnbaugh, P., Lozupone, C.A., Knight, R.D., Gordon, J.I., 2005. Obesity alters gut microbial ecology. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 102, 11070-11075. Li, A.J., Katafuchi, T., Oda, S., Hori, T., Oomura, Y., 1997. Interleukin-6 inhibits long-term potentiation in rat hippocampal slices. Brain research 748, 30-38. Li, J.J., Chen, X.J., 2003. Simvastatin inhibits interleukin-6 release in human monocytes stimulated by C-reactive protein and lipopolysaccharide. Coronary artery disease 14, 329-334. Libert, C., Brouckaert, P., Shaw, A., Fiers, W., 1990. Induction of interleukin 6 by human and murine recombinant interleukin 1 in mice. European journal of immunology 20, 691-694. Lieben, C.K., van Oorsouw, K., Deutz, N.E., Blokland, A., 2004. Acute tryptophan depletion induced by a gelatin-based mixture impairs object memory but not affective behavior and spatial learning in the rat. Behavioural brain research 151, 53-64. Linthorst, A.C., Flachskamm, C., Muller-Preuss, P., Holsboer, F., Reul, J.M., 1995. Effect of bacterial endotoxin and interleukin-1 beta on hippocampal serotonergic neurotransmission, behavioral activity, and free corticosterone levels: an in vivo microdialysis study. J Neurosci 15, 2920-2934. Lopez, I.P., Marti, A., Milagro, F.I., Zulet Md Mde, L., Moreno-Aliaga, M.J., Martinez, J.A., De Miguel, C., 2003. DNA microarray analysis of genes differentially expressed in diet-induced (cafeteria) obese rats. Obes Res 11, 188-194. Lord, G.M., Matarese, G., Howard, J.K., Baker, R.J., Bloom, S.R., Lechler, R.I., 1998. Leptin modulates the T-cell immune response and reverses starvation-induced immunosuppression. Nature 394, 897-901. Lu, X.Y., Kim, C.S., Frazer, A., Zhang, W., 2006. Leptin: a potential novel antidepressant. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 103, 1593-1598. 260 Lucki, I., Dalvi, A., Mayorga, A.J., 2001. Sensitivity to the effects of pharmacologically selective antidepressants in different strains of mice. Psychopharmacology 155, 315-322. Luheshi, G., Miller, A.J., Brouwer, S., Dascombe, M.J., Rothwell, N.J., Hopkins, S.J., 1996. Interleukin-1 receptor antagonist inhibits endotoxin fever and systemic interleukin-6 induction in the rat. The American journal of physiology 270, E91-95. Luheshi, G.N., Gardner, J.D., Rushforth, D.A., Loudon, A.S., Rothwell, N.J., 1999. Leptin actions on food intake and body temperature are mediated by IL-1. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 96, 7047-7052. Lupien, S.J., Maheu, F., Tu, M., Fiocco, A., Schramek, T.E., 2007. The effects of stress and stress hormones on human cognition: Implications for the field of brain and cognition. Brain and cognition 65, 209-237. Lynch, M.A., 1998. Age-related impairment in long-term potentiation in hippocampus: a role for the cytokine, interleukin-1 beta? Progress in neurobiology 56, 571-589. Maebuchi, M., Machidori, M., Urade, R., Ogawa, T., Moriyama, T., 2003. Low resistin levels in adipose tissues and serum in high-fat fed mice and genetically obese mice: development of an ELISA system for quantification of resistin. Archives of biochemistry and biophysics 416, 164-170. Maes, M., 1995. Evidence for an immune response in major depression: a review and hypothesis. Progress in neuro-psychopharmacology & biological psychiatry 19, 11-38. Maes, M., Schotte, C., Scharpe, S., Martin, M., Blockx, P., 1990. The effects of glucocorticoids on the availability of L-tryptophan and tyrosine in the plasma of depressed patients. Journal of affective disorders 18, 121-127. Maes, M., Song, C., Lin, A., De Jongh, R., Van Gastel, A., Kenis, G., Bosmans, E., De Meester, I., Benoy, I., Neels, H., Demedts, P., Janca, A., Scharpe, S., Smith, R.S., 1998. The effects of psychological stress on humans: increased production of pro-inflammatory cytokines and a Th1-like response in stress-induced anxiety. Cytokine 10, 313-318. Maes, M., Song, C., Lin, A.H., Bonaccorso, S., Kenis, G., De Jongh, R., Bosmans, E., Scharpe, S., 1999. Negative immunoregulatory effects of antidepressants: inhibition of interferon-gamma and stimulation of interleukin-10 secretion. Neuropsychopharmacology 20, 370-379. Mains, R.E., Eipper, B.A., Ling, N., 1977. Common precursor to corticotropins and endorphins. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 74, 3014-3018. Maj, J., Rogoz, Z., Skuza, G., 1992. The effects of combined treatment with MK-801 and antidepressant drugs in the forced swimming test in rats. Polish journal of pharmacology and pharmacy 44, 217-226. Makgoba, M.W., Bernard, A., Sanders, M.E., 1992. Cell adhesion/signalling: biology and clinical applications. European journal of clinical investigation 22, 443-453. 261 Malek, A., Sager, R., Schneider, H., 2001. Effect of hypoxia, oxidative stress and lipopolysaccharides on the release of prostaglandins and cytokines from human term placental explants. Placenta 22 Suppl A, S45-50. Mancuso, P., Gottschalk, A., Phare, S.M., Peters-Golden, M., Lukacs, N.W., Huffnagle, G.B., 2002. Leptin-deficient mice exhibit impaired host defense in Gram-negative pneumonia. J Immunol 168, 4018-4024. Mann, J.J., Oquendo, M., Underwood, M.D., Arango, V., 1999. The neurobiology of suicide risk: a review for the clinician. The Journal of clinical psychiatry 60 Suppl 2, 7-11; discussion 18-20, 113116. Mannino, D.M., Mott, J., Ferdinands, J.M., Camargo, C.A., Friedman, M., Greves, H.M., Redd, S.C., 2006. Boys with high body masses have an increased risk of developing asthma: findings from the National Longitudinal Survey of Youth (NLSY). International journal of obesity (2005) 30, 6-13. Mantha, L., Palacios, E., Deshaies, Y., 1999. Modulation of triglyceride metabolism by glucocorticoids in diet-induced obesity. The American journal of physiology 277, R455-464. Margetic, S., Gazzola, C., Pegg, G.G., Hill, R.A., 2002. Leptin: a review of its peripheral actions and interactions. Int J Obes Relat Metab Disord 26, 1407-1433. Marin, P., Darin, N., Amemiya, T., Andersson, B., Jern, S., Bjorntorp, P., 1992. Cortisol secretion in relation to body fat distribution in obese premenopausal women. Metabolism: clinical and experimental 41, 882-886. Martin-Romero, C., Sanchez-Margalet, V., 2001. Human leptin activates PI3K and MAPK pathways in human peripheral blood mononuclear cells: possible role of Sam68. Cellular immunology 212, 8391. Matsukawa, A., Hogaboam, C.M., Lukacs, N.W., Kunkel, S.L., 2000. Chemokines and innate immunity. Reviews in immunogenetics 2, 339-358. Matsumoto, T., Komori, T., Yamamoto, M., Shimada, Y., Nakagawa, M., Shiroyama, T., Inui, K., Okazaki, Y., 2006. Prior intraperitoneal injection of rat recombinant IL-6 increases hypothalamic IL-6 contents in subsequent forced swim stressor in rats. Neuropsychobiology 54, 186-194. Matta, S.G., Linner, K.M., Sharp, B.M., 1993. Interleukin-1 alpha and interleukin-1 beta stimulate adrenocorticotropin secretion in the rat through a similar hypothalamic receptor(s): effects of interleukin-1 receptor antagonist protein. Neuroendocrinology 57, 14-22. May, M.J., Ager, A., 1992. ICAM-1-independent lymphocyte transmigration across high endothelium: differential up-regulation by interferon gamma, tumor necrosis factor-alpha and interleukin 1 beta. European journal of immunology 22, 219-226. McCarthy, D.O., 2000. Cytokines and the anorexia of infection: potential mechanisms and treatments. Biological research for nursing 1, 287-298. 