Colloque Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21

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Colloque Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21
Colloque « Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21 à la physiopathologie. » Paris Mai 2003
Colloque
Trisomie 21 : de la fonction des
gènes du chromosome 21 à la
physiopathologie.
Paris 2003
30 Mai
Amphithéâtre Costes
Hôpital du Val de Grâce
Place Alphonse Laveran 75005
Comité d’organisation
N. Créau (DR CNRS), J.M. Delabar (DR CNRS), B. Dutrillaux (DR
CNRS, Conseil Scientifique de l’AFRT), M. Hennequin (Pr, Conseil
Scientifique de Fait21), B. Kerdelhué (DR CNRS, Président du
Conseil Scientifique de la Fondation Jérome Lejeune).
Colloque « Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21 à la physiopathologie. » Paris Mai 2003
PROGRAMME
8H15 -8h50 : Arrivée des participants (installation des affiches et des diaporamas sur PC)
8h50- 9h
: Introduction
9h-10h30
: Session « Caractérisation du phénotype et des pathologies
associées à la trisomie 21 »
Modérateur : P.M. Sinet
- J-L Frendo
Trisomie 21 et différenciation du trophoblaste humain
- D. Satgé
Analyse des tumeurs solides des trisomiques 21, bilan actuel, intérêt
- M. Hennequin
Trisomie 21 : de l’anomalie aux troubles de la mastication
- J-L Guéant
Déterminants génétiques des métabolismes de l’homocystéine et de la vitamine B12
dans la Trisomie 21
10h30-11h :
Pause et visite des affiches
11h-12h30 : Session « Chromosome, gènes et fonctions »
Modérateur : M Simonneau
- J. Buard
Recombinaison péri-centromèrique et non-disjonction
- N. Créau
Canaux potassiques KIR et trisomie 21
- A. De Sario
Epigénétique des gènes BAGEs (B MELANOMA ANTIGENS)
- N. Janel
Effet de l’hyperhomocystéinémie sur l’activité de la paraoxonase 1
12h30- 14h : Déjeuner et visite des affiches
Colloque « Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21 à la physiopathologie. » Paris Mai 2003
14h-15h10 : Session « Modèles expérimentaux »
Modérateur : B. Kerdelhué
- J. London
Apoptose et surexpression de la SOD-1 : des rôles délétère ou protecteur suivant le
type cellulaire
- Y. Hérault
Vers de nouveaux modèles murins de la trisomie 21
- C. Chabert
Analyse fonctionnelle des gènes du chromosome 21 : 1. Capacités cognitives de souris
polytransgèniques pour la région chromosomique du syndrome de Down (DCR-1)
15h10-16h00 : Session « Analyse du transcriptome »
Modérateur : JM Delabar
- J-M. Moalic
Analyse du transcriptome de cerveau embryonnaire sur un modèle murin du
syndrome de Down : Identification d’un changement précoce du phénotype
moléculaire synaptique.
- MC. Potier
Caractérisation des réseaux de régulation gènique au cours du développement du
cervelet chez la souris trisomique 16 partielle (Ts1Cje)
16h00 -16h 20 : Session « Essais thérapeutiques »
Modérateur : PM. Sinet
- JL Bléhaut
Etude thérapeutique de l’acide folinique dans la trisomie 21
16h20-16h 50 : Pause et visite des affiches
16h50 -17h20 : Session « Le malade au quotidien »
AFRT : C. Poterlot – P De Vismes
FAIT 21 : S. Gaymard
Fondation Jérôme Lejeune : JM. Le Méné
Colloque « Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21 à la physiopathologie. » Paris Mai 2003
17h20 - 18H : Table ronde « les perspectives de la recherche et la construction d’un
groupe de réflexion sur la recherche sur la trisomie 21 et les pathologies associées au
chromosome 21. »
Sous la présidence de MO Réthoré
Modérateur : JM Delabar
N Créau, JM Delabar, D Satgé, M Hennequin, B Kerdelhué, C Mircher, J London, PM Sinet,
M Simonneau
COMMUNICATIONS ORALES
Trisomie 21 et différenciation du trophoblaste humain
J-L. Frendo, G. Pidoux, P. Gerbaud, P. Therond, J. Guibourdenche, D. Luton,
F. Muller & D. Evain-Brion
INSERM U427, faculté des Sciences Pharmaceutiques et Biologiques
4 avenue de l’Observatoire 75006 Paris
Tél : 01-53-73-96-02 Fax : 01-44-07-39-92 E-mail : [email protected]
Notre objectif est de comprendre l’impact de la trisomie 21 sur la
différenciation et les fonctions du trophoblaste humain. Dans le placenta humain, le
syncytiotrophoblaste qui borde les villosités choriales et baigne directement dans le sang
maternel de la chambre intervilleuse, est le lieu de tous les échanges foeto-maternels et de la
production des hormones spécifiques de la grossesse. Le syncytiotrophoblaste se forme par
différenciation et fusion des cytotrophoblastes mononucléés sous jacents. Nous avons isolé et
purifié les cytotrophoblastes à partir de placentas de trisomie 21 (trisomie 21 libre et
homogène) et de placentas contrôles de même age gestationnel (deuxième trimestre de la
grossesse). Après mise en culture, nous avons observé que les cytotrophoblastes trisomiques
agrègent mais contrairement aux contrôles, ils se différencient mal ou avec du retard et de fait,
ne fusionnent pas ou peu pour former le syncytiotrophoblaste. Ceci est en accord avec les
données histologiques révélant une augmentation de la couche cytotrophoblastique dans les
placentas de trisomie 21. Parmi les gènes du chromosome 21, la cuivre zinc superoxyde
dismutase (SOD-1) est surexprimée (X1,5) dans les cytotrophoblastes isolés de placenta de
trisomie 21. De même l’expression protéique (p<0,01) et l’activité de cette enzyme (p<0,05)
sont significativement augmentées dans les cellules trophoblastiques trisomiques. De plus, la
surexpression de la SOD-1 par transfection transitoire dans les cytotrophoblastes normaux
inhibe la formation et les fonctions hormonales du syncytiotrophoblaste. Cette anomalie de
fusion cellulaire peut être visualisée par surexpression de la SOD-1 couplée à la green
fluorescente protéine (GFP). Ce défaut de différenciation trophoblastique s’associe in vitro et
in vivo à une diminution de la production des hormones spécifiques de la grossesse.
En conclusion, la culture in vitro de trophoblastes de trisomie 21 nous offre un
modèle privilégié pour étudier l’impact de la trisomie 21 sur la fusion et la différenciation
cellulaire. En raison du rôle majeur du placenta au cours de la grossesse, une meilleure
connaissance de ses anomalies dans la trisomie 21 permettra de comprendre certains aspects
du développement fœtal dans cette anomalie génétique.
Analyse des tumeurs solides des trisomiques 21, bilan actuel, intérêt.
Satgé D. (Anatomie Pathologique Centre Hospitalier, Tulle)
Sasco AJ. (CIRC et INSERM, Lyon)
Sommelet D. (Oncologie Pédiatrique Centre Hospitalier Universitaire, Nancy)
Réthoré M-O. (Centre Médical Jérôme Lejeune, Paris)
Vekemans M. (Cytogénétique, Hôpital Necker, Paris)
Introduction : Les tumeurs solides ont une répartition particulière dans la
trisomie 21. Elles sont globalement diminuées, mais ceci masque des variations complexes
d’incidence, certains types histologiques pouvant être plus fréquents que dans la population
générale. Méthode : Revue de la littérature et bilan d’enquêtes personnelles. Résultats : Chez
l’enfant il y a un excès de tumeurs germinales surtout abdominales, de lymphomes, de
rétinoblastomes alors que les tumeurs embryonnaires : neuroblastomes, nephroblastomes,
hépatoblastomes, medulloblastomes et les tumeurs cérébrales sont rares. Chez l’adulte il y a
un excès de tumeurs germinales gonadiques, de lymphomes et peut-être de sarcomes. Le
statut des tumeurs hépatiques, biliaires, gastriques et oesophagiennes reste à déterminer. Les
cancers mammaires, utérins, urinaires, cutanés, bronchiques et ORL sont fortement diminués.
Discussion : Ces variations sont à corréler 1° avec les données de génétique et de
cytogénétique des cancers qui suggèrent l’existence de gènes suppresseur de tumeurs sur le
chromosome 21 pour les cancers mammaires, gastriques, ORL et bronchiques. 2° avec des
anomalies cellulaires et tissulaires de la trisomie 21, notamment immunitaires, hormonales, du
contrôle de l’apoptose, de l’oxydation, de la maturation et du vieillissement cellulaire. 3° avec
des différences d’exposition aux facteurs exogènes. Conclusion : La connaissance des
tumeurs solides des trisomiques 21 doit aider à un meilleur suivi médical de ces personnes et
contribuer à mieux connaître les anomalies tissulaires par une approche différente.
Trisomie 21 : de l’anomalie génétique aux troubles de la mastication
Hennequin M, Veyrune JL, Faulks D, Allison PJ
Faculté de Chirurgie Dentaire, 11, Bd Charles de Gaulle,
63000 Clermont Ferrand
Tél : 04-73-17-73-27 Fax : 04-73-17-73-09 E-mail : [email protected]
Etat de la question: La trisomie 21 induit, au niveau de la sphère orale, un
ensemble de caractéristiques anatomiques et physiologiques qui constituent un syndrome
bucco-facial spécifiques que l’on retrouve, de manière plus ou moins importante, chez toutes
les personnes porteuses de cette anomalie génétique. Différentes enquêtes font état des
problèmes de nutrition rencontrés par les parents d’enfants porteurs. On constate
fréquemment : des difficultés de succion au sein ou au biberon, des retards d’acquisition dans
la manipulation des aliments avec les doigts, avec la cuillère et dans l’utilisation du verre, des
refus de certains aliments, en particulier les aliments durs, des comportements aberrants,
comme la conservation du bol en bouche, le refus d’avaler suivi du rejet de la nourriture, des
micro fausses-routes, pour les aliments liquides et semi-liquides, qui contribuent aux
affections pulmonaires, l’ingestion d’aliments non mastiqués, avec apparition de rots. Les
troubles fonctionnels liés à la sphère orale restent peu étudiés chez l’adulte, bien que le
comportement au cours des repas puisse influer sur la socialisation de ces personnes .
Objectifs de l’étude : Cette étude a pour but d’évaluer le niveau d’incapacité
masticatoire pour une groupe de 11 jeunes adultes porteurs de trisomie 21 (groupe T21),
comparés à un groupe de 12 témoins (groupe contrôle). Méthode : La mastication est évaluée
par observation en vidéo du comportement masticatoire au cours d’un repas standardisé
comportant 10 catégories d’aliments naturels. Cette méthode, non invasive a préalablement
été validée, en se rapportant à la méthode de référence qu’est l’électromyographie. Les
variables relevées à la lecture des enregistrements sont : le nombre de cycles de mastication
par aliment proposé (MC), le temps de mastication (MT), le nombre de cycles réalisés avec
une protrusion linguale (OMC), et le nombre de refus d’aliments. Ces données sont utilisées
pour générer la fréquence de mastication (FM=MC/MT) et le pourcentage de cycles révélant
une praxie linguale ([OMC/MC] x 100). Résultats : La fréquence de mastication varie selon
l’aliment de 0.88 à 1.09 (moyenne:1.0) cycles/seconde pour le groupe T21 et elle est
significativement diminuée par rapport au groupe contrôle (de 1.12 à 1.48 cycles/seconde,
moyenne :1.29) excepté pour la compote de pomme. Simultanément, le pourcentage de cycles
avec praxie linguale et les refus alimentaires sont augmentés dans le groupe T21.
Conclusions : Ces résultats laissent supposer que les personnes trisomiques
déglutissent un bol alimentaire moins fragmenté que les personnes de la population générale.
Cette étude est la première à décrire un niveau d’incapacité masticatoire pour des adultes
porteurs de trisomie 21, et doit être prise en compte lors de l’évaluation des troubles
nutritionnels de ces personnes et également lors de l’étude de leurs conditions de
socialisation.
Homocysteine and genetic determinants of vitamin B12 in Down syndrome.
JL Guéant1, RM Guéant-Rodriguez1, A Romano2, G Anello2, P Bosco2, C Romano2, B Namour1.
INSERM 00-14, Nancy, France1,and IRCCS Oasi Maria S.S., Troina, Italy2
Tél : 03-83-15-44-8
Fax : 03-83-15-35-91
E-mail : [email protected]
Cellular homocysteine depends on nutritional determinants such as folates and vitamin B12, and on
genetic polymorphisms of methylene tetrahydrofolate reductase (MTHFR 677 C → T and 1298 A → C),
which catalyses the synthesis of methyl-tetrahydrofolate, of methionine synthase (MTR 2756 C → G),
which catalyses the methyl transfer from methyl-tetrahydrofolate to homocysteine and of methionine
synthase reductase (MTRR 66 A → G), which maintains MTR in active state. It also depends on a
polymorphism of transcobalamin (TC 777 CÆG), a plasma protein which delivers vitamin B12 (the cofactor of MTR) to cells.
Several in vitro data support the involvement of homocysteine in the multi-factorial pathogenesis
of sporadic Alzheimer disease (AD). Homocysteine potentiates β-amyloid neurotoxicity, impairs DNA
repair in hippocampal neurons and promotes apoptosis and hypersensitivity to exitotoxicity. In a recent 8year follow-up study, t-Hcys was a strong independent risk factor for the development of AD which was
not related to vitamin B12 and folates. This suggested the implication of genetic factors. Down syndrome
(DS), or trisomy 21, is due to a failure of normal chromosomal segregation during meiosis. It is also the
most frequent genetic cause of Alheimer-type dementia A deficiency in folates and methyl-donors may be
associated with defective chromosome recombination and abnormal chromosome segregation.. The
MTHFR 677 C → T and MTRR 66 A → G polymorphisms are respectively associated with a risk of having
a DS child of 1.9 – 2.6 and 2.6 in mothers of DS patients from North America. The combined MTHFR and
MTRR polymorphisms are associated with a greater risk with an OR of 4.1 and 3.0, respectively in North
America and Ireland. However, contradictory findings have been recently published in other European
countries. In a recent case control study performed by our group in South Italy, homocysteine and MTR
2756 AG/GG genotype were significant risk factors for having a DS child, with OR of 6.7 (P = 0.016) and
of 3.5 (P = 0.028), respectively. MTR 2756 AG/GG genotype increased also significantly the risk of being a
DS case, with an OR of 3.8 (P = 0.009). In addition, we found that 677 TT and 677 CT/1298 AC genotypes
of MTHFR and t-Hcys were 3 potent risk factors for advanced mental retardation of DS patients.