262 McElroy, S.L., Kotwal, R., Malhotra, S., Nelson, E.B., Keck, P.E., Nemeroff, C.B., 2004. Are mood disorders and obesity related? A review for the mental health professional. The Journal of clinical psychiatry 65, 634-651, quiz 730. Medzhitov, R., 2001. Toll-like receptors and innate immunity. Nature reviews 1, 135-145. Meyers, M.R., Gokce, N., 2007. Endothelial dysfunction in obesity: etiological role in atherosclerosis. Current opinion in endocrinology, diabetes, and obesity 14, 365-369. Miller, R.R., Matzel, L.D., 2000. Memory involves far more than 'consolidation'. Nat Rev Neurosci 1, 214-216. Modell, S., Yassouridis, A., Huber, J., Holsboer, F., 1997. Corticosteroid receptor function is decreased in depressed patients. Neuroendocrinology 65, 216-222. Mohamed-Ali, V., Flower, L., Sethi, J., Hotamisligil, G., Gray, R., Humphries, S.E., York, D.A., Pinkney, J., 2001. beta-Adrenergic regulation of IL-6 release from adipose tissue: in vivo and in vitro studies. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 86, 5864-5869. Mohamed-Ali, V., Goodrick, S., Rawesh, A., Katz, D.R., Miles, J.M., Yudkin, J.S., Klein, S., Coppack, S.W., 1997. Subcutaneous adipose tissue releases interleukin-6, but not tumor necrosis factor-alpha, in vivo. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 82, 4196-4200. Mold, C., Gewurz, H., Du Clos, T.W., 1999. Regulation of complement activation by C-reactive protein. Immunopharmacology 42, 23-30. Mold, C., Rodriguez, W., Rodic-Polic, B., Du Clos, T.W., 2002. C-reactive protein mediates protection from lipopolysaccharide through interactions with Fc gamma R. J Immunol 169, 70197025. Moldawer, L.L., Andersson, C., Gelin, J., Lundholm, K.G., 1988. Regulation of food intake and hepatic protein synthesis by recombinant-derived cytokines. The American journal of physiology 254, G450-456. Montgomery, K.C., 1955. The relation between fear induced by novel stimulation and exploratory behavior. Journal of comparative and physiological psychology 48, 254-260. Mooney, R.A., Senn, J., Cameron, S., Inamdar, N., Boivin, L.M., Shang, Y., Furlanetto, R.W., 2001. Suppressors of cytokine signaling-1 and -6 associate with and inhibit the insulin receptor. A potential mechanism for cytokine-mediated insulin resistance. The Journal of biological chemistry 276, 2588925893. Mora, S., Pessin, J.E., 2002. An adipocentric view of signaling and intracellular trafficking. Diabetes/metabolism research and reviews 18, 345-356. Moraes, R.C., Blondet, A., Birkenkamp-Demtroeder, K., Tirard, J., Orntoft, T.F., Gertler, A., Durand, P., Naville, D., Begeot, M., 2003. Study of the alteration of gene expression in adipose tissue of dietinduced obese mice by microarray and reverse transcription-polymerase chain reaction analyses. Endocrinology 144, 4773-4782. 263 Moreau, M., Andre, C., O'Connor, J.C., Dumich, S.A., Woods, J.A., Kelley, K.W., Dantzer, R., Lestage, J., Castanon, N., 2008a. Inoculation of Bacillus Calmette-Guerin to mice induces an acute episode of sickness behavior followed by chronic depressive-like behavior. Brain, behavior, and immunity. Moreau, M., Andre, C., O'Connor, J.C., Dumich, S.A., Woods, J.A., Kelley, K.W., Dantzer, R., Lestage, J., Castanon, N., 2008b. Inoculation of Bacillus Calmette-Guerin to mice induces an acute episode of sickness behavior followed by chronic depressive-like behavior. Brain, behavior, and immunity 22, 1087-1095. Moreau, M., Lestage, J., Verrier, D., Mormede, C., Kelley, K.W., Dantzer, R., Castanon, N., 2005. Bacille Calmette-Guerin inoculation induces chronic activation of peripheral and brain indoleamine 2,3-dioxygenase in mice. J Infect Dis 192, 537-544. Mori, H., Hanada, R., Hanada, T., Aki, D., Mashima, R., Nishinakamura, H., Torisu, T., Chien, K.R., Yasukawa, H., Yoshimura, A., 2004. Socs3 deficiency in the brain elevates leptin sensitivity and confers resistance to diet-induced obesity. Nature medicine 10, 739-743. Morlat, P., Pereira, E., Clayette, P., Derreudre-Bosquet, N., Ecobichon, J.L., Benveniste, O., Saves, M., Leport, C., 2008. Early Evolution of Plasma Soluble TNF-alpha p75 Receptor as a Marker of Progression in Treated HIV-Infected Patients. AIDS research and human retroviruses. Mormede, C., Palin, K., Kelley, K.W., Castanon, N., Dantzer, R., 2004. Conditioned taste aversion with lipopolysaccharide and peptidoglycan does not activate cytokine gene expression in the spleen and hypothalamus of mice. Brain, behavior, and immunity 18, 186-200. Moroni, F., 1999. Tryptophan metabolism and brain function: focus on kynurenine and other indole metabolites. European journal of pharmacology 375, 87-100. Morris, R.G., Garrud, P., Rawlins, J.N., O'Keefe, J., 1982. Place navigation impaired in rats with hippocampal lesions. Nature 297, 681-683. Morrison, C.D., 2008. Leptin resistance and the response to positive energy balance. Physiology & behavior 94, 660-663. Mosmann, T.R., Cherwinski, H., Bond, M.W., Giedlin, M.A., Coffman, R.L., 1986. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins. J Immunol 136, 2348-2357. Muller, N., Schwarz, M.J., 2007. The immune-mediated alteration of serotonin and glutamate: towards an integrated view of depression. Molecular psychiatry 12, 988-1000. Munzberg, H., Flier, J.S., Bjorbaek, C., 2004. Region-specific leptin resistance within the hypothalamus of diet-induced obese mice. Endocrinology 145, 4880-4889. Murray, C.A., Lynch, M.A., 1998. Evidence that increased hippocampal expression of the cytokine interleukin-1 beta is a common trigger for age- and stress-induced impairments in long-term potentiation. J Neurosci 18, 2974-2981. 264 Murray, M.J., Murray, A.B., 1979. Anorexia of infection as a mechanism of host defense. The American journal of clinical nutrition 32, 593-596. Myint, A.M., Kim, Y.K., 2003. Cytokine-serotonin interaction through IDO: a neurodegeneration hypothesis of depression. Medical hypotheses 61, 519-525. Nadeau, S., Rivest, S., 2000. Role of microglial-derived tumor necrosis factor in mediating CD14 transcription and nuclear factor kappa B activity in the brain during endotoxemia. J Neurosci 20, 3456-3468. Nadeau, S., Rivest, S., 2001. The complement system is an integrated part of the natural innate immune response in the brain. Faseb J 15, 1410-1412. Naeser, P., 1973. Effects of adrenalectomy on the obese-hyperglycemic syndrome in mice (gene symbol ob). Diabetologia 9, 376-379. Nakano, K., Suzuki, S., Oh, C., 1987. Significance of increased secretion of glucocorticoids in mice and rats injected with bacterial endotoxin. Brain, behavior, and immunity 1, 159-172. Neal, M.D., Leaphart, C., Levy, R., Prince, J., Billiar, T.R., Watkins, S., Li, J., Cetin, S., Ford, H., Schreiber, A., Hackam, D.J., 2006. Enterocyte TLR4 mediates phagocytosis and translocation of bacteria across the intestinal barrier. J Immunol 176, 3070-3079. Nemeth, H., Toldi, J., Vecsei, L., 2005. Role of kynurenines in the central and peripheral nervous systems. Current neurovascular research 2, 249-260. Nemunaitis, J., Ross, M., Meisenberg, B., O'Reilly, R., Lilleby, K., Buckner, C.D., Appelbaum, F.R., Buhles, W., Singer, J., Peters, W.P., 1994. Phase I study of recombinant human interleukin-1 beta (rhIL-1 beta) in patients with bone marrow failure. Bone marrow transplantation 14, 583-588. Nieman, D.C., Henson, D.A., Nehlsen-Cannarella, S.L., Ekkens, M., Utter, A.C., Butterworth, D.E., Fagoaga, O.R., 1999. Influence of obesity on immune function. Journal of the American Dietetic Association 99, 294-299. Nishida, A., Misaki, Y., Kuruta, H., Takashima, S., 1994. Developmental expression of copper, zincsuperoxide dismutase in human brain by chemiluminescence. Brain & development 16, 40-43. Noble, F., Rubira, E., Boulanouar, M., Palmier, B., Plotkine, M., Warnet, J.M., Marchand-Leroux, C., Massicot, F., 2007. Acute systemic inflammation induces central mitochondrial damage and mnesic deficit in adult Swiss mice. Neuroscience letters 424, 106-110. O'Connor, J.C., Lawson, M.A., Andre, C., Moreau, M., Lestage, J., Castanon, N., Kelley, K.W., Dantzer, R., 2008. Lipopolysaccharide-induced depressive-like behavior is mediated by indoleamine 2,3-dioxygenase activation in mice. Molecular psychiatry. O'Connor, J.C., Satpathy, A., Hartman, M.E., Horvath, E.M., Kelley, K.W., Dantzer, R., Johnson, R.W., Freund, G.G., 2005. IL-1beta-mediated innate immunity is amplified in the db/db mouse model of type 2 diabetes. J Immunol 174, 4991-4997. Ogawa, T., Matson, W.R., Beal, M.F., Myers, R.H., Bird, E.D., Milbury, P., Saso, S., 1992. Kynurenine pathway abnormalities in Parkinson's disease. Neurology 42, 1702-1706. 265 Olivier, J.D., Van Der Hart, M.G., Van Swelm, R.P., Dederen, P.J., Homberg, J.R., Cremers, T., Deen, P.M., Cuppen, E., Cools, A.R., Ellenbroek, B.A., 2008. A study in male and female 5-HT transporter knockout rats: an animal model for anxiety and depression disorders. Neuroscience 152, 573-584. Oomura, Y., Hori, N., Shiraishi, T., Fukunaga, K., Takeda, H., Tsuji, M., Matsumiya, T., Ishibashi, M., Aou, S., Li, X.L., Kohno, D., Uramura, K., Sougawa, H., Yada, T., Wayner, M.J., Sasaki, K., 2006. Leptin facilitates learning and memory performance and enhances hippocampal CA1 long-term potentiation and CaMK II phosphorylation in rats. Peptides 27, 2738-2749. Oprica, M., Zhu, S., Goiny, M., Pham, T.M., Mohammed, A.H., Winblad, B., Bartfai, T., Schultzberg, M., 2005. Transgenic overexpression of interleukin-1 receptor antagonist in the CNS influences behaviour, serum corticosterone and brain monoamines. Brain, behavior, and immunity 19, 223-234. Owens, M.J., Nemeroff, C.B., 1991. Physiology and pharmacology of corticotropin-releasing factor. Pharmacological reviews 43, 425-473. Owens, M.J., Nemeroff, C.B., 1994. Role of serotonin in the pathophysiology of depression: focus on the serotonin transporter. Clinical chemistry 40, 288-295. Ozata, M., Ozdemir, I.C., Licinio, J., 1999. Human leptin deficiency caused by a missense mutation: multiple endocrine defects, decreased sympathetic tone, and immune system dysfunction indicate new targets for leptin action, greater central than peripheral resistance to the effects of leptin, and spontaneous correction of leptin-mediated defects. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 84, 3686-3695. Pacifico, L., Di Renzo, L., Anania, C., Osborn, J.F., Ippoliti, F., Schiavo, E., Chiesa, C., 2006. Increased T-helper interferon-gamma-secreting cells in obese children. European journal of endocrinology / European Federation of Endocrine Societies 154, 691-697. Palmer, G., Gabay, C., 2003. A role for leptin in rheumatic diseases? Annals of the rheumatic diseases 62, 913-915. Pan, W., Zadina, J.E., Harlan, R.E., Weber, J.T., Banks, W.A., Kastin, A.J., 1997. Tumor necrosis factor-alpha: a neuromodulator in the CNS. Neuroscience and biobehavioral reviews 21, 603-613. Pariante, C.M., 2003. Depression, stress and the adrenal axis. Journal of neuroendocrinology 15, 811812. Pariante, C.M., 2004. Glucocorticoid receptor function in vitro in patients with major depression. Stress (Amsterdam, Netherlands) 7, 209-219. Pasquali, R., Anconetani, B., Chattat, R., Biscotti, M., Spinucci, G., Casimirri, F., Vicennati, V., Carcello, A., Labate, A.M., 1996. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity and its relationship to the autonomic nervous system in women with visceral and subcutaneous obesity: effects of the corticotropin-releasing factor/arginine-vasopressin test and of stress. Metabolism: clinical and experimental 45, 351-356. Pathak, A., 2007. Visceral adipose tissue and cardiovascular risk factors. La Lettre du pharmacologue 21, 8-12. 266 Pauli, S., Linthorst, A.C., Reul, J.M., 1998. Tumour necrosis factor-alpha and interleukin-2 differentially affect hippocampal serotonergic neurotransmission, behavioural activity, body temperature and hypothalamic-pituitary-adrenocortical axis activity in the rat. The European journal of neuroscience 10, 868-878. Pauwels, P.J., 2000. Diverse signalling by 5-hydroxytryptamine (5-HT) receptors. Biochemical pharmacology 60, 1743-1750. Pavol, M.A., Meyers, C.A., Rexer, J.L., Valentine, A.D., Mattis, P.J., Talpaz, M., 1995. Pattern of neurobehavioral deficits associated with interferon alfa therapy for leukemia. Neurology 45, 947-950. Pecoits-Filho, R., Barany, P., Lindholm, B., Heimburger, O., Stenvinkel, P., 2002. Interleukin-6 is an independent predictor of mortality in patients starting dialysis treatment. Nephrol Dial Transplant 17, 1684-1688. Pellow, S., Chopin, P., File, S.E., Briley, M., 1985. Validation of open:closed arm entries in an elevated plus-maze as a measure of anxiety in the rat. Journal of neuroscience methods 14, 149-167. Perry, V.H., Cunningham, C., Holmes, C., 2007. Systemic infections and inflammation affect chronic neurodegeneration. Nature reviews 7, 161-167. Pickup, J.C., Chusney, G.D., Thomas, S.M., Burt, D., 2000. Plasma interleukin-6, tumour necrosis factor alpha and blood cytokine production in type 2 diabetes. Life sciences 67, 