In conclusion, t-Hcys is a risk factor of AD and DS dementia However, contradictory data have
been produced, concerning its nutritional and genetic determinants, which may correspond to differences in
the environment and genetic characteristics of the populations. This illustrates the need for evaluating all
the gene- nutrients and gene-gene interactions to better understand the involvement of the one carbone
metabolism in the pathogenesis of these diseases.
Recombinaison péri-centromérique et non-disjonction
Buard J
Séquences Répétées et Centromères Humains
Institut de Génétique Humaine
141 rue de la Cardonille
34396 Montpellier cedex 5
Tél : 04-99-61-99-76
E-mail : [email protected]
Meiotic recombination is generally suppressed across the centromere of
eukaryotic chromosomes. In human, megabase-long satellite sequences and contiguous
segmental duplications hamper both physical and fine scale genetic mapping in regions
flanking centromeric DNA. We have developed polymorphic microsatellite markers
embedded within the duplicated most proximal sequences of the long arm and of the short
arm of chromosome 21 by using paralogous specific bases as anchor points for their specific
detection. Segregation analysis in CEPH reference pedigrees shows that recombination is
repressed significantly across the centromere of chromosome 21 both in male and in female
but not in the most proximal 21q region in female. Finally, none of twenty eight families with
a trisomy 21 child previously associated with a nullitransitional meiosis I non-disjunction
event presents a recombination exchange across the centromere. This confirms that, for this
group of errors, the lack of recombination is the primary susceptibility factor, not abnormal
recombination in the centromeric region.
Canaux potassiques KIR et trisomie 21
Créau N, Thiery E, Thomas S, Berthuy I
EA3508 Université Paris7
Tél : 01-44-27-56-99
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
Deux canaux potassiques de la famille KIR (K+ Inwardly Rectifier : GIRK2 ou
KIR3.2 et KIR4.2) ont été identifiés localisés dans une région critique pour la trisomie 21 associée à
l’hyperlaxité ligamentaire, l’hypotonie musculaire, le retard mental et aux anomalies cardiaques
touchant environ 40% des trisomiques 21.
Les canaux KIR fonctionnels sont des tétramères (homo ou hétéro) impliqués dans diverses fonctions
selon les cellules où ils s’expriment ( régulation de l’excitabilité, du volume cellulaires, secrétion
hormonale, flux ioniques), en permettant préférentiellement l’entrée des ions potassium à l’intérieur de
la cellule. La modulation d’expression d’un gène KIR peut ainsi modifier les caractéristiques de
nombreux canaux en changeant :
- la composition en sous-unités du canal fonctionnel ( ratio entre les hétéro- et les homotétramères) et
ainsi ses propriétés physiologiques (sensibilité au pH, aux différents effecteurs ..),
- le niveau d’expression de ses partenaires (Sutherland et al. 1999),
- les structures cellulaires (Burrone et al. 2002).
De plus, les dysmorphies associées au syndrome d’Andersen dû à une mutation dans un canal KIR
(Plaster et al. 2001), indiquent la possibilité que ces gènes soient impliqués dans le développement
chez l’homme.
Le gène GIRK2 est le gène le plus connu, grâce à l’identification chez la souris d’une mutation
(weaver), qui a permis de découvrir que ce canal jouait un rôle dans la migration des cellules de
Purkinje, étape importante dans le développement du cervelet.
Le gène KIR4.2 a été isolé au laboratoire et son patron d’expression au cours du développement chez
la souris a montré qu’il s’exprimait précocément dans la thyroïde, les tendons et les ligaments ainsi
que dans la région où se développent les valves cardiaques. Son expression dans le cerveau est
neuronale et plus tardive puisqu’elle est détectée après la naissance et surtout chez la souris adulte et
chez l’homme adulte.
Ces deux canaux sont donc d’excellents candidats pour les anomalies de développement et les
dysfonctionnements neuronaux présents dans la trisomie 21. La prochaine étape est donc d’identifier
les effets de la surexpression de ces gènes chez la souris en étudiant ou en construisant des lignées
transgèniques pour les gènes entiers, à l’aide des BACs isolés les contenant.
Références
- Gosset P, Ghezala GA, Korn B, Yaspo ML, Poutska A, Lehrach H, Sinet PM, Creau N. A new inward rectifier
potassium channel gene (KCNJ15) localized on chromosome 21 in the Down syndrome chromosome region 1
(DCR1). Genomics 1997 Sep 1;44(2):237-41
- Dahmane N, Ghezala GA, Gosset P, Chamoun Z, Dufresne-Zacharia MC, Lopes C, Rabatel N, GassanovaMaugenre S, Chettouh Z, Abramowski V, Fayet E, Yaspo ML, Korn B, Blouin JL, Lehrach H, Poutska A,
Antonarakis SE, Sinet PM, Creau N, Delabar JM. Transcriptional map of the 2.5-Mb CBR-ERG region of
chromosome 21 involved in Down syndrome. Genomics 1998 Feb 15;48(1):12-23
-Thiery E, Gosset P, Damotte D, Delezoide AL, de Saint-Sauveur N, Vayssettes C, Creau N. Developmentally
regulated expression of the murine ortholog of the potassium channel KIR4.2 (KCNJ15). Mech Dev 2000
Jul;95(1-2):313-6
-Thiery E, Thomas S, Vacher S, Delezoide A-L, Delabar JM, Creau N. Chromosome 21 KIR channels in brain
development (soumis)
Epigènétique des gènes BAGEs (B MELANOMAS ANTIGENS)
Christoph GRUNAU, Myriam RUAULT, Marie-Elisabeth BRUN, Gérard ROIZES,
Albertina DE SARIO
Institut de Génétique Humaine CNRS UPR 1142
141, rue de la Cardonille
34396 Montpellier
Tél : 04-99-61-99-77 Fax : 04-99-61-99-01 E-mail : [email protected]
La région juxtacentromérique du chromosome 21 humain est constituée de
deux domaines chromosomiques différents : (i) le domaine proximal (1 Mb) est un patchwork
de duplications interchromosomiques créées au cours de l’évolution des primates (il y a 5-30
millions d’années) et contient deux gènes qui sont exprimés uniquement dans les tumeurs et
dans le testicule ; (ii) le domaine distal ne contient pas de duplications interchromosomiques
et contient plusieurs gènes qui ont un profil d’expression plus large (Brun et al., Gene, in
press). Dans le domaine proximal de la région juxtacentromérique du chromosome 21, nous
avons identifié et caractérisé la famille de gènes BAGE (B melanoma antigens). Les gènes
BAGE sont des gènes chimériques créés il y a moins de 16 millions d’années par des
duplications inter- et intrachromosomiques (Ruault et al., Genomics, in press). Ils sont
exprimés uniquement dans les tumeurs et le testicule et sont silencieux dans les tissus
normaux (Ruault et al., 2002). BAGE1, un membre de cette famille, code un antigène qui est
exprimé à la surface des cellules tumorales et est reconnu par des lymphocytes T cytolytiques
(Boël et al.,1995). Actuellement, nous étudions les mécanismes de régulation de l’expression
des gènes BAGE. Grâce à la méthode décrite par Frommer et al. (1992) (traitement de l’ADN
au bisulphite de sodium, clonage et séquençage), nous avons montré que la déméthylation
d’un îlot CpG localisé en 5’ de ces gènes est une condition nécessaire mais pas suffisante pour
permettre l’expression des gènes BAGE.
Effet de l’hyperhomocystéinémie sur l’activité de la paraoxonase 1
N. Janel, K. Robert, C. Chabert, N. Pilard, C. Gouédard, K. Demuth, I. Quéré, J. London, J. Delabar,
J.F. Chassé
Université Paris 7 – Denis Diderot, EA 3508
Case 7104 - 2, place Jussieu , 75005 Paris
Tél : 01-44-27-77-45 Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
L’hyperhomocystéinémie est caractérisée sur le plan biochimique par une augmentation
plasmatique d’homocystéine, principalement due à la diminution de l’activité de la cystathionine beta
synthase (CBS, dont le gène est localisé sur le chromosome 21) qui catalyse la conversion de
l'homocystéine en cystathionine. L’hyperhomocystéinémie est notamment associée à un risque
augmenté d’athérosclérose, sans connaître réellement les mécanismes moléculaires mis en jeu.
L’implication du stress oxydant a notamment été démontrée dans l’athérosclérose. C’est pourquoi,
nous avons utilisé la technique du criblage de membranes à moyenne densité contenant des gènes
codant des protéines impliquées dans la régulation d'états de stress cellulaire pour analyser l’expression
différentielle de gènes en association avec un taux hépatique d’homocystéine élevé chez des souris
déficientes en CBS, un modèle murin d’hyperhomocystéinémie. L’expression de plusieurs gènes
impliqués dans les processus oxydatifs a été trouvé altérée dans le foie des souris déficientes en CBS.
Parmi ceux-ci, nous avons trouvé une diminution de l’expression du gène codant la paraoxonase 1.
Cette enzyme plasmatique, associée aux lipoprotéines de haute densité et synthétisée dans le foie,
protège les lipoprotéines de basse densité des modifications oxydatives. Afin de vérifier si la
diminution d’expression de la paraoxonase 1 est un marqueur de l’athérosclérose dans
l’hyperhomocystéinémie, l’activité de la paraoxonase 1 a été dosée dans le foie des souris déficientes
en CBS. Nous avons montré une diminution de l’activité d’un facteur trois dans le foie des souris
déficientes en CBS par rapport à l’activité obtenue dans le foie de souris témoins. Afin de démontrer
que cette diminution est due à l’augmentation d’homocystéine, nous avons dosé l’activité dans le foie
de souris gavées en méthionine (précurseur de l’homocystéine) dans l’eau de boisson, et avons
également obtenu une diminution de l’activité. De plus, nous avons retrouvé cette diminution d’activité
dans le plasma de patients hyperhomocystéinémiques, en corrélation avec l’augmentation
d’homocystéine plasmatique. L’ensemble de ces résultats montre que la paraoxonase 1 pourrait être un
marqueur d’athérosclérose dans l’hyperhomocystéinémie. Inversement, une augmentation de l’activité
de la paraoxonase 1 pourrait expliquer la faible incidence des pathologies vasculaires chez les patients
porteurs de trisomie 21.
Apoptose et surexpression de la SOD-1 : des rôles délétère ou protecteur
suivant le type cellulaire
Borg J1., Nabarra B2. , Paly E3., Thérond P4., Paris D5., London J3
1 Faculté de Médecine, Laboratoire de Neurochimie EA3062, Saint Etienne
2 Inserm U.345, Hôpital Necker, Paris
3 EA 3508, Université Paris 7-Denis-Diderot, Paris
4 Hôpital de Versailles, Département of Biochimie, Pharmacologie et Toxicologie, Le Chesnay,
France.
5 Department of Psychiatry, The Roskamp Institute, University of South Florida,. Tampa,
Tél : 04-77-12-75-53 Fax : 04-77-12-05-46 E-mail : [email protected]
Nous disposons, comme modèle de la trisomie 21 de souris transgéniques pour la SOD-1
humaine (TghSOD-1). Ces souris hétérozygotes ou homozygotes surexpriment la SOD-1 d’un facteur
4 à 8 suivant les organes des souris et leur âge.
Ces souris présentent une involution thymique prématurée (Nabarra et coll., 1996). En effet
l’involution thymique qui est un phénomène naturel débute vers 8 mois chez les souris témoins et dès
6 ou 4 mois chez les souris soit hétérozygotes soit homozygotes respectivement. La surexpression de
la SOD-1 a donc un effet délétère sur la physiologie thymique.
Par contre, nous avons montré que l’effet délétère du paraquat est diminué dans les souris
transgéniques et que des neurones fœtaux hippocampiques de souris transgéniques pour la SOD-1 sont
protégés contre l’apoptose induite par déplétion dans le milieu de culture du facteur de croissance
bFGF et que le NO° semble nécessaire pour la survie de ce type de neurones. De même, nous avons
montré in vitro que les neurones corticaux provenant d’embryons de souris transgéniques présentent
une meilleure survie après exposition à des composés délétères tels que H2O2, le NMDA ou le
céramide (Borg et London, 2002). Cet effet pourrait s’expliquer par une action protectrice vis à vis de
l’apoptose induite par le NMDA ou le céramide et mesurée par l’activité caspase 3 et le
fractionnement de la chromatine. Cette protection contre l’apoptose est corrélée avec une
augmentation d’activité SOD-1 même dans les souris transgéniques. Nous avons aussi montré
qu’après exposition au H2O2, les marquages à la β tubuline et au MAP2 sont modifiés, suggérant qu’il
y a réorganisation du cytosquelette.
Le fait qu’une augmentation de l’activité SOD-1 augmente la survie neuronale dans des
conditions de stress et induit une involution thymique prématurée pourraient avoir des implications
physiologiques à la fois au cours du développement et du vieillissement des patients atteints de
trisomie 21.
Remerciements : Ce travail a été réalisé grâce aux soutiens de la Fondation Jérôme Lejeune
aux Dr. J. Borg et J. London.
Références:
Nabarra B. et coll. Transgenic mice overexpressing the human CuZn-SOD gene : ultrastructural studies of a
premature thymic involution model of Down’s syndrome (trisomy 21) Lab. Invest. 74/3(1996) 617-626
J.Borg et J. London. Cu/Zn superoxide dismutase overexpression promotes survival of cortical neurons exposed
to neurotoxins in vitro. J. Neurosci.Res. 70/2 (2002)180-189
Vers de nouveaux modèles murins de la trisomie 21
V. Besson, F. Brulé-Morabito, F. Levavasseur, M. Labbé, L. Magnol, V. Larrigaldie,
A. Duchon and Y. Hérault
Laboratoire de Génétique Expérimentale et Moléculaire
Institut de Transgénose
3B rue de la Férollerie,
45071 Orléans cedex 2
Tél : 02-38-25-79-30 Fax : 02-38-25-79-30 E-mail : [email protected]
La trisomie 21 (T21) est bien caractérisée par ces anomalies phénotypiques résultant
de la présence d’une dose supplémentaire de gènes. Ce syndrome se comporte comme un
syndrome de gènes contigus induisant des défaillances mentales et de nombreux désordres
morphologiques affectant notamment le squelette, le cœur, le tractus gastro-intestinal et le
système nerveux. Au-delà de la description des conséquences de cette perturbation de
l’équilibre génétique, la physiopathologie de ce syndrome doit être encore mieux analysée.