291-300. Plata-Salaman, C.R., Oomura, Y., Kai, Y., 1988. Tumor necrosis factor and interleukin-1 beta: suppression of food intake by direct action in the central nervous system. Brain research 448, 106-114. Plata-Salaman, C.R., Peloso, E., Satinoff, E., 1998. Cytokine-induced fever in obese (fa/fa) and lean (Fa/Fa) Zucker rats. The American journal of physiology 275, R1353-1357. Plata-Salaman, C.R., Sonti, G., Borkoski, J.P., Wilson, C.D., French-Mullen, J.M.b., 1996. Anorexia induced by chronic central administration of cytokines at estimated pathophysiological concentrations. Physiology & behavior 60, 867-875. Pomara, N., Greenberg, W.M., Branford, M.D., Doraiswamy, P.M., 2003. Therapeutic implications of HPA axis abnormalities in Alzheimer's disease: review and update. Psychopharmacology bulletin 37, 120-134. Porsolt, R.D., 2000. Animal models of depression: utility for transgenic research. Rev Neurosci 11, 53-58. Porsolt, R.D., Bertin, A., Jalfre, M., 1977. Behavioral despair in mice: a primary screening test for antidepressants. Archives internationales de pharmacodynamie et de therapie 229, 327-336. Poulain, J.P., 2004. Dimensions sociales de l'obésité. INSERM. Poutiainen, E., Hokkanen, L., Niemi, M.L., Farkkila, M., 1994. Reversible cognitive decline during high-dose alpha-interferon treatment. Pharmacology, biochemistry, and behavior 47, 901-905. Prins, J.B., Niesler, C.U., Winterford, C.M., Bright, N.A., Siddle, K., O'Rahilly, S., Walker, N.I., Cameron, D.P., 1997. Tumor necrosis factor-alpha induces apoptosis of human adipose cells. Diabetes 46, 1939-1944. 267 Prut, L., Belzung, C., 2003. The open field as a paradigm to measure the effects of drugs on anxietylike behaviors: a review. European journal of pharmacology 463, 3-33. Pue, C.A., Mortensen, R.F., Marsh, C.B., Pope, H.A., Wewers, M.D., 1996. Acute phase levels of Creactive protein enhance IL-1 beta and IL-1ra production by human blood monocytes but inhibit IL-1 beta and IL-1ra production by alveolar macrophages. J Immunol 156, 1594-1600. Punchard, N.A., Whelan, C.J., Adcock, I., 2004. The Journal of Inflammation. Journal of inflammation (London, England) 1, 1. Rafnsson, S.B., Deary, I.J., Smith, F.B., Whiteman, M.C., Rumley, A., Lowe, G.D., Fowkes, F.G., 2007. Cognitive decline and markers of inflammation and hemostasis: the Edinburgh Artery Study. Journal of the American Geriatrics Society 55, 700-707. Rahkonen, T., Luukkainen-Markkula, R., Paanila, S., Sivenius, J., Sulkava, R., 2000. Delirium episode as a sign of undetected dementia among community dwelling elderly subjects: a 2 year follow up study. Journal of neurology, neurosurgery, and psychiatry 69, 519-521. Raison, C.L., Demetrashvili, M., Capuron, L., Miller, A.H., 2005. Neuropsychiatric adverse effects of interferon-alpha: recognition and management. CNS drugs 19, 105-123. Ramos, A., Mormede, P., 1998. Stress and emotionality: a multidimensional and genetic approach. Neuroscience and biobehavioral reviews 22, 33-57. Reichenberg, A., Yirmiya, R., Schuld, A., Kraus, T., Haack, M., Morag, A., Pollmacher, T., 2001. Cytokine-associated emotional and cognitive disturbances in humans. Archives of general psychiatry 58, 445-452. Renault, J., Aubert, A., 2006. Immunity and emotions: lipopolysaccharide increases defensive behaviours and potentiates despair in mice. Brain, behavior, and immunity 20, 517-526. Ressler, K.J., Nemeroff, C.B., 1999. Role of norepinephrine in the pathophysiology and treatment of mood disorders. Biological psychiatry 46, 1219-1233. Ressler, K.J., Nemeroff, C.B., 2000. Role of serotonergic and noradrenergic systems in the pathophysiology of depression and anxiety disorders. Depression and anxiety 12 Suppl 1, 2-19. Reynolds, G.P., Pearson, S.J., 1989. Increased brain 3-hydroxykynurenine in Huntington's disease. Lancet 2, 979-980. Riazi, K., Galic, M.A., Kuzmiski, J.B., Ho, W., Sharkey, K.A., Pittman, Q.J., 2008. Microglial activation and TNF{alpha} production mediate altered CNS excitability following peripheral inflammation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Rivest, S., 1999. What is the cellular source of prostaglandins in the brain in response to systemic inflammation? Facts and controversies. Molecular psychiatry 4, 500-507. Rivest, S., 2003. Molecular insights on the cerebral innate immune system. Brain, behavior, and immunity 17, 13-19. Robinson, C.M., Shirey, K.A., Carlin, J.M., 2003. Synergistic transcriptional activation of indoleamine dioxygenase by IFN-gamma and tumor necrosis factor-alpha. J Interferon Cytokine Res 23, 413-421. 268 Romanova, I.V., Ramos, E.J., Xu, Y., Quinn, R., Chen, C., George, Z.M., Inui, A., Das, U., Meguid, M.M., 2004. Neurobiologic changes in the hypothalamus associated with weight loss after gastric bypass. Journal of the American College of Surgeons 199, 887-895. Romanovsky, A.A., Szekely, M., 1998. Fever and hypothermia: two adaptive thermoregulatory responses to systemic inflammation. Medical hypotheses 50, 219-226. Rosen, E.D., MacDougald, O.A., 2006. Adipocyte differentiation from the inside out. Nat Rev Mol Cell Biol 7, 885-896. Rosengren, A., Skoog, I., Gustafson, D., Wilhelmsen, L., 2005. Body mass index, other cardiovascular risk factors, and hospitalization for dementia. Archives of internal medicine 165, 321-326. Rosmond, R., Bjorntorp, P., 1998. The interactions between hypothalamic-pituitary-adrenal axis activity, testosterone, insulin-like growth factor I and abdominal obesity with metabolism and blood pressure in men. Int J Obes Relat Metab Disord 22, 1184-1196. Ryden, A., Sullivan, M., Torgerson, J.S., Karlsson, J., Lindroos, A.K., Taft, C., 2004. A comparative controlled study of personality in severe obesity: a 2-y follow-up after intervention. Int J Obes Relat Metab Disord 28, 1485-1493. Sagar, S.M., Price, K.J., Kasting, N.W., Sharp, F.R., 1995. Anatomic patterns of Fos immunostaining in rat brain following systemic endotoxin administration. Brain research bulletin 36, 381-392. Saito, K., Heyes, M.P., 1996. Kynurenine pathway enzymes in brain. Properties of enzymes and regulation of quinolinic acid synthesis. Advances in experimental medicine and biology 398, 485-492. Salehi, M., Ferenczi, A., Zumoff, B., 2005. Obesity and cortisol status. Hormone and metabolic research. Hormon- und Stoffwechselforschung 37, 193-197. Sandyk, R., 1992. L-tryptophan in neuropsychiatric disorders: a review. The International journal of neuroscience 67, 127-144. Saper, C.B., Chou, T.C., Elmquist, J.K., 2002. The need to feed: homeostatic and hedonic control of eating. Neuron 36, 199-211. Sarraf, P., Frederich, R.C., Turner, E.M., Ma, G., Jaskowiak, N.T., Rivet, D.J., 3rd, Flier, J.S., Lowell, B.B., Fraker, D.L., Alexander, H.R., 1997. Multiple cytokines and acute inflammation raise mouse leptin levels: potential role in inflammatory anorexia. The Journal of experimental medicine 185, 171175. Sartipy, P., Loskutoff, D.J., 2003. Monocyte chemoattractant protein 1 in obesity and insulin resistance. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 100, 7265-7270. Scheibel, R.S., Valentine, A.D., O'Brien, S., Meyers, C.A., 2004. Cognitive dysfunction and depression during treatment with interferon-alpha and chemotherapy. The Journal of neuropsychiatry and clinical neurosciences 16, 185-191. Schiepers, O.J., Wichers, M.C., Maes, M., 2005. Cytokines and major depression. Progress in neuropsychopharmacology & biological psychiatry 29, 201-217. 269 Schildkraut, J.J., 1995. The catecholamine hypothesis of affective disorders: a review of supporting evidence. 1965. The Journal of neuropsychiatry and clinical neurosciences 7, 524-533; discussion 523524. Schobitz, B., Van Den Dobbelsteen, M., Holsboer, F., Sutanto, W., De Kloet, E.R., 1993. Regulation of interleukin 6 gene expression in rat. Endocrinology 132, 1569-1576. Schrocksnadel, H., Baier-Bitterlich, G., Dapunt, O., Wachter, H., Fuchs, D., 1996. Decreased plasma tryptophan in pregnancy. Obstetrics and gynecology 88, 47-50. Schultz, D.R., Arnold, P.I., 1990. Properties of four acute phase proteins: C-reactive protein, serum amyloid A protein, alpha 1-acid glycoprotein, and fibrinogen. Seminars in arthritis and rheumatism 20, 129-147. Schwarcz, R., 2004. The kynurenine pathway of tryptophan degradation as a drug target. Current opinion in pharmacology 4, 12-17. Schwarcz, R., Du, F., 1991. Quinolinic acid and kynurenic acid in the mammalian brain. Advances in experimental medicine and biology 294, 185-199. Scott, K.M., McGee, M.A., Wells, J.E., Oakley Browne, M.A., 2008. Obesity and mental disorders in the adult general population. Journal of psychosomatic research 64, 97-105. Seidel, A., Arolt, V., Hunstiger, M., Rink, L., Behnisch, A., Kirchner, H., 1995. Cytokine production and serum proteins in depression. Scandinavian journal of immunology 41, 534-538. Sharma, R.J., Macallan, D.C., Sedgwick, P., Remick, D.G., Griffin, G.E., 1992. Kinetics of endotoxininduced acute-phase protein gene expression and its modulation by TNF-alpha monoclonal antibody. The American journal of physiology 262, R786-793. Sheline, Y.I., 2000. 3D MRI studies of neuroanatomic changes in unipolar major depression: the role of stress and medical comorbidity. Biological psychiatry 48, 791-800. Shimizu, T., Nomiyama, S., Hirata, F., Hayaishi, O., 1978. Indoleamine 2,3-dioxygenase. Purification and some properties. The Journal of biological chemistry 253, 4700-4706. Shimizu, Y., Newman, W., Tanaka, Y., Shaw, S., 1992. Lymphocyte interactions with endothelial cells. Immunology today 13, 106-112. Shizuya, K., Komori, T., Fujiwara, R., Miyahara, S., Ohmori, M., Nomura, J., 1998. The expressions of mRNAs for interleukin-6 (IL-6) and the IL-6 receptor (IL-6R) in the rat hypothalamus and midbrain during restraint stress. Life sciences 62, 2315-2320. Shore, S.A., 2008. Obesity and asthma: possible mechanisms. The Journal of allergy and clinical immunology 121, 1087-1093; quiz 1094-1085. Sierra-Honigmann, M.R., Nath, A.K., Murakami, C., Garcia-Cardena, G., Papapetropoulos, A., Sessa, W.C., Madge, L.A., Schechner, J.S., Schwabb, M.B., Polverini, P.J., Flores-Riveros, J.R., 1998. Biological action of leptin as an angiogenic factor. Science (New York, N.Y 281, 1683-1686. Smith, A.G., Sheridan, P.A., Harp, J.B., Beck, M.A., 2007. Diet-induced obese mice have increased mortality and altered immune responses when infected with influenza virus. J Nutr 137, 1236-1243. 270 Smith, A.P., Tyrrell, D.A., Al-Nakib, W., Coyle, K.B., Donovan, C.B., Higgins, P.G., Willman, J.S., 1987a. Effects of experimentally induced respiratory virus infections and illness on psychomotor performance. Neuropsychobiology 18, 144-148. Smith, A.P., Tyrrell, D.A., Coyle, K., Willman, J.S., 1987b. Selective effects of minor illnesses on human performance. Br J Psychol 78 ( Pt 2), 183-188. Smith, G.P., 2000. The controls of eating: a shift from nutritional homeostasis to behavioral neuroscience. Nutrition (Burbank, Los Angeles County, Calif 16, 814-820. Sparkman, N.L., Martin, L.A., Calvert, W.S., Boehm, G.W., 2005. Effects of intraperitoneal lipopolysaccharide on Morris maze performance in year-old and 2-month-old female C57BL/6J mice. Behavioural brain research 159, 145-151. Spinedi, E., Gaillard, R.C., 1998. A regulatory loop between the hypothalamo-pituitary-adrenal (HPA) axis and circulating leptin: a physiological role of ACTH. Endocrinology 139, 4016-4020. Stenberg, V.I., Bouley, M.G., Katz, B.M., Lee, K.J., Parmar, S.S., 1990. Negative endocrine control system for inflammation in rats. Agents and actions 29, 189-195. Stephens, T.W., Basinski, M., Bristow, P.K., Bue-Valleskey, J.M., Burgett, S.G., Craft, L., Hale, J., Hoffmann, J., Hsiung, H.M., Kriauciunas, A., et al., 1995. The role of neuropeptide Y in the antiobesity action of the obese gene product. Nature 377, 530-532. Steppan, C.M., Bailey, S.T., Bhat, S., Brown, E.J., Banerjee, R.R., Wright, C.M., Patel, H.R., Ahima, R.S., Lazar, M.A., 2001. The hormone resistin links obesity to diabetes. Nature 409, 307-312. Steru, L., Chermat, R., Thierry, B., Simon, P., 1985. The tail suspension test: a new method for screening antidepressants in mice. Psychopharmacology 85, 367-370. Stetson, D.B., Medzhitov, R., 2006. Type I interferons in host defense. Immunity 25, 373-381. Stone, T.W., 1993. Neuropharmacology of quinolinic and kynurenic acids. Pharmacological reviews 45, 309-379. Strobel, A., Issad, T., Camoin, L., Ozata, M., Strosberg, A.D., 1998. A leptin missense mutation associated with hypogonadism and morbid obesity. Nature genetics 18, 213-215. Strohle, A., Holsboer, F., 2003. Stress responsive neurohormones in depression and anxiety. Pharmacopsychiatry 36 Suppl 3, S207-214. Stunkard, A.J., Faith, M.S., Allison, K.C., 2003. Depression and obesity. Biological psychiatry 54, 330-337. Suda, T., Sumitomo, T., Nakano, Y., Tozawa, F., Ushiyama, T., Demura, H., 1990. Glucocorticoids decrease a binding of corticotropin-releasing hormone-binding protein in human plasma. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 71, 913-917. Sugrue, M.F., 1987. Neuropharmacology of drugs affecting food intake. Pharmacology & therapeutics 32, 145-182. 