L’apport de l’étude des modèles animaux a clairement contribué à l’augmentation des
connaissances sur cette pathologie.
Les régions homologues au chromosome 21 sont situées sur trois chromosomes
distincts chez la souris. Le modèle murin le plus couramment utilisé est une souris trisomique
(Ts65Dn) qui dévoilent certains aspects du syndrome mais ne présente pas le phénotype
pléiotropique décrit chez l’homme. Aussi nous proposons de développer de nouveaux
modèles de souris trisomiques pour certaines régions du chromosome 21 qui n’ont pas été
étudiées jusqu’à présent afin (1) d’étudier l’origine génétique des défauts phénotypiques (2)
d’établir une relation entre génotype et phénotype et (3) de tester les interactions génétiques
entre les différentes régions.
Nous avons entrepris la création de ces nouveaux modèles en combinant deux
stratégies d’ingénierie chromosomiques, le système Hprt (Zheng et al., N.A.R. 1999, 27,
2354-2360) et la stratégie TAMERE (Herault et al., Nat Genet 1998 381-384). Les modèles
ainsi générés porteront des duplications des régions homologues au chromosome 21,
entraînant une trisomie chez la souris similaire à celles observés chez certains patients
porteurs de duplication partielle. Nous espérons que ces nouvelles configurations seront utiles
pour étudier l’origine des phénotypes associés à la trisomy 21 au cours du développement
embryonnaire.
Analyse fonctionnelle des gènes du chromosome 21 : 1. Capacités cognitives
de souris transpolygéniques pour la région chromosomique du syndrome de
Down (DCR-1).
Caroline Chabert 1et 6, Améziane Cherfouh 1, Vincent Duquenne 1, Desmond J. Smith 2, Edward
Rubin 3, and Pierre L. Roubertoux 4, 5.
1 Institut de Transgénose, CNRS, 2b rue de la Férollerie, Orléans cedex2, France
2 Dpt of Molecular & Medical Pharmacology, UCLA School of Medicine, CA, USA 90095-1735
3 Genome Sciences Dpt, Lawrence Berkeley National Laboratory, Berkeley, CA 94720, USA
4, 5 Université d'Orléans and Institut de Neurosciences Physiologiques et Cognitives.
6 EA 3508 Université Paris 7 Denis Diderot, 75005 Paris
E-mail : [email protected]
L’analyse génotypique et phénotypique de patients présentant une trisomie 21
partielle ont montré qu’une région du chromosome 21, en q22.2, est associée à la majorité des
traits phénotypiques, dont le retard mental. Cette région minimale fut désignée DCR-1. Se
basant sur les synténies et homologies existantes entre le chromosome 21 et le chromosome
16 murin, Smith et al. (1995, 1997) ont développé des souris transpolygéniques avec des
fragments du chromosome 21 recouvrant la DCR-1, insérés dans des YACs.
Nous avons étudié les performances cognitives de ces souris transpolygéniques
grâce au tests du labyrinthe aquatique de Morris et du conditionnement à la peur. Les souris
transpolygéniques pour le YAC 152F7 ont des niveaux de performances inférieurs à ceux des
témoins et des trois autres lignées transpolygéniques dans la plupart des épreuves de ce test.
Néanmoins, les animaux transpolygéniques pour le YAC 230E8 passent moins de temps dans
le quadrant qui contient la plate-forme ; la mémoire à long terme est altérée pour toutes les
souris transpolygéniques. Dans le test du conditionnement à la peur, toutes les souris
transgéniques ont des performances inférieures à celles des témoins lorsque le contexte est
modifié. Les lignées 230E8, 141G6 et 285E6 ne réagissent pas correctement aux stimuli. De
plus, l’utilisation du test de la barre crénelée a montré que les souris transgéniques pour le
YAC 152F7 commettent un très grand nombre d’erreurs de coordination motrice.
Ces résultats montrent que le YAC 152F7 joue un rôle crucial dans les déficits
cognitifs de ces souris, supportant l’hypothèse de l’implication du gène Dyrk1-A. Cependant,
les résultats obtenus suggèrent que d’autres régions de la DCR-1 peuvent être impliquées dans
des fonctions cognitives spécifiques.
Analyse du transcriptome de cerveau embryonnaire sur un modèle murin
du syndrome de Down : Identification d’un changement précoce du
phénotype moléculaire synaptique.
Bedel Biyiha Ngimbous,1 Fabien Guimiot,1 Francine Bourgeois,1 Pascal Kahlem,2 C. Mugnier,3
Marie-Laure Yaspo, 2 Pierre L. Roubertoux, 4 Paul-Antoine Salin, 5 Desmond J. Smith, 6 Edward M.
Rubin, 7 Michel Simonneau, 1 and Jean-Marie Moalic 1*
1 Neurogénétique/INSERM E9935, Hôpital Robert Debré, 48 boulevard Sérurier, 75019 Paris, France.
2 Max-Plank-Institut für Molekulare Genetik, Berlin-Dahlem, Germany.
3 Université Paris V, 45 rue des Saints Pères, 75006, Paris, France.
4 Neurosciences Physiologiques et Cognitives, CNRS, 31 Chemin Joseph-Aiguier, 13402 Marseille
cedex 20, France.
5 Centre des Sciences du Goût-Centre National de la Recherche Scientifique, 21000 Dijon, France.
6 Department of Molecular and Medical Pharmacology, UCLA School of Medicine, Los Angeles, CA
90095-1735, USA.
7 Genome Sciences Department, Lawrence Berkeley National Laboratory, 1 Cyclotron Road, MS 84171, Berkeley, CA 94720, USA.
Des souris transgéniques (TG) pour un segment du chromosome 21 humain (hCh.21)
comportant quatre gènes (DSCR5, TTC3, DSCR3 et DYRK1A) ont été antérieurement
produites et caractérisées sur le plan de leurs déficits comportementaux (Smith et al. 1997).
Nous avons utilisé ce modèle expérimental pour étudier à un stade précoce du développement
(E10,5) l’expression génétique différentielle dans des régions microdisséquées de cerveaux
d’embryons TG comparés à des contrôles sauvages. Nous avons montré que les quatre
transgènes humains et leurs orthologues murins présentaient des profils distincts de
transcription dans le télencéphale, le mésencéphale/diencéphale et le cœur d’embryons TG.
La comparaison entre embryons TG et contrôles des profils transcriptionnels de ces différents
tissus a mis en évidence deux mRNAs codant pour les protéines Rim2 et Rim1 dont le niveau
relatif d’expression est spécifiquement diminué dans le mésencéphale/diencéphale au stade
E10.5. Ces transcrits codent pour des protéines présynaptiques impliquées dans la régulation
de la plasticité synaptique. Nos résultats suggèrent que la trisomie partielle d’un segment
génomique de hCh.21 incluant un gène candidat (DYRK1A) pour le retard mental produise
un phénotype présynaptique représentant un lien moléculaire potentiel entre triplication
génique partielle et déficits dans les capacités d’apprentissage et de mémorisation.
Caractérisation des réseaux de régulation génique au cours du
développement du cervelet chez la souris trisomique 16 partielle (Ts1Cje)
Minh Tran Dang¥, Luce Dauphinot¥, Pierre Marie Sinet¤, Kiyoko Toyama¤, Geoffroy Golfier¥, David
Gentien¢, C.J. Epstein , Jean Rossier¥, Marie Claude Potier¥
¥ CNRS UMR 7637, Paris, France; ¤ INSERM U 549, Paris, France; ¢ , Paris, France;
Pediatrics, UCSF, San Francisco, USA.
ESPCI Laboratoire de Neurobiologie et Diversité Cellulaire, 10 rue Vauquelin 75005 Paris
Tél : 01-40-79-51-71 Fax : 01-40-79-47-57 E-mail : [email protected]
Dpt
Le but de cette étude est de caractériser les mécanismes impliqués dans les anomalies du
développement du cervelet dans la trisomie 21. La diminution de 30% du nombre de cellules
granulaire dans la couche granulaire interne pourrait résulter d'un déficit de prolifération, de migration
ou de problèmes de différenciation des cellules granulaires au cours du développement.
La caractérisation des gènes intervenant dans ces mécanismes et de leurs réseaux est essentielle à la
compréhension des phénotypes liés à la trisomie 21 au niveau du cervelet.
Des expériences de puce à ADN ont été effectuées afin de répondre à ces questions.
Le modèle utilisé est la souris trisomique 16 partielle ou Ts1Cje, qui possède trois copies de
l'équivalent du chromosome 21 humain (Sod1 à Mx1). Afin de suivre le développement du cervelet
les ARN étudiés sont des pools d'ARN de cervelets de souris Ts1Cje et normales issues de la même
portée, aux temps P0, P15 et P30. En revanche à 8 mois ½ les pools d'ARN sont issus de cervelets de
souris de portées différentes. Les expériences sont effectuées sur des puces Affymetrix pangénomique
souris à 36 000 gènes.
Deux types d'analyses sont réalisés sur les données obtenues:
- Statistique
Utilisation du logiciel Varan développé au laboratoire par Geoffroy Golfier
(www.bionet.espci.fr), ce logiciel permet d'analyser différentiellement des expériences de puces à
ADN, donc d'obtenir la liste des gènes ayant une sur- ou sous-expression statistiquement significative.
Ces analyses confrontent pour chaque temps les souris Ts1Cje aux normales.
- Clustering (Classification)
Le regroupement des gènes par rapport à leur profil d'expression permet d'obtenir une vision
temporelle de l'expression génique et de voir apparaitre une ébauche des réseaux de gènes impliqués.
De nombreuses perspectives sont envisageables, telles que:
- Comparaison des résultats obtenus avec les puces Affymetrix à d'autres types de puce
- Utilisation d'autres logiciels d'analyse statistique afin de confronter leurs résultats et d'augmenter la
robustesse de notre démarche
- Identifier les clusters de gènes impliqués dans l'apparition du phénotype, par comparaison aux
clusters obtenus dans la littérature
Etude thérapeutique de l’acide folinique dans la trisomie 21. Essai entrain.
Bléhaut H et le GREMGI*
Centre Médical Jérôme Lejeune
50, avenue Foch
75116 Paris
Tél : 01-53-64-73-60
Email : [email protected]
L’objectif principal de l’essai est d’évaluer, en double aveugle versus placebo,
l’activité de l’acide folinique administré à 1 mg/kg/j sur le développement psychomoteur du
jeune enfant trisomique 21. Cette étude de phase 2-3 , d’une durée de 1 an, avec bénéfice
individuel direct, est réalisée en double aveugle versus placebo sur deux groupes parallèles de
patients.
117 enfants dans un état stable, âgés de 3 mois à 30 mois, capables de passer
un test de Brunet-Lézine révisé, ont été inclus. Les patients ayant des antécédents de
syndrome myéloprolifératif, des spasmes infantiles en cours, un démarrage de traitement
thyroïdien dans les trois derniers mois, un traitement par antifolique n’ont pas été inclus. Ceux
nécessitant le démarrage d’un traitement thyroïdien en cours d’essai ont été sortis de l’étude
prématurément. Les inclusions ont débuté en janvier 2001 et se sont terminées en décembre
2002. Une description de la population des 117 enfants inclus est donnée et le déroulement de
l’essai est décrit. La période de traitement se terminera en décembre 2003 et les résultats
seront soumis à publications début 2004.
* GREMGI (Groupe de Recherche sur les Maladies Génétiques de l’Intelligence) : BAUD
AM, BELTRAN E, BLÉHAUT H, CONTÉ M, FRILEUX S, LA RAILLÈRE A, LAPENNE
T, MIRCHER C, PORET G, DE PORTZAMPARC V, RAVEL A, RETHORÉ MO, SIRÉ V,
SMADJA F
COMMUNICATIONS
Par
AFFICHES
Effets de la surexpression de la superoxyde dismutase sur l’activité du
protéasome et l’accumulation des protéines oxydées
dans le cerveau de souris.
Emmanuel BOURDON
Jacqueline LONDON1
1,2
, Marie LE PECHEUR 1, Evelyne PALY 1, Bertrand FRIGUET 2,
EA 3508, Paris7, Université Denis Diderot, 2 place Jussieu - 75005 Paris
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : [email protected]
EA3106 Paris 7 Université Denis Diderot, 2, place Jussieu - 75005 Paris
Tél : 01-44-27-82-35
E-mail : [email protected]
La trisomie 21 est caractérisée par la présence d’un chromosome 21 surnuméraire et se
caractérise par un retard mental constant mais variable mais aussi par un vieillissement accéléré
(caractéristiques neuropathologiques de type Alzheimer, involution thymique précoce, sécheresse de la
peau, blanchissement des cheveux). Des données récentes sont disponibles sur l’influence des
phénomènes d’oxydation sur le vieillissement normal et pathologique ainsi que sur les aspects
physiologiques des maladies neurodégénératives. Il est de plus en plus admis que le vieillissement est
du à un stress oxydant accru et à l’action négative de ce dernier sur l’expression génique ainsi que sur
certaines propriétés (oxydation, glycosylation, carbonylation) des protéines impliquées dans ces
processus.
La présence du chromosome surnuméraire 21 est à l‘origine de la surexpression des
gènes codant pour la superoxyde dismutase (Cu/Zn SOD) et pour la protéine précurseur du peptide
béta-amyloide (APP) et de nombreuses inconnues demeurent sur leur implication dans cette pathologie
et plus spécifiquement dans les aspects de vieillissement.
Nous avons mesuré l’activité SOD dans des cerveaux de souris âgées de 1 à 24 mois et montré que
cette activité augmente jusqu’à trois mois puis reste constamment élevée. Les expériences de Western
blot confirment que la quantité de SOD reste élevée et constante entre 3 et 27 mois.
Le protéasome constitue la machinerie protéolytique principale chargée de l’élimination des protéines
oxydées. L’activité protéolytique du protéasome est constituée de trois activités enzymatiques :
chymotrypsine-like, trypsine-like et post acide glutamique peptide hydrolase.
Lors de notre travail, nous avons évalué l’activité du protéasome chez des souris transgéniques de fond
génétique FVB/N, surexprimant la SOD humaine (hSOD). Nous avons également étudié l’effet de
cette surexpression sur l’accumulation de protéines oxydées dans le cerveau des souris.
La mesure des différentes activités protéolytiques du protéasome montre une réduction significative de
l’activité trypsine-like dans le cerveau des souris transgéniques hSOD et ce quelque soit l’âge des
souris. Les activités de type post acide glutamique et chymotrypsine-like ne semblent pas être
affectées par la surexpression de la hSOD.
Le produit de peroxydation lipidique, 4-hydroxy-2-nonénal (HNE) étant très réactif pour se complexer
aux protéines et altérer leurs fonctions, nous testons actuellement sa présence dans le lysat de cerveaux
de nos souris.
Par ailleurs, des expériences menées récemment sur des cerveaux de rat montrent que l’incubation in
vitro de HNE avec le protéasome purifié présente une inhibition spécifique de son activité de type
trypsine, celle qui est également modifiée spécifiquement dans les souris transgéniques hSOD.
Nous poursuivons donc l'étude in vivo des modifications par HNE du protéasome dans les cerveaux
des souris surexprimant la SOD-1.
Nos résultats, quoique encore préliminaires, semblent montrer que l'altération de
l'activité trypsine-like du protéasome serait liée à une augmentation de l’activité SOD-1.
Une telle démarche concernant les activités du protéasome et de ses modifications par HNE pourrait
être poursuivie sur des tissus ou des cellules provenant de patients atteints de trisomie 21.
Ce travail bénéficie du soutien financier de la Jérôme Lejeune
E. BOURDON ATER, Université Paris 7 Denis Diderot
M. LE PECHEUR Boursière, Fondation Jérôme Lejeune
Modélisation de la trisomie 21 : surexpression du gène dyrk1a chez la souris
C. Chabert, J.M. Delabar
EA 3508, Université Denis Diderot
2 Place Jussieu, 75005 Paris
Tél : 01-44-27-56-98
Fax 0144278338
E-mail : [email protected]
Le phénotype observé dans la trisomie 21 est due à une perturbation faible de
l’organisme entier : l’augmentation de 50% du produit de certains gènes (HSA21 représente
1.5% du génome). Nous tentons de comprendre les différentes étapes conduisant aux
principales altérations du phénotype en modélisant la surexpression de gènes candidats
identifiés par deux stratégies : l’identification de régions chromosomiques candidates à partir
de l’étude d’individus porteurs de trisomie 21 partielle et les études fonctionnelles de gènes
du chromosome 21.
Nous présenterons un exemple de mise en œuvre de la première stratégie avec la construction
et l’étude de modèles de surexpression d’une sérine thréonine kinase, DYRK1A, localisée
dans la DCR-1, une région critique pour plusieurs signes phénotypiques de la trisomie 21 dont
le retard mental.
L’analyse comportementale de souris transgénique (152F7) pour un YAC contenant cinq
gènes humains dont le gène DYRK1A a montré des anomalies motrices, des déficits
d’apprentissage et un comportement anxieux. (1)
L’analyse morphologique révéle des anomalies macroscopiques (taille du
cerveau augmentée) et cellulaires (augmentation du volume neuronal). (2 et coll B. Gillet).
Trois stratégies sont actuellement développées pour comprendre la genèse de ces phénotypes:
L’étude de l’apoptose sur des cultures primaires de neurones embryonnaires (E14) de souris
transgéniques 152F7 (coll. B Brugg)
L’étude du transcriptome des souris transgéniques 152F7/sauvages à l’aide de puces dédiées
soit chromosome 21 soit gènes de la neurotransmission (coll. MC Potier)
La construction de modèles murins de surexpression du gène dyrk1a seul par transfection de
cellules ES après retrofitting de clones BACs contenant le gène entier (coll. Y Hérault).
1 : Chabert C., Cherfouh A., Duquenne V., Smith D.J., Rubin E., Roubertoux P. Functionnal analysis
of genes implicated in Down syndrome: I. Cognitive abilities in transpolygenic mice for Down
syndrome chromosomal region 1 (DCR-1). Soumis.
2 : Branchi I, Bichler Z, Gonzalez MC, Rubin EM, Delabar JM, Migliore-Samour D: Yac
transpolygenic mouse model: implications of dyrk1a gene in neurobehavioral alterations. (soumis)
Plateforme bioinformatique pour l'annotation du chromosome 21.
Geoffroy Golfier, Minh Tran Dang, Julien Laffaire, Jean Rossier, Marie-Claude Potier
UMR CNRS 7637 / ESPCI
10 rue Vauquelin 75005 - Paris
Tél : 01-40-79-51-71
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
Les informations et les logiciels nécessaires à l'annotation et l'étude des
séquences génomiques sont souvent dispersés ou difficiles à identifier. Le but de notre travail
est de permettre la confrontation des informations génomiques relatives au chromosome 21
humain aux données d'études fonctionnelles obtenues par exemple grâce à la technologie des
puces à ADN en mettant en place un système d'information disponible sur internet. Cette
plateforme mettra à disposition des outils d'analyse bioinformatique qui pourront être
appliqués directement sur les informations disponible au sein d'une base de données
relationnelle associant :
•les séquences et leur annotation disponibles pour le chromosome 21 humain ainsi que pour
les régions synténiques d’autres organismes (souris, chimpanzé, etc.),
•les informations résultant de la comparaison de ces séquences,
•les informations relatives aux voies métaboliques associées aux gènes identifiés,
•des données bibliographiques,
•des données d'expression génique.
Nous présentons ici les résultats préliminaires liés à la comparaison des
séquences génomiques, l'intégration des informations liées aux voies métaboliques ainsi que
les premiers outils d'analyse qui seront disponibles comme la sélection de séquences
oligonucléotidiques spécifiques à l'échelle du génome ou communes aux organismes
disponibles au sein de la base de donnée.
A terme les informations et les outils d'analyse et d'annotation seront
disponibles sur l'adresse internet http://www.bionet.espci.fr.
Caractérisation d’une puce à ADN chromosome 21 humain (HSA21)
Emilie Graison (1,2), Luce Dauphinot (1), Iman Haddad (1,2), Geoffroy Golfier (1), Evelyne Paly (2),
Jean Rossier (1), Jean Maurice Delabar (2), Marie-Claude Potier(1)
(1) Laboratoire Neurobiologie et Diversité Cellulaire ESPCI - CNRS UMR 7637, 10 rue Vauquelin
75005 Paris
(2) Bases moléculaires des altérations neurologiques dans la trisomie 21 et dans d’autres pathologies
associées au chromosome 21 – EA3508 Université Paris 7-Denis Diderot, 2 place Jussieu 75005 Paris
Tél : 01-49-79-51-71
Fax : 01-49-79-47-57
E-mail :
[email protected]
Afin d’analyser les variations d’expression des gènes du chromosome 21 dans le cadre
du Syndrome de Down, nous avons réalisé une puce à ADN comprenant 609 oligonucléotides
dont 597 correspondent à 303 gènes, prédictions et orf du chromosome 21 et 20 gènes
contrôles situés sur les chromosomes 1 à 10 et X. Chaque gène est représenté par deux
oligonucléotides aminomodifiés sélectionnés à partir des données fournies par le logiciel SOL
(1), qui permet d’établir, à partir de la séquence du gène, des séquences oligonucléotidiques
de 50 bases de spécificité stricte, dont la température de fusion et le repliement secondaire
sont optimaux. Ces oligonucléotides sont déposés sur des lames de verre activées (2). Les
ARN hybridés sur la puce sont préalablement marqués par incorporation de Cy3 et/ou Cy5 au
cours d’une reverse transcription.
Dans le but de déterminer quelle condition d’hybridation permet d’obtenir des
intensités de fluorescence optimales tout en garantissant une spécificité suffisante et un bruit
de fond minimal, plusieurs hybridations d’ARN universels, provenant d’un pool de diverses
lignées cellulaires, ont été menées sous trois conditions d’hybridation différentes :
- tampon SSC 3.4X – SDS 0.28% à 60°C,
- tampon formamide 50% à 42°C,
- tampon formamide 50% à 50°C.
Les résultats de ces experiences témoins ont été analysés grâce au logiciel Varan (3),
permettant l’analyse de la variabilité des intensités. Par ailleurs, les intensités obtenues pour
chaque condition ont été corrélées aux différentes caractéristiques des oligonucléotides :
température de fusion, position de départ à partir des extrémités 3’ et 5 ‘ de la séquence
complète à laquelle correspond chaque oligonucléotide. De plus, un test de Mann-Withney et
un test du Khi carré ont été réalisés sur les données normalisées par Varan.
Ces analyses ont permis de conclure que l’hybridation dans un tampon formamide
50% à 42°C correspond à la condition d’hybridation optimale. Les experiences menées sur la
puce HSA21 sont donc désormais effectuées sous cette condition.
La puce HSA21 étant à présent caractérisée, les profils d’expression des gènes du
chromosome 21 dans des lymphoblastes humains normaux et trisomiques vont pouvoir être
étudiés. Des résultats préliminaires seront présentés. Ces méthodes seront ensuite appliquées à
la comparaison des niveaux d’expression présents dans d’autres types cellulaires tels que
lymphocytes et fibroblastes.
1 : SOL
2 : Genescore www.genescore.net
3 : Varan www.bionet.espci.fr
Profil des marqueurs sériques de la trisomie 21, d’origine placentaire,
au cours de la grossesse
J Guibourdenche1,2, JL Frendo2, D Luton1, G Flament1, G Pidoux2, D Evain-Brion2, F Muller1.
1
Service de Biochimie Hormonologie, hôpital Robert Debré, 48 bd Sérurier, 75019 Paris
INSERM U427, Faculté des Sciences Pharmaceutiques et Biologiques
4 av de l’observatoire, 75006 Paris
Tél : 01-40-03-47-28
Fax : 01-40-03-47-90
E-mail : [email protected]
2
Le dépistage de la trisomie 21 fœtale à l’aide des marqueurs sériques est proposé en
France à toute femme enceinte au second trimestre entre 14 semaine d’aménorrhées (SA) et
17 SA+6jours. Il repose sur le dosage d’au moins deux molécules qui peuvent être soit
d’origine fœtale comme l’alphafoetoprotéine, soit d’origine foetoplacentaire comme l’oestriol
non conjugué, soit d’origine placentaire comme l’hormone chorionique gonadotrope (hCG)
ou sa sous-unité
libre. Le syncytiotrophoblaste, tissu endocrine placentaire situé à
l’interface des circulations maternelles et fœtale, joue donc un rôle clef. Nous avons
récemment montré qu’in vitro, la formation de ce tissu était retardée ou altérée et que la
production des protéines hormonales placentaires était diminuée.
Dans cette étude rétrospective, nous avons donc voulu étudier tout au long de la
grossesse, le profil de sécrétion de cinq hormones syncytiales : 3 glycoprotéines (l’hCG et de
sa sous-unité
libre, l’hormone de croissance placentaire [pGH] et deux protéines
(l’hormone lactogène placentaire [hPL] et la leptine) dans le serum maternel (250 trisomies
21 libres, 1160 contrôles). Chez les mères dont le fœtus est atteint de trisomie 21, les
concentrations sériques d’hPL et de leptine sont significativement diminuées (p<0,05) par
rapport aux contrôles tout au long de la grossesse. Par contre les concentrations sériques
d’hCG, de sa sous-unité libre et de la pGH sont significativement augmentées (p<0,05) que
ce soit au premier, au second ou au troisième trimestre.
La diminution de l’hPL et de la leptine en cas de trisomie 21 fœtale est donc un reflet
de la diminution de la masse syncytiale fonctionnelle ce qui conforte l’anomalie de formation
du syncytium que nous avions observée in vitro. En revanche, les concentrations élevées
d’hCG et de pGH vont à l’encontre de ce dysfonctionnement. Cette augmentation résulte
vraisemblablement une anomalie post traductionelle, telle que la glycosylation puisqu’elle
affecte sélectivement les glycoprotéines.
Biométrie faciale et cérébrale des fœtus trisomiques 21
A.-M. GUIHARD-COSTA*, K. DELBECQUE**, F. MENEZ **, A.-L. DELEZOIDE**
* UPR 2147 44 rue de l’Amiral Mouchez, 75014 Paris
** Service de Biologie du Développement, Hôpital Robert Debré
48 Bd Sérurier, 75935 Paris cedex 19
AMGH Tél : 01-43-13-56-26 Fax : 01-43-13-56-30
E-mail : [email protected]
ALD
Tél : 01-40-03-23-38 Fax 01 40 03 53 19
E-mail : [email protected]
Les données biométriques concernant les patients atteints de trisomie 21 sont peu
nombreuses, rarement anatomiques, parfois même contradictoires, particulièrement pour les
données fœtales.
Or, au moment d’analyser le rôle respectif des gènes de la région critique dans la mise en
place des anomalies morphologiques et neurologiques de la maladie, il apparaît nécessaire de
préciser le phénotype induit par la trisomie, et ce dés la vie intra-utérine.
A partir de notre recrutement foetopathologique, nous avons pu réunir une cohorte de
358 fœtus trisomiques 21, d’âge gestationnel compris entre 11 et 38 SA (2/3 environ sont au
deuxième trimestre de la grossesse), et les comparer à un groupe contrôle de 720 fœtus
singletons, non trisomiques, dépourvus de toute anomalie morphologique. Nous avons
analysé rétrospectivement les paramètres biométriques crânio-faciaux et encéphaliques
relevés systématiquement au cours de tout examen foetopathologique ; les différences de
moyennes entre les deux groupes ont été testées par classe d’âge.
Les poids des fœtus sont comparables, à chaque classe d’âge dans les deux groupes.
Nous avons confirmé l’existence des particularités crânio-faciales du patient trisomique
dès le deuxième trimestre de la grossesse : alors que la distance inter-canthique interne (DICI)
est la même que chez les fœtus normaux, la distance inter-canthique externe (DICE) est
significativement diminuée (orientation des fentes palpébrales). Chez les fœtus trisomiques le
rapport BIP/PC (diamètre bipariétal/périmètre crânien) est significativement augmenté, à tous
les âges testés, de même que le rapport BIP/DICE, objectivant la précocité d’apparition de la
brachycéphalie. Celle-ci est confirmée par les mesures des diamères occipito-frontaux du
cerveau, qui sont significativement inférieurs chez les trisomiques, entre 19 et 26 SA.