271 Swiergiel, A.H., Dunn, A.J., 2007. Effects of interleukin-1beta and lipopolysaccharide on behavior of mice in the elevated plus-maze and open field tests. Pharmacology, biochemistry, and behavior 86, 651-659. Tada, T., Takemori, T., Okumura, K., Nonaka, M., Tokuhisa, T., 1978. Two distinct types of helper T cells involved in the secondary antibody response: independent and synergistic effects of Ia- and Ia+ helper T cells. The Journal of experimental medicine 147, 446-458. Takahashi, N., Waelput, W., Guisez, Y., 1999. Leptin is an endogenous protective protein against the toxicity exerted by tumor necrosis factor. The Journal of experimental medicine 189, 207-212. Takeda, S., Elefteriou, F., Levasseur, R., Liu, X., Zhao, L., Parker, K.L., Armstrong, D., Ducy, P., Karsenty, G., 2002. Leptin regulates bone formation via the sympathetic nervous system. Cell 111, 305-317. Takeshita, N., Yoshino, T., Mutoh, S., 2000. Possible involvement of corticosterone in bone loss of genetically diabetic db/db mice. Hormone and metabolic research. Hormon- und Stoffwechselforschung 32, 147-151. Takikawa, O., Yoshida, R., Kido, R., Hayaishi, O., 1986. Tryptophan degradation in mice initiated by indoleamine 2,3-dioxygenase. The Journal of biological chemistry 261, 3648-3653. Tanaka, T., Knox, W.E., 1959. The nature and mechanism of the tryptophan pyrrolase (peroxidaseoxidase) reaction of Pseudomonas and of rat liver. The Journal of biological chemistry 234, 11621170. Tancredi, V., D'Antuono, M., Cafe, C., Giovedi, S., Bue, M.C., D'Arcangelo, G., Onofri, F., Benfenati, F., 2000. The inhibitory effects of interleukin-6 on synaptic plasticity in the rat hippocampus are associated with an inhibition of mitogen-activated protein kinase ERK. Journal of neurochemistry 75, 634-643. Tancredi, V., D'Arcangelo, G., Grassi, F., Tarroni, P., Palmieri, G., Santoni, A., Eusebi, F., 1992. Tumor necrosis factor alters synaptic transmission in rat hippocampal slices. Neuroscience letters 146, 176-178. Tataranni, P.A., Larson, D.E., Snitker, S., Young, J.B., Flatt, J.P., Ravussin, E., 1996. Effects of glucocorticoids on energy metabolism and food intake in humans. The American journal of physiology 271, E317-325. Tatemoto, K., Carlquist, M., Mutt, V., 1982. Neuropeptide Y--a novel brain peptide with structural similarities to peptide YY and pancreatic polypeptide. Nature 296, 659-660. Taylor, M.W., Feng, G.S., 1991. Relationship between interferon-gamma, indoleamine 2,3dioxygenase, and tryptophan catabolism. Faseb J 5, 2516-2522. Thibaut de Saint Pol, I., 2007. L'obésité en France : les écarts entre catégories sociales s'accroissent INSEE. Thoeringer, C.K., Sillaber, I., Roedel, A., Erhardt, A., Mueller, M.B., Ohl, F., Holsboer, F., Keck, M.E., 2007. The temporal dynamics of intrahippocampal corticosterone in response to stress-related 272 stimuli with different emotional and physical load: an in vivo microdialysis study in C57BL/6 and DBA/2 inbred mice. Psychoneuroendocrinology 32, 746-757. Tilders, F.J., DeRijk, R.H., Van Dam, A.M., Vincent, V.A., Schotanus, K., Persoons, J.H., 1994. Activation of the hypothalamus-pituitary-adrenal axis by bacterial endotoxins: routes and intermediate signals. Psychoneuroendocrinology 19, 209-232. Tilg, H., Moschen, A.R., 2006. Adipocytokines: mediators linking adipose tissue, inflammation and immunity. Nature reviews 6, 772-783. Tilg, H., Vannier, E., Vachino, G., Dinarello, C.A., Mier, J.W., 1993. Antiinflammatory properties of hepatic acute phase proteins: preferential induction of interleukin 1 (IL-1) receptor antagonist over IL1 beta synthesis by human peripheral blood mononuclear cells. The Journal of experimental medicine 178, 1629-1636. Toni, R., Malaguti, A., Castorina, S., Roti, E., Lechan, R.M., 2004. New paradigms in neuroendocrinology: relationships between obesity, systemic inflammation and the neuroendocrine system. Journal of endocrinological investigation 27, 182-186. Tounian, L., Guy-Grand 2005. Ghrelin, the only orexigene hormone. Cahier de nutrition et diététique 40, 270-280. Tracey, V.V., De, N.C., Harper, J.R., 1971. Obesity and respiratory infection in infants and young children. British medical journal 1, 16-18. Trayhurn, P., Wood, I.S., 2004. Adipokines: inflammation and the pleiotropic role of white adipose tissue. Br J Nutr 92, 347-355. Tschop, M., Heiman, M.L., 2001. Rodent obesity models: an overview. Exp Clin Endocrinol Diabetes 109, 307-319. Tsigos, C., Chrousos, G.P., 2002. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis, neuroendocrine factors and stress. Journal of psychosomatic research 53, 865-871. Tsigos, C., Papanicolaou, D.A., Defensor, R., Mitsiadis, C.S., Kyrou, I., Chrousos, G.P., 1997. Dose effects of recombinant human interleukin-6 on pituitary hormone secretion and energy expenditure. Neuroendocrinology 66, 54-62. Turck, J., Oberdorfer, C., Vogel, T., Mackenzie, C.R., Daubener, W., 2005. Enhancement of antimicrobial effects by glucocorticoids. Medical microbiology and immunology 194, 47-53. Turnbull, A.V., Rivier, C., 1995. Regulation of the HPA axis by cytokines. Brain, behavior, and immunity 9, 253-275. Uchida, S., Kitamoto, A., Umeeda, H., Nakagawa, N., Masushige, S., Kida, S., 2005. Chronic reduction in dietary tryptophan leads to changes in the emotional response to stress in mice. Journal of nutritional science and vitaminology 51, 175-181. Uchida, S., Umeeda, H., Kitamoto, A., Masushige, S., Kida, S., 2007. Chronic reduction in dietary tryptophan leads to a selective impairment of contextual fear memory in mice. Brain research 1149, 149-156. 273 Uehara, A., Sekiya, C., Takasugi, Y., Namiki, M., Arimura, A., 1989. Anorexia induced by interleukin 1: involvement of corticotropin-releasing factor. The American journal of physiology 257, R613-617. Urakubo, A., Jarskog, L.F., Lieberman, J.A., Gilmore, J.H., 2001. Prenatal exposure to maternal infection alters cytokine expression in the placenta, amniotic fluid, and fetal brain. Schizophrenia research 47, 27-36. Vaccarino, A.L., Evans, K.R., Sills, T.L., Kalali, A.H., 2008. Symptoms of anxiety in depression: assessment of item performance of the Hamilton Anxiety Rating Scale in patients with depression. Depression and anxiety. Vachharajani, V., Russell, J.M., Scott, K.L., Conrad, S., Stokes, K.Y., Tallam, L., Hall, J., Granger, D.N., 2005. Obesity exacerbates sepsis-induced inflammation and microvascular dysfunction in mouse brain. Microcirculation 12, 183-194. Valentine, A.D., Meyers, C.A., Kling, M.A., Richelson, E., Hauser, P., 1998. Mood and cognitive side effects of interferon-alpha therapy. Seminars in oncology 25, 39-47. Vallieres, L., Campbell, I.L., Gage, F.H., Sawchenko, P.E., 2002. Reduced hippocampal neurogenesis in adult transgenic mice with chronic astrocytic production of interleukin-6. J Neurosci 22, 486-492. van Crevel, R., Karyadi, E., Netea, M.G., Verhoef, H., Nelwan, R.H., West, C.E., van der Meer, J.W., 2002. Decreased plasma leptin concentrations in tuberculosis patients are associated with wasting and inflammation. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 87, 758-763. van Dam, A.M., Brouns, M., Louisse, S., Berkenbosch, F., 1992. Appearance of interleukin-1 in macrophages and in ramified microglia in the brain of endotoxin-treated rats: a pathway for the induction of non-specific symptoms of sickness? Brain research 588, 291-296. van der Meer, M.J., Sweep, C.G., Rijnkels, C.E., Pesman, G.J., Tilders, F.J., Kloppenborg, P.W., Hermus, A.R., 1996. Acute stimulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis by IL-1 beta, TNF alpha and IL-6: a dose response study. Journal of endocrinological investigation 19, 175-182. van Praag, H.M., 1982. Depression. Lancet 2, 1259-1264. Vannier, E., Miller, L.C., Dinarello, C.A., 1992. Coordinated antiinflammatory effects of interleukin 4: interleukin 4 suppresses interleukin 1 production but up-regulates gene expression and synthesis of interleukin 1 receptor antagonist. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 89, 4076-4080. Vickers, S.P., Benwell, K.R., Porter, R.H., Bickerdike, M.J., Kennett, G.A., Dourish, C.T., 2000. Comparative effects of continuous infusion of mCPP, Ro 60-0175 and d-fenfluramine on food intake, water intake, body weight and locomotor activity in rats. British journal of pharmacology 130, 13051314. Wadden, T.A., Butryn, M.L., Sarwer, D.B., Fabricatore, A.N., Crerand, C.E., Lipschutz, P.E., Faulconbridge, L., Raper, S.E., Williams, N.N., 2006. Comparison of psychosocial status in treatmentseeking women with class III vs. class I-II obesity. Obesity (Silver Spring, Md 14 Suppl 2, 90S-98S. 274 Wahl, S.M., 1992. Transforming growth factor beta (TGF-beta) in inflammation: a cause and a cure. Journal of clinical immunology 12, 61-74. Walker, L.G., Wesnes, K.P., Heys, S.D., Walker, M.B., Lolley, J., Eremin, O., 1996. The cognitive effects of recombinant interleukin-2 (rIL-2) therapy: a controlled clinical trial using computerised assessments. Eur J Cancer 32A, 2275-2283. Wallenius, V., Wallenius, K., Ahren, B., Rudling, M., Carlsten, H., Dickson, S.L., Ohlsson, C., Jansson, J.O., 2002. Interleukin-6-deficient mice develop mature-onset obesity. Nature medicine 8, 7579. Walsh, D.T., Betmouni, S., Perry, V.H., 2001. Absence of detectable IL-1beta production in murine prion disease: a model of chronic neurodegeneration. Journal of neuropathology and experimental neurology 60, 173-182. Wang, J., Liu, R., Hawkins, M., Barzilai, N., Rossetti, L., 1998. A nutrient-sensing pathway regulates leptin gene expression in muscle and fat. Nature 393, 684-688. Watanobe, H., Takebe, K., 1992. Intravenous administration of tumor necrosis factor-alpha stimulates corticotropin releasing hormone secretion in the push-pull cannulated median eminence of freely moving rats. Neuropeptides 22, 81-84. Way, J.M., Gorgun, C.Z., Tong, Q., Uysal, K.T., Brown, K.K., Harrington, W.W., Oliver, W.R., Jr., Willson, T.M., Kliewer, S.A., Hotamisligil, G.S., 2001. Adipose tissue resistin expression is severely suppressed in obesity and stimulated by peroxisome proliferator-activated receptor gamma agonists. The Journal of biological chemistry 276, 25651-25653. Weaver, J.D., Huang, M.H., Albert, M., Harris, T., Rowe, J.W., Seeman, T.E., 2002. Interleukin-6 and risk of cognitive decline: MacArthur studies of successful aging. Neurology 59, 371-378. Weinberg, E.D., 1984. Iron withholding: a defense against infection and neoplasia. Physiological reviews 64, 65-102. Weisberg, S.P., McCann, D., Desai, M., Rosenbaum, M., Leibel, R.L., Ferrante, A.W., Jr., 2003. Obesity is associated with macrophage accumulation in adipose tissue. The Journal of clinical investigation 112, 1796-1808. Wellen, K.E., Hotamisligil, G.S., 2003. Obesity-induced inflammatory changes in adipose tissue. The Journal of clinical investigation 112, 1785-1788. Williams, C.A., Harry, R.A., McLeod, J.D., 2008. Apoptotic cells induce dendritic cell-mediated suppression via interferon-gamma-induced IDO. Immunology 124, 89-101. Winocur, G., 1985. The hippocampus and thalamus: their roles in short- and long-term memory and the effects of interference. Behavioural brain research 16, 135-152. Winocur, G., 1991. Functional dissociation of the hippocampus and prefrontal cortex in learning and memory. Psychobiology 19, 11-20. Winocur, G., Greenwood, C.E., 1999. The effects of high fat diets and environmental influences on cognitive performance in rats. Behavioural brain research 101, 153-161. 275 Winocur, G., Greenwood, C.E., 2005. Studies of the effects of high fat diets on cognitive function in a rat model. Neurobiology of aging 26 Suppl 1, 46-49. Winocur, G., Greenwood, C.E., Piroli, G.G., Grillo, C.A., Reznikov, L.R., Reagan, L.P., McEwen, B.S., 2005. Memory impairment in obese Zucker rats: an investigation of cognitive function in an animal model of insulin resistance and obesity. Behavioral neuroscience 119, 1389-1395. Winters, B.D., Saksida, L.M., Bussey, T.J., 2008. Object recognition memory: neurobiological mechanisms of encoding, consolidation and retrieval. Neuroscience and biobehavioral reviews 32, 1055-1070. Wirleitner, B., Neurauter, G., Schrocksnadel, K., Frick, B., Fuchs, D., 2003. Interferon-gammainduced conversion of tryptophan: immunologic and neuropsychiatric aspects. Current medicinal chemistry 10, 1581-1591. Wirth, S., Yanike, M., Frank, L.M., Smith, A.C., Brown, E.N., Suzuki, W.A., 2003. Single neurons in the monkey hippocampus and learning of new associations. Science (New York, N.Y 300, 1578-1581. Wolf, G., 2002. Glucocorticoids in adipocytes stimulate visceral obesity. Nutrition reviews 60, 148151. Woods, S.C., Seeley, R.J., 2000. Adiposity signals and the control of energy homeostasis. Nutrition (Burbank, Los Angeles County, Calif 16, 894-902. Xiao, E., Xia-Zhang, L., Vulliemoz, N.R., Ferin, M., Wardlaw, S.L., 2003. Leptin modulates inflammatory cytokine and neuroendocrine responses to endotoxin in the primate. Endocrinology 144, 4350-4353. Xin, L., Blatteis, C.M., 1992. Blockade by interleukin-1 receptor antagonist of IL-1 beta-induced neuronal activity in guinea pig preoptic area slices. Brain research 569, 348-352. Xu, A., Wang, Y., Keshaw, H., Xu, L.Y., Lam, K.S., Cooper, G.J., 2003a. The fat-derived hormone adiponectin alleviates alcoholic and nonalcoholic fatty liver diseases in mice. The Journal of clinical investigation 112, 91-100. Xu, B., Goulding, E.H., Zang, K., Cepoi, D., Cone, R.D., Jones, K.R., Tecott, L.H., Reichardt, L.F., 2003b. Brain-derived neurotrophic factor regulates energy balance downstream of melanocortin-4 receptor. Nat Neurosci 6, 736-742. Xu, H., Barnes, G.T., Yang, Q., Tan, G., Yang, D., Chou, C.J., Sole, J., Nichols, A., Ross, J.S., Tartaglia, L.A., Chen, H., 2003c. Chronic inflammation in fat plays a crucial role in the development of obesity-related insulin resistance. The Journal of clinical investigation 112, 1821-1830. Yamada, K., Iida, R., Miyamoto, Y., Saito, K., Sekikawa, K., Seishima, M., Nabeshima, T., 2000. Neurobehavioral alterations in mice with a targeted deletion of the tumor necrosis factor-alpha gene: implications for emotional behavior. Journal of neuroimmunology 111, 131-138. Yamamoto, S., Hayaishi, O., 1967. Tryptophan pyrrolase of rabbit intestine. D- and L-tryptophancleaving enzyme or enzymes. The Journal of biological chemistry 242, 5260-5266. 