Comme cela est connu après la naissance, il existe une nette diminution du poids de
l’encéphale des fœtus trisomiques, mise en évidence dès 14 SA. Nous avons pu analyser le
développement cérebelleux à partir du poids de l’ensemble cervelet-protubérance-bulbe
(CPB), dont le cervelet constitue la plus grande part. Nous avons ainsi clairement montré que
l’hypoplasie encéphalique intéresse également les structures infra-tentorielles, dont le poids
ramené au poids du corps est significativement diminué dès 19 SA. Il apparaît même, qu’au
moins au deuxième trimestre, le défaut de développement encéphalique est plus accentué en
sus-tentoriel qu’en infra-tentoriel (augmentation du rapport poids CPB/poids encéphale). Il
semble également, au vu de l’évolution du poids CPB, que l’hypoplasie des structures infratentorielles, et principalement du cervelet, s’accentue avec le temps.
Ces résultats, en confirmant la précocité d’installation du phénotype crânio-facial et
encéphalique de la trisomie 21, justifient les études ciblées de la fonction développementale
précoce des gènes de la région critique. Ils peuvent apporter des éléments supplémentaires à la
recherche de paramètres échographiques susceptibles d’améliorer le diagnostic anténatal
morphologique de la maladie.
Aneu21 : Base de données de porteurs de trisomie 21 partielle.
Julien LAFFAIRE1, F. DORKELD3, Min TRAN DANG1, Geoffroy GOLFIER1, Jean Maurice DELABAR2,
Marie-Claude POTIER1.
1 Laboratoire de Neurobiologie
CNRS UMR7637, ESPCI
10, rue Vauquelin
75005 Paris
http://www.bionet.espci.fr
Tél : 01-40-79-47-70/47-67
Fax : 01-40-79-47-70/47-67
E-mail : [email protected]
2 EA 3508
3 IBCP (CNRS-UMR 5086)
Université Paris 7 - Denis Diderot
2, place Jussieu
75005 Paris
7, rue du Vercors
69367 Lyon
Tél : 01-44-27-56-98
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
Tél : 04-72-72-26-46
Fax : 04-72-72-26-04
E-mail : [email protected]
La trisomie 21 est le dérèglement chromosomique le plus fréquent qui se traduit par
une expression quantitativement modifiée des gènes portés par le chromosome 21.
Cette modification de l’expression génique se répercutant directement sur le phénotype des
patients, les réarrangements partiels du chromosome 21 devraient permettre de construire une
carte avec des régions dont l'aneuploïdie est impliquée dans l'apparition d'une pathogénie
spécifique.
Aneu21 est une base de données de patients atteints d’aneuploïdies partielles du
chromosome 21.
Elle a pour ambition d’être un outil de réflexion sur le type de corrélation possible
entre le génotype et le phénotype lors de réarrangements chromosomiques.
Elle permet également une communication des données entre cliniciens et fondamentalistes
ainsi qu’entre les laboratoires concernés (cytogénétique et génétique moléculaire).
Cette base de données rassemblera les résultats des analyses phénotypique et
moléculaire des patients porteurs de trisomie 21 partielle ou de monosomie 21 partielle.
La base est consultable sur Internet en accès restreint (login et mot de passe disponible auprès
de Jean Maurice DELABAR) et propose un formulaire pour permettre aux chercheurs et
médecins d’y référencer leurs données.
L'efficacité et l'exactitude de cette analyse dépendent du nombre de cas qui peuvent être
rassemblés et analysés avec le même ensemble d'outils: les données incluront les techniques
employées pour évaluer le nombre de copie de marqueurs ou de gènes, les sondes utilisées
pour l'analyse de l’hybridation fluorescente in situ, des informations sur le phénotype, ainsi
que des références bibliographiques et les coordonnées des contacts.
Ce logiciel vise à simplifier l’étude des liens phénotype => génotype en simplifiant la
réponse à des questions du type: « quels sont les patients présentant un phénotype spécifique
et quels sont, chez ces patients, les marqueurs ou les gènes présentant un nombre de copies
anormal ? »
Inversement le logiciel permet d’aller du génotype au phénotype avec la question: « qui sont
les patients portant un nombre anormal de copie d'un marqueur donné et quel est le phénotype
correspondant chez ces patients ? » Un code de couleur permet de visualiser les régions
critiques.
Les liens vers la Genome Data Base et vers d'autres bases de données donnent accès aux
données sur les marqueurs et les gènes utilisés pour l'analyse moléculaire.
Il est enfin envisagé de traiter les données provenant d’expérience de puces à ADN afin de
pouvoir prendre en compte le niveau d’expression des gènes dans la recherche de gènes
candidats
Caractéristiques phénotypiques des souris exprimant la forme humaine du
gène SOD1 dans l'évaluation des fonctions sensorimotrices et de l'anxieté
R. Lalonde, M. Dumont, J. London, C. Strazielle
Université de Rouen, Faculté de Médecine et de Pharmacie
EMI-INSERM 9906 (IFRRRMP 23),
76183 Rouen Cedex
Tél : 02-35-14-82-81
Fax : 02-35-14-82-37
rouen.fr
E-mail :
[email protected]
SOD1 est l'un des gènes surexprimés chez les personnes affectées par la
trisomie 21. Dans la présente étude, des souris transgéniques exprimant la forme humaine
non-mutée (wt) de SOD1 sont comparées à des souris non-transgéniques dans la batterie de
tests SHIRPA des fonctions neurologiques ainsi que dans des tests caractérisant l'activité et la
coordination motrices. Malgré l'absence de signe manifeste de troubles neurologiques, des
différences significatives intergroupes sont observées pour les mesures corporelles et les
capacités sensorielles. Le poids corporel et la taille des souris transgéniques SOD1/wt sont
supérieurs à ceux des témoins contrôlés pour les variables âge et sexe alors que leur
sensibilité pour les modalités visuelles, auditives et tactiles est inférieure; en effet, les souris
transgéniques SOD1/wt ont une sensibilité réduite dans des tests de "placing", réflexe
mesurant la réaction de l'oreille externe à un stimulus auditif et réflexe cornéen ainsi que dans
l'évaluation de la réactivé somatosensorielle au pincement des pattes postérieures. Au niveau
des performances motrices, les souris SOD1/wt se caractérisent par une diminution du
nombre de segments parcourus sur une poutre étroite en dépit de valeurs normales pour les
latences avant la chute. Par contre, aucune différence n'est observée dans les tests
d'ambulation ainsi que dans 2 autres tests de coordination motrice (cintre, rotarod). Ces
résultats indiquent que dès l'âge de 3 mois, des anomalies subtiles sont observables chez les
souris SOD1/wt, concordantes avec l'hyporéflexie observée chez les personnes porteuses de
trisomie 21.
Dysfonctionnement du développement précoce du thymus chez des souris
surexprimant la SOD humaine.
Julien LAURENT1,3, Rod CEREDIG1, Evelyne PALY2, Jacqueline LONDON2, Patrice N MARCHE1
1 Laboratoire d’Immunochimie, CEA-Grenoble/DRDC, INSERM U548
17 rue des Martyrs, 38054 Grenoble Cedex 9
2 EA 3508 Université Paris 7 Denis-Diderot case7104
2 Place Jussieu 75251 Paris Cedex 05
3 JL est bousier de l’AFRT.
Tél : 04-38-78-35-75
Fax : 04-38-78-98-03
E-mail : [email protected]
Les souris surexprimant la superoxyde dismutase à cuivre et à zinc de l'homme
(hSOD-1) constituent par certains aspects un modèle de trisomie 21. Ces souris transgéniques
(TgSOD1) sur fond génétique FVB/N possèdent plusieurs copies du gène hSOD-1 sous le contrôle de
son propre promoteur. Il existe des évidences que l'équilibre d'oxydoréduction du thymus affecte le
développement des lymphocytes T, aussi nous avons évalué l'incidence de la surexpression de la
hSOD sur le développement précoce du thymus. Nous avons analysé le développement du thymus
chez les souris TgSOD1 en comparaison avec les souris contrôles non-transgéniques FVB/N.
L'analyse de la taille du thymus a été réalisée à 3, 6, 14 jours, 3 et 8 semaines par comptage des
thymocytes. Nous avons observé chez les TgSOD1, une hypertrophie transitoire au cours du premier
mois. A 3 jours, la cellularité est cinq fois plus élevée, avec en moyenne à 5.109 pour les TgSOD1et à
1,5.109 pour les FVB/N. A 3-4 semaines la différence du nombre de thymocytes n'est plus que de
deux fois et à 8 semaines leur nombre n'est plus significativement différent. La différenciation des
thymocytes suit un programme précis qu'il est possible d'analyser par l'expression successive de
marqueurs de différenciation en cytométrie. Ainsi, les thymocytes immatures sont négatifs pour CD4
et CD8 (DN), puis acquièrent les 2 marqueurs (DP), enfin les lymphocytes T différenciés expriment
exclusivement l'un ou l'autre (SP). L'expression de CD4 et de CD8 a été mesurée sur des groupes de 3
à 6 individus à 1, 3, 6, 14, 21 et jusqu’à 84 jours et montre une proportion plus importante de SP chez
les TgSOD1, par exemple à 3j les SP CD4 représentent de l'ordre de 13% des thymocytes de TgSOD1
pour 7% chez les FVB/N, et à 21j 20% versus 11% respectivement. Ces augmentations de SP sont
compensées par des diminutions de DP. L'augmentation de lymphocytes T différenciés SP chez les
jeunes TgSOD1 a été confirmée par l'analyse d'autres marqueurs tels que le récepteur d'antigène
(TCR), CD3, CD69, CD5 et corrèle avec la surexpression de la hSOD1 dans le thymus. Enfin, les
ganglions lymphatiques périphériques de TgSOD1 possèdent 2 fois plus de lymphocytes T que les
FVB/N à 3 et 5 mois. Les lymphocytes T subissent plusieurs étapes de prolifération et d'expansion lors
des phases précoces de la différenciation du thymus, qui peuvent être suivies en cytométrie par
l'expression successives de CD44 et CD25 définissant les stades DN1 à 4. Les TgSOD1 présentent une
accumulation significative des thymocytes DN3 par rapport au FVB/N du même âge. L'analyse du
contenu en ADN par marquage au BrdU ne montre aucune altération, suggérant que la prolifération
des cellules n'est pas affectée. La plus forte proportion de DN3 pourrait être due à une perturbation de
l'apoptose qui provoquerait une survie allongée de ces cellules.
En conclusion, chez les TgSOD1 la différenciation précoce des thymocytes est
affectée à plusieurs étapes ce qui conduit : 1) à une hypertrophie transitoire du thymus, avec un
maximum à 1 mois, 2) à une maturation très précoce avec augmentation des lymphocytes T
différenciés CD4 et CD8 et du TCRalpha/beta dans le thymus et à la périphérie ; 3) à l'accroissement
de la survie de certains thymocytes immatures (DN3).
Ces résultats obtenus sur le modèle de souris TgSOD1 incitent à étudier très
précisément le développement précoce du thymus chez de très jeunes patients atteints de trisomie 21,
dont l’étude est en cours.
Aspects cardiovasculaires de l’insertion d’un fragment du chromosome 21
humain dans le génome de la souris FVB.
J.M. Lignon1, Z. Bichler2, B-L. Zhang1, D. Poisson1, F. Gannier1, P. Cosnay1,
D. Migliore-Samour2, & C.O. Malécot1.
(1) CNRS UMR 6542, Fac. Sciences, Parc de Grandmont, F-37200 Tours
(2) CNRS FRE 2358, 3b rue de la Férollerie, F-45071 Orléans.
Tél : 02-47-36-71-13
Fax : 02-47-36-71-12
E-mail : [email protected]
Outre ses effets mentaux et physiques, le syndrome de Down (DS) se
caractérise par des défauts immunologiques et cardiaques. La trisomie partielle souligne le
rôle de la DCR (Down Critical Region) qui mime la plupart des effets du DS. Smith et al.
(Genomics, 27:425-434, 1995) ont créé des lignées de souris qui incorporent des inserts de la
DCR humaine via des YAC [230E8, 141G6, 152F7, 285E6]. Pour voir si l'ECG est altéré
chez ces souris, l'ECG (8 dérivations) a été enregistré sous anesthésie à l'halothane (1.5%).
La fréquence cardiaque (FC) est de 400/min environ. Le complexe QRS (1 to 2 mV) est suivi
d'une onde O positive (semblable à celle décrite par Osborne chez le chien en hypothermie)
spécifique de la souris, sensible à la 4-Aminopyridine, et d'une petite onde T négative. Par
rapport aux contrôles (CR), les lignées transgéniques (Tg) montrent une plus grande
dispersion de la durée des ondes en fonction l'interval RR, mais les lignées Tg67+/+ et Tg84+/(YAC 285E6) ont une onde O plus longue que celle des CR. L'onde P, l'intervalle PQ, la
durée du complexe QRS et FC ne sont pas différents. La médétomidine (agoniste α2adrénergique, 136 µg/kg i.p.) induit une bradycardie (FC est réduite de moitié), un
accroissement de la durée du complexe QRS (de 34%) et une réduction de son amplitude (de
38%) et des blocs sino-auriculaires ou auriculo-ventriculaires (chez 70% des souris). Ces
quatre effets sont significativement réduits chez les Tg84+/- & Tg67+/+. Les blocs de
conduction sont réduits à 20% chez les Tg84+/- et absents chez les Tg67+/+. Des
enregistrements télémétriques préliminaires de l'ECG de souris éveillées confirment ces
résultats. Dans les myocytes ventriculaires de souris CR, Tg67+/+ et Tg84+/- d'un an,
l'enregistrement en patch-clamp du courant transitoire sortant Ito , impliqué dans l'onde O,
montre que : [1] la dépendence vis-à-vis du voltage de la courbe I-V est semblable chez les
CR, Tg67+/+ et Tg84+/-, mais la densité de courant à +60 mV est augmentée (P=0.025) chez
les Tg67 ; [2] les deux composantes de l'inactivation de Ito avec le temps ont des constantes
de temps semblables chez les CR et Tg, mais l'amplitude de la composante rapide est accrue
chez les Tg67+/+; [3] les propriétés de l'inactivation à l'état stable de Ito sont aussi affectées
chez les Tg67+/+.