276 Yang, B., Trump, R.P., Shen, Y., McNulty, J.A., Clifton, L.G., Stimpson, S.A., Lin, P., Pahel, G.L., 2008. RU486 did not exacerbate cytokine release in mice challenged with LPS nor in db/db mice. BMC pharmacology 8, 7. Yeager, M.P., Guyre, P.M., Munck, A.U., 2004. Glucocorticoid regulation of the inflammatory response to injury. Acta anaesthesiologica Scandinavica 48, 799-813. Yirmiya, R., 1996. Endotoxin produces a depressive-like episode in rats. Brain research 711, 163-174. Yirmiya, R., Pollak, Y., Morag, M., Reichenberg, A., Barak, O., Avitsur, R., Shavit, Y., Ovadia, H., Weidenfeld, J., Morag, A., Newman, M.E., Pollmacher, T., 2000. Illness, cytokines, and depression. Annals of the New York Academy of Sciences 917, 478-487. Yoshida, R., Hayaishi, O., 1978. Induction of pulmonary indoleamine 2,3-dioxygenase by intraperitoneal injection of bacterial lipopolysaccharide. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 75, 3998-4000. Young, S.N., Leyton, M., 2002. The role of serotonin in human mood and social interaction. Insight from altered tryptophan levels. Pharmacology, biochemistry, and behavior 71, 857-865. Yudkin, J.S., Kumari, M., Humphries, S.E., Mohamed-Ali, V., 2000. Inflammation, obesity, stress and coronary heart disease: is interleukin-6 the link? Atherosclerosis 148, 209-214. Zalcman, S., Green-Johnson, J.M., Murray, L., Nance, D.M., Dyck, D., Anisman, H., Greenberg, A.H., 1994. Cytokine-specific central monoamine alterations induced by interleukin-1, -2 and -6. Brain research 643, 40-49. Zhang, Y., Proenca, R., Maffei, M., Barone, M., Leopold, L., Friedman, J.M., 1994. Positional cloning of the mouse obese gene and its human homologue. Nature 372, 425-432. Zhou, H.R., Kim, E.K., Kim, H., Claycombe, K.J., 2007. Obesity-associated mouse adipose stem cell secretion of monocyte chemotactic protein-1. Am J Physiol Endocrinol Metab 293, E1153-1158. 277 278 Publications et communications 279 280 Publications Dinel A-L, André C, Layé S and Castanon N. “Diet-induced obesity in mice exacerbates neuroinflammation and sickness elicited by systemic infection”. Soumis à Journal of Immunology Dinel A-L, André C, Layé S and Castanon N. “Diet-induced obesity in mice impairs spatial memory using a two-trial recognition task” En cours de soumission Dinel A-L, André C, Layé S and Castanon N. “Anxiety-like disorders are associated with Diet-induced obesity in mice” En préparation Dinel A-L, André C, Layé S and Castanon N. “Obesity-induced inflammation is associated with mood and cognitive disorders in DB/DB mice” Soumis à Brain, Behavior and Immunity Communications orales Dinel A.L., André C. & Castanon N. “Consequences of obesity and inflammation during pre and post-natal development on mood and cognitive performance of child” 17th Nutrition Scientific Seminar of Danone Institute, November 2008 Dinel A.L., André C., Lestage J. & Castanon N. “Impact of obesity on mood and cognitive disorders” Neurosciences Day, Neuroscience Institute of Bordeaux (INB), Bordeaux, March 2008 Communications affichées Dinel A.L., André C., Lestage J., Dantzer R. & Castanon N. “Implication of inflammation in cognitive disorder associated with obesity” 8th Forum of Neurosciences Society, Montpellier, May 2007 Dinel A.L., André C., Lestage J. & Castanon N. “Mood and cognitive disorders associated with obesity” Scientific day of doctoral school, Arcachon, April 2007 281 André C., Dinel A.L., Lestage J., Dantzer R. & Castanon N. “Mechanisms of cytokineinduced activation of brain indoleamine 2, 3-dioxygenase, a tryptophan- catabolizing enzyme, involved in behavioural and mood alterations observed in mice models of infection and obesity.” 5th Forum of European Neuroscience, Vienna, July 8-12, 2006 282 Abréviations 283 284 3-HK 5-HT ACTH AgRP ATP AVP BHE BMI COX-2 CRH CRP DA DIO DSM EBP EPM FST GC GHSs HPA IDO IFN IL IMC ITI JAK KMO KYN KYNA LPS MAPK MCP-1 NA NAD NDMA NDRI NFkB NK NPYP NTS OCV OF OMS PAMPS PGE2 PI3K PLT POMC PPAR PRR 3-hydroxykynurénine sérotonine adrenocorticotropin hormone agouti-related protein adénosine triphosphate arginine vasopressine barrière hématoencéphalique Body Mass Index cyclooxygénase 2 corticotropin releasing hormone protéine C-réactive dopamine diet-induced obesity diagnostic and statistical manual of mental disorders enhancer binding proteins Elevated Plus Maze forced swim test glucocorticoïde sécrétagogues de l'hormone de croissance axe hypothalamo-hypophyso-corticosurrénalien indoléamine 2,3-dioxygénase interferon interleukine indice de masse corporelle interval inter-trial janus kinase kynurénine-3-monooxygénase kynurénine acide kynurénique lipopolysaccharide mitogen-activated protein kinase monocyte chemoattractant protein-1 noradrénaline nicotinamide adénine dinucléotide N-méthyl D-aspartate noradrenaline and dopamine reuptake inhibitor nuclear factor kappa B natural killer neurones à neuropeptide Y noyau du tractus solitaire organes circumventriculaires open-field Organisation Mondiale de la Santé pathogen-associated molecular patterns prostaglandines E2 phosphatidylinositol 3-kinase potentialisation à long terme pro-opiomélanocortine peroxisome proliferator activated receptor pattern-recognition receptors 285 PVH QUIN SI SNC SNRI SOCS SSRI STAT TDO TGF TLR TNF Trp TST α-MSH noyau paraventriculaire acide quinolinique système immunitaire système nerveux central serotonin-noradrenaline reuptake inhibitor suppressor-of-cytokine signaling selective serotonin reuptake inhibitor signal transducer and activator of transcription tryptophane 2-3-dioxygénase transforming growth factors toll-like receptors tumor necrosis factors L-tryptophane tail suspension test α-melanocyte-stimulating hormone 286 Index des figures 287 288 Figure 1 : La réponse inflammatoire Figure 2 : L’axe hypothalamo-hypophyso-corticosurrénalien Figure 3 : Les différents types de mémoire Figure 4 : Les voies de catabolisme du Tryptophane Figure 5 : La voie de la Kynurenine Figure 6 : La répartition de la masse grasse chez la femme et chez ’homme Figure 7 : La prise alimentaire Figure 8 : L’obésité, une pathologie inflammatoire chronique Figure 9 : Voie de signalisation associée à la leptine et à l’IL-6 Figure 10 : Obésité – Inflammation - Troubles Figure 11 : Cinétique d’apparition des troubles Figure 12 : L’inflammation est associée à des modifications neuroendocrines et neurochimiques Figure 13 : Schéma récapitulatif Figure complémentaire : Concentrations en cytokines et adipokines évaluées dans le tissu adipeux par Luminex. 289 290