Particularités du vieillissement chez les personnes trisomiques 21
MIRCHER C, CONTE M, RAVEL A, BLÉHAUT H, RÉTHORÉ MO
Centre Médical Jérôme Lejeune
50, avenue Foch- 75016 Paris
Tél : 01-53-64-73-60
Fax : 01-40-67-78-64
E-mail : [email protected]
Le centre médical Jérôme Lejeune assure le suivi médical tout au long de la vie
d’environ 2500 patients de tous âge atteints de déficience intellectuelle d’origine génétique.
La durée de vie dans la population générale s’accroît régulièrement ; ce phénomène se
retrouve aussi dans la population des personnes handicapées mentales, et de façon très
spectaculaire chez les patients trisomiques 21. La trisomie 21 est compliquée de plusieurs
pathologies associées, avec aussi souvent un « vieillissement prématuré ». Nous présentons
une étude épidémiologique de l’état de santé des patients de plus de 40 ans, réalisée à partir
des dossiers médicaux de 157 patients trisomiques 21 et 49 patients déficients intellectuels
non trisomiques 21 (autres anomalies chromosomiques, X fragile, retard mental inexpliqué,..).
L’âge moyen dans les deux groupes est de 50 ans. Les antécédents endocriniens,
neurologiques, orthopédiques, sensoriels et psychiatriques des patients sont comparés ;
certaines complications (hypothyroïdie, dépression, cataracte, régression cognitive de type
Alzheimer) sont plus fréquentes chez les patients trisomiques 21 ; la physiopathologie de ces
complications reste encore mal expliquée, et leur compréhension peut aider à avancer dans la
compréhension de la trisomie 21 comme dans celle d’autres pathologies ; ces spécificités
nécessitent un suivi médical approprié, et la recherche de voies thérapeutiques nouvelles
lorsque aucun traitement n’existe.
Exploration des fonctions neurovégétatives cardiaques et locomotrices par
télémétrie chez des souris transgéniques FVB porteuses d’un fragment
du chromosome 21 humain
D. Poisson1, BL. Zhang1, Z. Bichler2, T. Van Damme1, J.M. Lignon1, F. Gannier1,
D. Migliore-Samour2, C. Malécot1, D. Babuty1
(1) CNRS UMR 6542, Fac Sciences, Parc de Grandmont, 37200 Tours
(2) CNRS FRE 2358, 3b rue de la Férollerie, 45071 Orléans
Tél : 02-47-36-72-05
Fax : 02-47-36-72-39
E-mail : poisson@univ-tours .fr
Alors que les aspects morphologiques cardiaques du syndrome de Down (trisomie 21)
sont bien connus, les aspects fonctionnels sont encore méconnus et pourraient être impliqués
dans la genèse des arythmies cardiaques fréquentes dans ce syndrome.
Notre travail préliminaire a pour but d’évaluer et de comparer trois paramètres fonctionnels :
fréquence cardiaque, température centrale et activité motrice spontanée chez des souris
contrôles FVB/CR (n=5) et deux lignées de souris transgéniques intégrant le YAC 285E6
(n=9). Les paramètres fonctionnels sont recueillis à l’aide d’un système de télémétrie (Data
Sciences International) comprenant un transmetteur abdominal (TA10ETA-F20), un système
d’acquisition (ART Silver 2.2) et un système d’analyse ECG-Auto DSI (EMKA). Quinze
jours après l’intervention chirurgicale, les paramètres sont recueillis sur une période longue de
24 heures puis sur une courte période après stimulation et inhibition du système
neurovégétatif (injections i.p : atropine, propranolol, hexaméthonium, carbachol, isoprénaline
aux doses respectives de 1, 2, 30, 0.5 et 3 x 10-3 mg/kg).
Les souris transgéniques ont une fréquence cardiaque plus élevée que les souris
contrôles FVB/CR aussi bien le jour (617 12 vs 597 8 bpm) que la nuit (628±16 vs
602 10 bpm) alors qu’il n’y a pas de différence significative en terme de température
centrale et d’activité motrice spontanée. Les réponses de la fréquence cardiaque aux
neuromédiateurs et à leurs antagonistes semblent indiquer une sensibilité accentuée aux
stimuli parasympathiques chez les souris transgéniques. Par ailleurs, l’injection d’isoprénaline
induit un accroissement significatif de l’activité motrice spontanée.
Ces premiers résultats sur les souris trangéniques intégrant le YAC 285E6
montrent que la fréquence cardiaque est accélérée. Une analyse complémentaire de la
variabilité sinusale devrait définir le rôle du système neurovégétatif qui est fonctionnel.
Architecture du cycle veille-sommeil chez des souris transgéniques,
modèles de la Trisomie 21
Nicole SARDA, Damien COLAS, Jacqueline LONDON*, Abdallah Gharib.
INSERM U480, Médecine Rockefeller, 8 avenue Rockefeller, 69373, Lyon Cedex.
* EA 3508, Paris 7, Université Denis Diderot, 2 place Jussieu, 75005 Paris.
Tél : 04-78-77-70-33
Fax : 04-78-77-71-72
E-mail : [email protected]
Contexte La trisomie 21 ou Down syndrome (DS), une des premières causes du retard mental, se
caractérise par des nombreuses anomalies (cardiaques, gastro-intestinales) et déficits (endocriniens,
hématologiques) et par des signes de vieillissement précoce dont certains s’apparentent à ceux décrits dans la
maladie d’Alzheimer, bien que le plus souvent non associés à une démence. Concernant le système nerveux
central, il a été montré des déficits précoces des systèmes cholinergique et noradrénergique impliqués dans les
troubles du langage, du comportement et de la mémoire. Au niveau cellulaire, on note dès le plus jeune âge de
nombreuses altérations dont une vulnérabilité des lobes préfrontaux à l’accumulation du peptide amyloïde A4.
L’homéostasie du sommeil est cruciale pour un équilibre harmonieux des performances cognitives et
comportementales. Or, des études polysomnographiques récentes (Levanon et al., 1999; Diomedi et al., 1999)
ont montré des modifications importantes de l’architecture des états de veille et sommeils, en particulier du
sommeil paradoxal (SP) chez les patients DS. Les caractéristiques majeures décrites sont les suivantes : un
sommeil fragmenté qui se manifeste par des réveils ou des états d’éveil fréquents sans rapport avec le syndrome
des apnées ; une diminution des quantités et du nombre de cycles de SP avec augmentation du temps de latence
d’apparition du premier épisode ; des mouvements fréquents, conséquence d’une atonie musculaire insuffisante
pendant le SP. Compte tenu du rôle attribué au SP dans la plasticité neuronale associée à la mémoire, la sévérité
des troubles du SP observés a été corrélée positivement à la sévérité du retard mental de ces sujets (Grubar et al.,
1983). Malgré le flux intense de travaux de recherche, les mécanismes biochimiques et moléculaires de la
trisomie 21 ne sont que partiellement élucidés et les modèles transgéniques n’ont jamais été utilisés pour l’étude
de la fonction sommeil. Une des hypothèses pertinente dans la trisomie 21 est la surproduction de radicaux libres
ou stress oxydatif qui conduirait au vieillissement prématuré.
Hypothèse : Notre hypothèse de travail repose sur le fait que l’initiation du stress oxydant, due à la
surexpression du gène SOD1 localisé sur le chromosome 21 (21q21.1) et sa propogation délétère de concert avec
des processus inflammatoires et la surexpression du peptide A4 [gène app sur le chromosome 21 (21q22.2)]
conduiraient le cerveau vers un état quiescent de type Alzheimer chez les patients DS.
Pour tester cette hypothèse, le but de ce travail a été l’étude du cycle veille-sommeil chez 2 modèles de souris
transgéniques qui présentent certaines caractéristiques phénotypiques de la trisomie 21 : les souris hétérozygotes
hSOD1 (S/+) et hAPP (A/+) obtenues sur un fond génétique FVB/N.
Matériel et méthodes : Des lots de souris mâles S /+ , A/+ et FVB/N (3 mois, 21-30gr) soumis à des
conditions standard d’enregistrement (L/D : 12/12 ; 21°C, eau et nourriture ad libitum) sont utilisés (n=7). Les
souris sont implantées sous anesthésie avec des électrodes pour le suivi en continue des signaux EEG et EMG
(système Embla-Somnologica). Les signaux sont ensuite amplifiés, échantillonnés (100 Hz), filtrés, puis soumis
à une FFT (spectre compris entre 0 et 49, 6 Hz ; fréquence de résolution de 0.39 Hz). Trois stades sont analysés
selon des critères classiques : l’éveil (E), le sommeil lent (SL) et le sommeil paradoxal (SP) sur des périodes de
30 s. Un deuxième score par 10 s est utilisé pour l’analyse spectrale [ondes delta (δ) du SL ; ondes théta (θ) de
l’éveil et du SP]. L’architecture du cycle veille-sommeil est défini sur différentes périodes : 12 h de lumière ; 12
h d’obscurité et 24 h pendant 2 jours consécutifs. Deux conditions expérimentales sont utilisées : état basal ;
récupération après une privation de sommeil de 4 h.
Résultats : Souris S/+ : dans les conditions basales, les paramètres du SL et de l’éveil sont identiques
chez les souris S/+ et FVB/N alors que le nombre d’épisodes de PS diminue pendant les 12 h d’obscurité et que
le temps de latence d’apparition du SP au passage L/D augmente chez les souris S/+. Après une privation de
sommeil de 4 h, aucun rebond des quantités de SL ou de SP n’est observé en phase de récupération alors qu’un
rebond est observé pour le δ du SL chez les animaux S/+.
Souris A/+ : dans les conditions basales, les souris A/+ ne montrent pas de variation des quantités de SP par
rapport aux souris FVB/N. En revanche, on note une augmentation de l’éveil et une diminution du SL après les
transitions lumineuses. De même, on observe une augmentation de la puissance spectrale théta de l’éveil et du
SP. En phase de récupération à la privation de sommeil, les souris A/+ présentent de fortes augmentations des
quantités de SL et de SP et une meilleure qualité du SL (rebond du δ du SL). Les taux de nitrites/nitrates (indice
du stress oxydant) sont augmentés uniquement dans le tronc cérébral des souris S/+.
Ces résultats sont discutés dans le contexte de la pertinence de l’utilisation de ces modèles transgéniques pour
une meilleure compréhension des mécanismes moléculaires mis en jeu (stress oxydatif, précurseur de la protéine
amyloïde) pouvant expliquer les troubles du sommeil observés chez les patients atteints de trisomie 21.
Ce travail bénéficie du soutien financier de la Fondation Jérôme Lejeune
Améliorons le dépistage du cancer testiculaire chez les trisomiques 21
Satgé D. (Anatomie Pathologique, Centre Hospitalier, Tulle)
Sasco AJ. (CIRC et INSERM, Lyon)
Nishi M. (Epidémiologie, Université de Tobetsu, Japon)
Vekemans M. (Cytogénétique, Hôpital Necker, Paris)
Réthoré M-O. (Centre Médical Jérôme Lejeune, Paris
But : Evaluer la fréquence des cancers testiculaires des trisomiques 21 et proposer un
modèle de surveillance. Méthode : Revue de la littérature. Résultats : Depuis la première
observation [Holland et al 1962], 92 tumeurs testiculaires ont été rapportées dans la littérature
(à des âges entre 16 mois et 47 ans). Le risque, élevé dans toutes les études, va de 2,15
(population danoise) [Hasle et al 2000] à 50 (populations française et anglaise) [Mann et al
1989, Satgé et al 1997] fois celui de la population générale (PG). Le taux d'incidence annuel
après standardisation par age va en France de 3,2 (Hérault) à 7,9 (Bas-Rhin) nouveaux cas
pour 100 000 hommes [ Parkin et al 2003]. Toutes les formes de tumeurs germinales sont
observées, mais les séminomes représentent 80% des cas (contre 40% PG) [Aziz et Wu 2002],
ils surviennent à un âge moyen de 32 ans (contre 37 ans PG) [Swerdlow 1997]. La tumeur est
bilatérale dans environ 8% des cas (contre 4% PG) [Swerdlow 1997]. Elle se développe
parfois sur un testicule abdominal. Le pronostic est moins bon que dans la population
générale car la proportion de stades avancés (stade II, et plus) est plus grande (4/10) que dans
la PG (1/10) [Tomomasa et al 2001] et à cause des difficultés liées au traitement. Discussion :
La notion que les tumeurs testiculaires des trisomiques 21 sont nettement en excès est mal
connue. Ces tumeurs sont parfois découvertes tardivement et leur pronostic est moins bon.
Conclusion : Afin de dépister au plus tôt et d’améliorer le pronostic des cancers testiculaires
des trisomiques 21 nous recommandons de pratiquer un examen clinique annuel des bourses
et éventuellement une échographie (surtout en cas d’anomalie de position testiculaire).
Expression de PCP4 au cours du développement et du vieillissement chez la
souris et dans des modèles de surexpression
Thomas S 1., Aflalo R1., Thiery E1., Vayssettes C1., Verney C. 2 ., Berthuy I1, Créau N.1
1. EA3508 Université Paris 7
2. INSERM E9935, Paris
Tél : 01-44-27-56-98 Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
La trisomie 21 se traduit en particulier par des anomalies du système nerveux central
induisant un retard mental et psychomoteur et des malformations viscérales. Elle est aussi
associée à un vieillissement cérébral précoce accompagné d’une neuropathologie de type
Alzheimer dès l’âge de 35-40 ans. Le gène PCP4 (ou PEP-19) est localisé en 21q22.3 et son
homologue murin sur le chromosome 16 de souris (Mjaatvedt et coll., 1993). La protéine
PCP4 fait partie d’une voie de régulation de la transduction du signal calcique via sa liaison à
la calmoduline (CaM). In vitro, cette liaison conduit à l’inhibition des CaM Kinases II
(Ca++/CaM dependent kinase), médiateurs de la transduction du signal apoptotique. Son
expression est détectée essentiellement après la naissance, augmente jusqu’à l’âge adulte où
elle est observée dans les neurones du cerveau. En utilisant récemment un anticorps
spécifique de la partie N-terminale de la protéine, nous avons analysé sa localisation subcellulaire par immunocytochimie sur coupes de cerveau et sur des cellules transfectées avec
une construction pCMV-GFP-PCP4.
Pour déterminer si PCP4 pourrait jouer un rôle au cours du développement précoce
nous avons étudié son profil d’expression chez des embryons de souris de 7.5 jours post
coïtum (E7.5 p.c.) à la naissance (P0). Nos résultats montrent que PCP4 s’exprime
précocement et spécifiquement dans les dérivés de l’ectoderme et plus fortement du
neurectoderme : dès E10.5, PCP4 s’exprime dans les neurones post-mitotiques du
diencéphale, du métencéphale et du myelencéphale ainsi que dans les ganglions rachidiens et
craniaux. De plus, il et présent dans la plaque du plancher, structure importante pour le
développement du sytème nerveux. Plus tardivement, son expression, par exemple, dans le
cristallin, le plexus myentérique suggère qu’il pourrait jouer un rôle dans l’apparition de
certains des signes de la trisomie 21. C’est pourquoi, la construction d’un modèle de
surexpression avec le gène entier est en cours.
Chez l’homme, une réduction d’expression de PCP4 a été décrite dans le cerveau de
patients atteints des maladies d’Alzheimer et de Huntington, suggérant un rôle de la protéine
dans la pathophysiologie de ces maladies (Utal et coll., 1998; Slemmon et coll., 1994). Afin
de savoir si cette modulation est le reflet d’un processus physiologique du vieillissement,
accéléré en cas de syndrome neurodégénératif, nous avons étudié le taux d’expression de
PCP4 au cours du vieillissement normal chez la souris. Nous avons observé par hybridation in
situ une diminution importante (jusqu’à 70%) et homogène de l’expression de PCP4 dans le
cerveau en fonction de l’âge. Ces résultats ont été confirmés par RT-PCR en temps réel. Chez
les souris trisomiques 16 partielles, les souris Ts1Cje où 78 gènes homologues du
chromosome 21 (dont PCP4) sont en 3 copies, nous avons observé une surexpression de
PCP4 dans le cerveau à l’âge adulte par hybridation in situ et RT-PCR. L’étape suivante sera
d’étudier l’expression de PCP4 chez ces souris au cours du vieillissement ainsi que chez des
souris modèles de vieillissement accéléré.
Références :
Thomas S, Thiery E, Aflalo R, Vayssettes C, Verney C, Berthuy I, Creau N. : PCP4 is highly
expressed in ectoderm and particularly in neuroectoderm derivatives during mouse embryogenesis.
Gene Expr Patterns 2003 Mar;3(1):93-7
LE MALADE AU QUOTIDIEN
L’AFRT (Association pour la Recherche sur la Trisomie 21) a été créée en 1990 à l’initiative
d’un groupe de chercheurs travaillant à l’hôpital Necker sur la trisomie mais ne s’est fait connaître
qu’à partir de 1994. Elle est administrée par un conseil d’administration et un bureau émanant de ce
conseil. Lors de sa création, les statuts de l’AFRT en fixaient les buts :
1) Transmettre les informations sur la trisomie 21
2) Participer aux réunions d’autres associations afin de faire connaître la trisomie 21 et
la nécessité comme pour les autres maladies génétiques d’encourager les activités de
recherche
3) Promouvoir la recherche en suscitant des programmes spécifiques par l’attribution
de contrats de recherche et de bourses. Cette attibution est faite par le Conseil
Scientifique composé de personnalités de grande renommée.
L’AFRT a :
- Transmis les informations sur la trisomie 21
Dans des écoles du primaire et du secondaire
Par la télévision et par les ondes ( « la Marche du siècle » et deux émissions sur « Canal Plus
Santé)
En publiant 11 numéros des « Nouvelles du chromosome 21 » qui est une publication
d’environ 10 pages traitant à la fois de données scientifiques et médicales sur la trisomie 21..
- Participé à des réunions organisées par d’autres associations
ARIST à Grenoble ; FAIT 21 à Nimes, St Etienne, Pau, Bordeaux, Fondation
Jérôme Lejeune ; REFLET 21 à Lyon ; TEAM à Rouen ; UNAPEI et
ADAPEI.
-
Subventionné des projets de recherche et attribué des bourses (1 090 000FF
soit 165 000Euros)
Mars 1998, 10 000FF Prix de l’AFRT à Melle Ghania Aït Ghezala (URA-CNRS 1335, Paris)
Octobre 1999, 80 000FF Bourse de post-doc à Mme Carmela Lopez (UMR-CNRS 8602, Paris)
Décembre 1999, 100 000FF Subvention exeptionnelle pour aider l’UMR-CNRS 8602, Paris
Juillet 2000, 400 000FF sont distribués sur projets de recherche 250 000FF aux Docteurs N Créau,
J. Delabar et N. Janel de l’UMR 8602 à Necker, Paris, et aux Dr. Sergeant (100 000FF) de Lille et
Buard (50 000 FF) de Montpellier
Juillet 2002, 500 000FF sont attribués sous forme de bourses à:
- Bourse Post-Doctorale de un an à J.L. Frendo (Inserm U 427, Paris) 100 000
- Bourse de thèse de 2 ans à J. Laurent (Inserm U 548, Grenoble) 200 000
- Bourse de thèse de 2 ans à L. Magnol (CNRS FRE, Orléans) 200 000
Les moyens de l’AFRT sont très limités ; néanmoins grâce à la fidélité de nos adhérents et à
plusieurs dons substantiels et exceptionnels, nous avons rempli, nous poursuivrons et
amplifierons notre mission:
Informer sur la trisomie 21 et susciter la recherche
AFRT, Université Paris 7 Denis-Diderot, Case 7088, 2 Place Jussieu,75251 Paris Cedex 05. Tel : 01
44 27 83 41 E mail : [email protected]
Fédération des
Associations pour
l'Insertion socialedes
personnes porteuses d'une
Trisomie 21
Groupe d'Etude
pour l'Insertion Sociale des
personnes porteuses d'une
Trisomie 21
FAIT 21 et GEIST 21
Membre de Handicap
GRANDE CAUSE NATIONALE 2003
Une valeur fondamentale : la confiance en la personne trisomique justifie un projet exigeant.
Un objectif : une meilleure qualité de vie
l’autonomie de la personne trisomique
l’insertion sociale, la citoyenneté
Un moyen : le développement des compétences grâce à un accompagnement
individualisé dans le respect de la personne.
Un appui fondamental : l’innovation éducative et les avancées médico-sociales
Un état d’esprit : l’engagement des parents et des professionnels
le militantisme
FAIT 21 est la fédération des GEIST 21 (Groupes d’Etude pour l’Insertion Sociale des
personnes porteuses de Trisomie 21), associations de parents et de professionnels qui ont
pour but de concourir à une meilleure prise en charge rééducative et thérapeutique pour
permettre l’insertion sociale des personnes porteuses de Trisomie 21.
FAIT 21 regroupe actuellement plus de 60 associations départementales auxquelles elle
assure une aide technique et administrative. Leur action concerne environ 3000 enfants,
adolescents et jeunes adultes suivis par les équipes ou services de soins GEIST.
FAIT 21 siège au Conseil National Consultatif des Personnes Handicapées
FAIT 21 s’est dotée d’un Conseil Scientifique qui soutient des recherches et s’informe des
travaux en cours.
FAIT 21 met en place des formations à destination des professionnels et des parents, plus
particulièrement en partenariat avec les facultés de médecine des Universités de Bordeaux et
Saint-Etienne, organise des congrès, rencontres thématiques ou des journées nationales sur la
trisomie 21. Les 24, 25 et 26 octobre 2003, FAIT 21 et le GEIST 21 Loiret organisent les II°
rencontres européennes sur la Trisomie 21 intitulées « TRISOMIE 21, quelle santé ! » Plus de
1200 personnes sont attendues.
FAIT 21 est en contact permanent avec les associations des pays européens travaillant sur la
trisomie 21. Elle est co-fondatrice d’E.D.S.A ( European Down’s Syndrom Association).
FAIT 21 - 10, rue du Monteil - 42000 Saint-Étienne –
Tél. 04 77 37 87 29 / Fax 04 77 33 99 02 Email [email protected]
Fondation Jérôme Lejeune
Pour la recherche sur les maladies de l’intelligence d’origine génétique
La Fondation Jérôme Lejeune créée et reconnue d’utilité publique en 1996 poursuit l’œuvre du Professeur
Lejeune pour vaincre la trisomie 21 et les autres maladies de l’intelligence d’origine génétique : X fragile,
autisme, syndrome du cri du chat…
La Fondation a 3 missions :
Chercher : Pour vaincre la trisomie 21 et les autres maladies de l’intelligence
•
1er financeur en France de la recherche sur la trisomie 21, la Fondation Jérôme Lejeune a financé
dans le monde 56 projets de recherche en 2002. Plus d’1 million d’euros a été attribué à la recherche
dans une quinzaine de pays en 2002. Depuis sept ans, plus de 100 projets de recherche ont été financés
par la Fondation Jérôme Lejeune.
•
Elle propose à ses patients de participer à des programmes de recherche clinique et thérapeutique afin
de mieux connaître puis traiter leur maladie.
Une dizaine d’études est en cours : ENTRAIN (patients de 6 mois à 2,5 ans), COFAC (5 – 11 ans),
NICOLAS (+ 18 ans)….
Soigner : Au cœur du soin et de la recherche : le Centre Médical Jérôme Lejeune
•
1er centre de consultation spécialisée agréé par les pouvoirs publics comme centre référent pour les
personnes handicapées mentales, le Centre Médical Jérôme Lejeune accueille 3000 patients avec leur
famille. Fort de 40 années d’expérience, il offre des consultations spécialisées et des inclusions dans
des projets de recherche à finalité clinique et thérapeutique.
•
L’équipe des médecins, généticiens, pédiatres, psychologues, orthophoniste, assistante sociale procure
au patient une prise en charge médicale spécialisée :
¾ consultation et prescription de traitements
¾ prévention des complications (anomalie de la thyroïde, épilepsie…)
¾ diagnostics de déficit mentaux très rares ou inexpliqués
¾ coordination entre les différentes professions médico-sociales autour du patient
¾ formation pour les professionnels
Défendre : la dignité fondamentale de toute vie humaine
•
1er site pédagogique fait par et pour les personnes handicapées mentales : www.planete21.net
Ce site informatif et ludique permet aux personnes handicapées mentales de naviguer dans trois
environnements différents à la mesure de chacun : « mon village », « ma ville », « ma grande ville ».
On y trouve des dossiers d’information sur l’actualité, des recettes de cuisine, des conseils en
bricolage, des récits de voyages, des jeux, des témoignages et le forum…
•
1er site francophone d’information et d’analyse sur l’actualité bioéthique : www.genethique.org
Ce site offre de nombreux outils d'informations et de réflexion en bioéthique : une revue de presse
quotidienne, des dossiers à thème, une lettre mensuelle, une bibliographie et les textes officiels en ce
domaine, un moteur de recherche et un forum. Aujourd’hui, genethique.org enregistre : 1000
connexions par jour et 1500 abonnés à la revue de presse quotidienne. 8000 personnes sont abonnées à
la lettre mensuelle.
Fondation Jérôme LEJEUNE
Reconnu d’Utilité Publique le 20 mars 1996 – Tél. : 01 46 33 31 82
31 rue Galande 75 005 Paris [email protected]
Colloque Paris 2003
« Trisomie 21 : de la fonction des gènes du chromosome 21 à la
physiopathologie. »
AFLALO Révital
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-56-99
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
BICHLER Zoé
Lehrstuhl für Molekulare Neurobiochemie
Ruhr-Universität Bochum, Fakultät für Chemie
Gebäude NC7-174
Universitätsstr. 150
44780 Bochum, Germany
Tél : +49 (0)234-32-25774
Fax : +49 (0)234 32 14105
E-mail : [email protected]
ALBERTO Jean-Marc
Laboratoire de Pathologie Cellulaire
Et Moléculaire en Nutrition
EMI-INSERM 0014
Faculté de Médecine
9, Av de la Forêt de Haye
54505 Vandoeuvre les Nancy
Tél : 03-83-68-32-92
Fax : 03-83-15-35-91
BLAISE Sébastien
Laboratoire de Pathologie Cellulaire
Et Moléculaire en Nutrition
EMI-INSERM 0014
Faculté de Médecine
9, Av de la Forêt de Haye
54505 Vandoeuvre les Nancy
Tél : 03-83-68-32-92
Fax : 03-83-15-35-91
ALEMBIK Yves
Centre Hospitalo Universitaire
Service de génétique médicale
Strasbourg
E-mail : [email protected]
BLÉHAUT Henri
Centre Médical Jérôme Lejeune
50, avenue Foch
75116 Paris
Tél : 01-53-64-73-60
Email : [email protected]
BESSON Vanessa
Laboratoire de Génétique
Expérimentale et Moléculaire
Institut de Transgénose
3B rue de la Férollerie
45071 Orléans cedex 2
Tél : 06-12-34-23-89
Fax : 02-38-25-79-30
E-mail : [email protected]
BORG Jacques
Laboratoire de Neurochimie
PPEH EA3062
Faculté de Médecine
Rue A.Paré
42023 Saint Etienne Cedex 2
Tél : 04-77-12-75-53
Fax : 04-77-12-05-46
E-mail : [email protected]
BESTEL Aude-Marie
Neurogénétique INSERM E9935
Hôpital Robert Debré
48, boulevard Sérurier
75019 Paris
Tél : 01-40-03-19-23
Fax : 01-40-03-19-03
E-mail : [email protected]
BOURDON Emmanuel
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : bourdon @paris7.jussieu.fr
1
DAUPHINOT Luce
Laboratoire de Neurobiologie
Et diversité cellulaire - ESPCI
10 rue Vauquelin
75005 Paris
Tél : 01-40-79-51-71
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
BOURGEOIS Francine
Neurogénétique INSERM E9935
Hôpital Robert Debré
48, boulevard Sérurier
75019 Paris
Tél : 01-40-03-19-23
Fax : 01-40-03-19-03
E-mail : [email protected]
De BLOIS BOUCARD Marie Christine
Hôpital Necker Enfants Malades
Service de Cytogénétique
149 rue de Sèvres
75015 Paris
Tél : 01-44-49-47-61
Fax : 01-44-49-04-17
E-mail : [email protected]
BRAULT Véronique
Laboratoire de Génétique
Expérimentale et Moléculaire
CNRS FRE2358,
Institut de Transgénose
45071 Orléans Cedex 02
Tél : 02-38-25-79-30
Fax : 02-38-25-79-79
E-mail : [email protected]
De FREMINVILLE Bénédicte
Laboratoire de Cytogénétique
CHU Nord
42055 Saint Etienne Cedex 2
Tél : 04-77-82-80-48
Fax : 04-77-82-82-59
E-mail : [email protected]
BUARD Jérôme
Séquences Répétées et
Centromères Humains
Institut de Génétique Humaine
141 rue de la Cardonille
34396 Montpellier cedex 5
Tél : 04-99-61-99-76
Fax : 04-99-61-99-01
E-mail : [email protected]
DELABAR Jean Maurice
EA 3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-5- 98
Fax : 01-44-27-83-38
E-mai : [email protected]
CHABERT Caroline
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : [email protected]
DELEZOIDE Anne-Lise
Service de Biologie du Développement
Hôpital Robert Debré
48 Bd Sérurier
75935 Paris cedex 19
Tél : 01-40-03-23-38
Fax : 01-40-03-53-19
E-mail : [email protected]
COSNAY Pierre
Service de Cardiologie B
CNRS UMR 6542
Hôpital Trousseau, C.H.U de Tours
37 Tours
Tél : 02-47-47-88-92
Fax : 02-47-47-82-41
E-mail : [email protected]
De SARIO Albertina
Institut de Génétique Humaine
CNRS UPR 1142
141, rue de la Cardonille
34396 Montpellier
Tél : 04-99-61-99-77
Fax : 04-99-61-99-01
E-mail : [email protected]
CRÉAU Nicole
EA3508
Université Paris7 – Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-56-99
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
2
GOLFIER Geoffroy
Neurobiologie et Diversité Cellulaire
CNRS UMR 7637, ESPCI,
10, rue Vauquelin
75005 Paris
Tél : 01-40-79-47-70
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
De VISMES Philippe
Association Française pour
la Recherche sur la Trisomie 21
2, place Jussieu – Case 7088
75251 Paris cedex 5
DREUX Sophie
Laboratoire de F. Muller, Biochimie
Hôpital Ambroise Paré
9, Ave Charles De Gaulle
92100 Boulogne
Tél : 01-49-09-55-34
Fax : 01-49-09-58-63
E-mail : [email protected]
GONZALES Marie
Unité de Foetopathologie
Hôpital Saint-Antoine
184, Rue du Faubourg Saint-Antoine
75012 Paris
Tél : 01-49-28-21-91 / 06-19-55-65-60
Fax : 01-49-28-27-17
E-mail : [email protected]
EVAIN-BRION Danièle
INSERM U427
Faculté des Sciences Pharmaceutiques
Et Biologiques
4 Avenue de l’Observatoire
75006 Paris
Tél : 01-44-07-39-91
Fax : 01-44-07-39-92
E-mail : [email protected]
GOSSET Philippe
Service de Biologie du Développement
Hôpital Robert Debré
48 Bd Sérurier
75935 Paris cedex 19
Tél : 01-40-03-23-38
Fax : 01-40-03-53-19
E-mail : [email protected]
FRENDO Jean-Louis
INSERM U427, Faculté des Sciences
Pharmaceutiques et Biologiques
4, avenue de l’Observatoire
75006 Paris
Tél : 01-53-73-96-02
Fax : 01-44-07-39-92
E-mail : [email protected]
GRAISON Emilie
Laboratoire de Neurobiologie
Et de Diversité Cellulaire
ESPCI CNRS UMR 7637
10 rue Vauquelin
75005 Paris
Tél : 01-49-79-51-71
Fax : 01-49-79-47-57
E-mail : [email protected]
GAYMARD Sylvia
Fédération des Associations pour
L’insertion Sociale des Personnes
Porteuses d’une Trisomie 21
10, rue du Monteil
42000 Saint-Étienne
Tél : 04-77-37-87-29
Fax : 04-77-33-99-02
E-mail : [email protected]
GUÉANT Jean-Louis
Laboratoire de Pathologie Cellulaire
Et Moléculaire en Nutrition
EMI-INSERM 00 14
Faculté de Médecine
9, Av de la Forêt de Haye
54505 Vandoeuvre les Nancy
Tél : 03-83-15-44-84
Fax : 03-83-15-35-91
E-mail : [email protected]
GERBAUD Pascale
INSERM U
GUÉANT-RODRIGUEZ Rosa-Maria
Laboratoire de Pathologie Cellulaire
Et Moléculaire en Nutrition
EMI-INSERM 0014
Faculté de Médecine
9, Av de la Forêt de Haye
54505 Vandoeuvre les Nancy
Tél : 03-83-15-44-83
Fax : 03-83-15-35-91
Fédération des Associations pour l'427
Faculté des Sciences
Pharmaceutiques et Biologiques
4, avenue de l’Observatoire
75006 Paris
Tél : 01-53-73-96-02
Fax : 01-44-07-39-92
E-mail : [email protected]
3
JANEL Nathalie
EA 3508
Université Paris 7 – Denis Diderot
Case 7104
2, place Jussieu
75005 Paris
Tél : 01-44-27-77-45
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
GUIBOURDENCHE Jean
Service de Biochimie Hormonologie
Hôpital Robert Debré
48 bd Sérurier, 75019 Paris
INSERM U427, Faculté des Sciences
Pharmaceutiques et Biologiques
4 av de l’observatoire, 75006 Paris
Tél : 01-40-03-47-28
Fax : 01-40-03-47-90
E-mail :
[email protected]
JOBERT Anne-Sixtine
Fondation Jérôme Lejeune
31, rue Galande
75005 Paris
Tél : 01-53-10-89-76
Fax : 01-53-10-85-98
E-mail : [email protected]
GUIHARD-COSTA Anne-Marie
UPR 2147 du CNRS
44 rue de l’Amiral Mouchez
75014 Paris
Tél : 01-43-13-56-14
Fax : 01-43-13-56-30
E-mail :[email protected]
KERDELHUÉ Bernard
Laboratoire de Neuroendocrinologie
UFR Biomédicale des Saints Pères
45, rue des Saints Pères
75270 – Paris Cedex 06
Tél : 01-42-86-40-70
Fax : 01-42-86-40-70
E-mail : [email protected]
GUIMIOT Fabien
Neurogénétique INSERM E9935
Hôpital Robert Debré
48, boulevard Sérurier
75019 Paris
Tél : 01-40-03-19-23
Fax : 01-40-03-19-03
E-mail : [email protected]
LAFFAIRE Julien
Laboratoire de Neurobiologie
CNRS UMR7637, ESPCI
10, rue Vauquelin
75005 Paris
Tél : 01-40-79-47-71
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
http://www.bionet.espci.fr
HENNEQUIN Martine
Faculté de Chirurgie Dentaire
11 Bd Charles de Gaulle
63000 Clermont Ferrand
Tél : 04-73-17-73-27
Fax : 04-73-17-73-09
E-mail : [email protected]
LALONDE Robert
Université de Rouen, Faculté de
Médecine et de Pharmacie
Bâtiment de Recherche
22, boulevard Gambetta,
EMI-INSERM 9906 (IFRMP 23),
Salle 1D18
76183 Rouen Cedex
Tél : 02-35-14-82-81
Fax : 02-35-14-82-37
E-mail: [email protected]
HÉRAULT Yann
Laboratoire de Génétique Expérimentale et
Moléculaire
Institut de Transgénose
3B rue de la Férollerie
45071 Orléans cedex 2
Tél : 02-38-25-79-30
Fax : 02-38-25-79-30
E-mail : [email protected]
4
MAGNOL Laëtitia
12 bis rue du château
Beaumont
45190 Cravant
Tél 02 38 44 41 24
E-mail : [email protected]
LAURENT Julien
CEA Grenoble DRDC/ICH
INSERM U548
17, rue des Martyrs
38054 Grenoble cedex 09
Tél : 04-38-78-35-74
Fax : 04-38-78-98-03
E-mail : [email protected]
MALECOT Claire O.
Physiologie des Cellules Cardiaques
Et Vasculaires
CNRS UMR 6542
Faculté des Sciences
Parc Grandmont
37200 Tours
Tél : 02-47-36-70-09
Fax : 02-47-36-71-12
E-mail : [email protected]
Le MÉNÉ Jean-Marie
Fondation Jérôme Lejeune
31, rue Galande
75005 Paris
Tél : 01-46-33-31-82
Fax : 01-44-07-16-25
E-mail : [email protected]
Le PÉCHEUR Marie
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : [email protected]
MARCHE Patrice
CEA Grenoble DRDC/ICH
INSERM U548
17, rue des Martyrs
38054 Grenoble cedex 09
Tél : 04-38-78-35-73
Fax : 04-38-78-98-03
E-mail : [email protected]
LEVASSEUR Françoise
GEM-CNRS
3b, rue de la Ferollerie
45 071 Orléans cedex 02
Tél : 02-38-25-79-32
Fax : 02-38-25-54-35
E-mail : [email protected]
MIGLIORE-SAMOUR Danièle
FRE 2358 CNRS
Génétique Expérimentale et Moléculaire
Institut de transgénose
3b, rue de la Ferollerie
45071 Orléans Cedex 2
Tél : 02-38-25-79-75
Fax : 02-38-25-79-75
E-mail : [email protected]
LIGNON Jacques
Physiologie des Cellules Cardiaques
Et Vasculaires
CNRS UMR 6542
Faculté des Sciences
Parc Grandmont
37200 Tours
Tél : 02-47-36-71-13
Fax : 02-47-36-71-12
E-mail : [email protected]
MIRCHER Clotilde
Centre Médical Jérôme Lejeune
50, avenue Foch
75116 Paris
Tél : 01-53-64-73-60
Fax : 01-40-67-78-64
E-mail : [email protected]
LONDON Jacqueline
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : [email protected]
MOALIC Jean-Marie
Neurogénétique INSERM E9935
Hôpital Robert Debré
48, boulevard Sérurier
75019 Paris
Tél : 01-40-03-19-23
Fax : 01-40-03-19-03
E-mail : [email protected]
5
PORET Gwendaël
Fondation Jérôme Lejeune
31, rue Galande
75005 Paris
Tél : 01-53-10-89-76
Fax : 01-53-10-85-98
MOLDRICH Randal
Laboratoire de Neurobiologie
UMR7637, ESPCI
10 rue Vauquelin
75005 Paris
Tél : 01-40-79-47-70
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
POTERLOT-SIMON Catherine
Association Française pour la Recherche sur la
Trisomie 21
2, place Jussieu – Case 7088
75251 Paris cedex 5
NGIMBOUS Bedel
Neurogénétique INSERM E9935
Hôpital Robert Debré
48, boulevard Sérurier
75019 Paris
Tél : 01-40-03-19-23
Fax : 01-40-03-19-03
E-mail : [email protected]
POTIER Marie-Claude
Neurobiologie et Diversité Cellulaire
CNRS UMR 7637, ESPCI
10, rue Vauquelin
75005 Paris
Tél : 01-40-79-47-70
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
PALY Evelyne
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : [email protected]
PRIEUR Marguerite
Hôpital Necker Enfants Malades
149 Rue de Sèvres
75743 Paris cedex 15
Tél : 01-44-49-49-73
Fax : 01-44-49-04-17
E-mail : [email protected]
PIDOUX Guillaume
INSERM U427, Faculté des Sciences
Pharmaceutiques et Biologiques
4, avenue de l’Observatoire
75006 Paris
Tél : 01-53-73-96-02
Fax : 01-44-07-39-92
RAOUL Odile
Service de Cytogénétique
Du Professeur Vekemans
Hôpital NECKER
149 rue de Sèvres
75015 Paris
Tél : 01-44-49-47-60
Fax : 01-44-49-04-17
E-mail : [email protected]
PILARD Nathalie
EA 3508
Université Paris 7 – Denis Diderot
Case 7104
2, place Jussieu
75005 Paris
Tél : 01-44-27-77-45
E-mail : [email protected]
ROBERT Karine
EA 3508
Université Paris VII – Denis Diderot
Case 7104
2 place jussieu
75251 Paris Cedex 05
France
Tél : 01-44-27-77-45
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
POISSON Denise
Laboratoire de Pharmacologie
UMR CNRS 6542.
UFR Pharmacie
31 av. Monge
37200 Tours
Tél : 02-47-36-72-05
Fax : 02-47-36-72-39
E-mail : [email protected]
6
SANLAVILLE Damien
Hôpital Necker-Enfants Malades
Tour Pasteur 1° étage
Service du Pr M. Vekemans
149 rue de Sèvres
75015 Paris
Tél : 01-44-49-47-61
Fax : 01-44-49-04-17
E-mail : [email protected]
THOMAS Sophie
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-56-99
Fax : 01-44-27-83-38
E-mail : [email protected]
SARDA Nicole
INSERM Unité 480, Faculté de Médecine
Rockefeller
69373 Lyon.
Tél : 04-78-77-70-33
Fax : 04-78-77-71-72
E-mail : [email protected]
TOURAINE Renaud
Service de Génétique
CHU Nord
42055 St Etienne Cedex 2
Tél : 04-77-82-81-16
Fax : 04-77-82-84-56
E-mail : renaud.touraine@chu-st-etien
SATGE Daniel
Laboratoire d' Anatomie Parthologique
Centre Hospitalier
19 000 Tulle
Tél : 05-55-29-79-13
Fax : 05-55-29-86-05
E-mail : [email protected]
TOURÉ Mariam
EA3508
Université Paris7– Denis Diderot
Case 7104
2 place Jussieu
75251 Paris cedex 5
Tél : 01-44-27-83-40
E-mail : [email protected]
SIMONNEAU Michel
Neurogénétique INSERM E9935
Hôpital Robert Debré
48, boulevard Sérurier
75019 Paris
Tél : 01-40-03-19-23
Fax : 01-40-03-19-03
E-mail : [email protected]
TOYAMA kiyoko
Unité 549 INSERM
2ter rue d’Alésia
75014 Paris
Tél : 01-40-78-92-24
E-mail :
[email protected]
TRAN DANG Minh
ESPCI Laboratoire de Neurobiologie
Et Diversité Cellulaire
10 rue Vauquelin
75005 Paris
Tél 01-40-49-51-71
Fax : 01-40-79-47-57
E-mail : [email protected]
SINET Pierre-Marie
U549 Inserm, Centre Paul Broca,
2ter rue d’Alésia
75014 Paris
Tél : 01-40-78-92-24
E-mail : [email protected]
STRAZIELLE Catherine
Laboratoire de Microscopie Electronique
Faculté de Médecine,
Université Henri Poincaré, Nancy 1,
9, Avenue de la Forêt de Haye
54500 Vandoeuvre les Nancy
Tél : 03-83-68-29-63 ou 03-83-68-36-13
Fax : 03-83-68-29-81
E-mail: [email protected]
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